Name: Registrazione di pressione intracavernosa per valutare la funzione erettile in roditori (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-06T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: Impara a registrare la pressione intracavernosa nei ratti per valutare la funzione erettile. Questo metodo utilizza la stimolazione dei nervi cavernosi e la cateterizzazione del corpo cavernoso per studiare la disfunzione erettile maschile.

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Questo lavoro è stato sostenuto dai fondi di ricerca fondamentali per l'Università centrale (020814380018, 020814380077), The China Scholarship Council (CSC, no. 201606195024), Natural Science Foundation della provincia di Jiangsu (BK20160138) e Key Project supportati dalla scienza e dalla tecnologia Development Foundation, Università medica di Nanchino (2014NJMUZD053).

Three-month-old e 18 mese-vecchi ratti Sprague-Dawley sono stati utilizzati nello studio presente. Tutti gli animali sono stati gestiti in conformità con le linee guida NIH per la cura e l'uso di animali da laboratorio. Procedure che coinvolgono soggetti animali sono state approvate dal comitato di etica e locali istituzionali Animal Care con uno sforzo per ridurre al minimo la sofferenza animale. I protocolli sono stati approvati dal istituzionale Animal Care e uso Committee (IACUC) all'Università di tecnologia di Nanchino (Nanjing, Cina).
I ratti sono stati divisi in due gruppi secondo la loro età e preliminari delle prestazioni nel test di funzione erettile indotta da APO prima della registrazione ICP: il giovane normale (YN gruppo) e la disfunzione erettile invecchiato gruppo (Gruppo AE)10.
1. preparazione prima dell'intervento chirurgico
<ol><li>Creare manualmente un paio di elettrodi bipolari per la registrazione di ICP (Figura 1). Leggermente piegare le estremità degli elettrodi e regolare la distanza tra due elettrodi a 1-2 mm di larghezza, come mostrato in Figura 1A.</li>
	<li>Collegare gli elettrodi all'elettrostimolatore utilizzando due pinze coccodrillo (Figura 1AB).</li>
	<li>
Assemblaggio del sistema di catetere: In primo luogo, collegare un ago ipodermico di 23G per un rubinetto a 3 vie con tubi, quindi collegare il rubinetto al trasduttore di pressione. Successivamente, collegare una siringa 10 mL alla fine terza del rubinetto per fornire soluzione fisiologica dell'eparina.</li>
	<li>Controllare attentamente per individuare perdite dopo aver riempito l'intero sistema con soluzione fisiologica dell'eparina (200 U/mL). Poi girare il rubinetto a 3 vie per chiudere il canale di siringa o il canale di trasduttore di pressione (Figura 1).</li>
	<li>Sollevare l'ago 20 cm il livello del pad in legno. Quindi calibrare la pressione registrazione sistema a 20 cm H2O. Dopo di che, è necessario spostare l'altezza dell'ago per verificare l'accuratezza del sistema di registrazione. Ripetere la calibrazione fino a quando la precisione è stata confermata.</li>
	<li>Trasferire i ratti dalla struttura animale per sala operatoria e consentire loro di abituarsi alla sala operatoria per almeno 30 min.</li>
	<li>Gli strumenti in autoclave vengono spruzzati con etanolo al 70% appena prima dell'intervento chirurgico</li>
</ol>2. chirurgia procedura
<ol><li>Anestetizzare il topo con un'iniezione intraperitoneale di sodio pentobarbital ad una dose di 45 mg/kg di peso corporeo e aspettare per 5-10 min pizzicare le dita dei piedi per confermare un corretto amputate.</li>
	<li>Radere il pelo dell'addome e del collo con un rasoio elettrico e posizionare il ratto sul dorso su un rilievo di riscaldamento.</li>
	<li>Pulire l'area di chirurgia con batuffoli di cotone imbevuti di soluzione povidone-iodio 10% seguite da batuffoli di cotone imbevuto di etanolo al 70%. Inoltre, applicare unguento oftalmico per evitare che gli occhi secchi.</li>
	<li>Cateterismo dell'arteria carotide sinistra.<ol>
<li>Afferrare la pelle del collo con la pinzetta e fare un'incisione orizzontale al centro del collo. Incidere i muscoli, attentamente esporre l'arteria carotide sinistra e isolare una sezione di 5 mm della nave.</li>
		<li>Attentamente separare l'arteria carotica dal nervo vago usando il forcipe, disegnare una sutura seta sotto l'arteria carotica e mettere una cravatta allentata all'estremità caudale della nave, poi fare un altro nodo stretto all'estremità cranica della nave.</li>
		<li>Caudalmente morsetto il vaso con un bulldog morsetto sopra la sutura per fermare il flusso di sangue.</li>
		<li>Attentamente fare un'incisione sulla nave con le forbici microsurgical e inserire il catetere arterioso verso il cuore con l'assistenza del gancio e forcipe micro-dissezione.</li>
		<li>Fissare la legatura caudale sciolta intorno al catetere per fissarlo. Rimuovere il morsetto del bulldog per ripristinare il flusso sanguigno.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Isolare il CN e posizionare l'elettrodo
	<ol>
<li>Sollevare la pelle e i muscoli dell'addome con un paio di pinze. Con le forbici per dissezione, tagliare attraverso l'addome inferiore al pene per fare un'incisione del midline.</li>
		<li>Spingere delicatamente l'intestino con tampone nella parte superiore della cavità addominale.</li>
		<li>Afferrare la vescica con un paio di pinze e tirare fuori la vescica dalla cavità addominale. Esporre i lobi ventrali della prostata, che si trova sulla parte ventrale dell'uretra.</li>
		<li>Tirare fuori i lobi ventrali della prostata, delle vescicole seminali e deferenti per esporre il lobo dorsale della prostata. Trovare il punto di aderenza dei deferenti e prostata.</li>
		<li>Separare lo spazio tra la prostata e il dotto deferente. Esporre con cautela la capsula fibrosa, che è posizionata dietro il punto di giunzione della prostata e del dotto deferente. Poi trovare il ganglio pelvico principale (Figura 2). Nota: Le principale ganglio pelvico e nervi cavernosi possono essere visto alla superficie della prostata.</li>
		<li>Asciugare accuratamente la zona CN con un tampone sterile. Con attenzione isolare e agganciare il nervo cavernoso di destra con gli elettrodi bipolari.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Cateterismo la sinistra Crura
	<ol>
<li>Tagliare una piccola incisione nella pelle del pene con le forbici per dissezione e poi accuratamente denudare la pelle del fusto del pene.</li>
		<li>Sezionare la muscolatura del pene striata. Trovare il ramo superiore dell'osso del pube.</li>
		<li>Esporre il muscolo bulbospongiosus, che copre il bulbo spongioso.</li>
		<li>Dividere il muscolo bulbospongiosus dal muscolo ischiocavernosus usando il forcipe curvo.</li>
		<li>Isolare accuratamente il muscolo ischiocavernosus con pinzetta e poi tagliare il muscolo ischiocavernosus per esporre la bianca tunica albuginea la crus del cavernosum del corpus.</li>
		<li>Seguendo la direzione anatomica la crus del cavernosum del corpus, attentamente inserire l'ago nel cru cavernosi attraverso l'albuginea di tunica bianca. Nota: Questo è un passo cruciale per cateterizzazione successo. Può essere iniettata una piccola quantità di soluzione fisiologica eparinizzata, e un lieve tumescence penile dovrebbe essere osservato, se l'ago è stato inserito correttamente.</li>
		<li>Attentamente rimuovere l'ago ed evitare qualsiasi scorrevole dell'ago o la rottura del tubo di raccordo. Controllare eventuali perdite.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. stimolare il CN
<ol><li>Aprire il programma software per la registrazione del segnale di pressione e avviare la registrazione del segnale di pressione.</li>
	<li>Impostare i parametri della stimolazione: 15 Hertz, larghezza di impulso di 5 millisecondi, 5 volt e una durata di 60 s. Stimolare CN a una frequenza di 15 Hz con una larghezza di impulso di 5 ms. Nota: Un forte aumento dell'ICP può essere osservato mentre applicando la stimolazione elettrica.</li>
	<li>Consentire un intervallo di 30 minuti di riposo tra stimolazioni. Il massimo della stimolazione consecutivo di ogni animale è tre volte.</li>
</ol>4. terminare la procedura
<ol><li>Dopo la registrazione, è possibile amministrare l'eutanasia iniettando una dose eccessiva di sodio pentobarbital ad una dose di 150 mg/kg di peso corporeo. Confermare la morte dei ratti di controllo della loro pressione arteriosa. Rimuovere i ratti e pulire gli attrezzi di chirurgia.</li>
</ol>5. analisi dei dati
<ol><li>Salvare ed esportare i dati dal software. La risposta è comunemente espressa come il rapporto tra ICP sistemica pressione arteriosa media (MAP). Il rapporto del picco ICP/mappa era calcolato per valutare la funzione erettile.</li>
	<li>I dati del pool da almeno cinque ratti e analizzare con software statistico. Le differenze sono considerate statisticamente significative p < 0,05, utilizzando il test t di Student.</li>
</ol>

<ol><li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NIH+Consensus+Conference.+Impotence.+NIH+Consensus+Development+Panel+on+Impotence%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">NIH Consensus Conference. Impotence. NIH Consensus Development Panel on Impotence.</a> JAMA. 270 (1), 83-90 (1993).</li>
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<li>Giuliano, F., Bernabe, J., Rampin, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Telemetric+monitoring+of+intracavernous+pressure+in+freely+moving+rats+during+copulation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Urol%22%5BJournal%5D)">Telemetric monitoring of intracavernous pressure in freely moving rats during copulation.</a> J Urol. 152 (4), 1271-1274 (1994).</li>
<li>Bernabe, J., Rampin, O., Giuliano, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracavernous+pressure+changes+during+reflexive+penile+erections+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Behav%22%5BJournal%5D)">Intracavernous pressure changes during reflexive penile erections in the rat.</a> Physiol Behav. 57 (5), 837-841 (1995).</li>
<li>Bernabe, J., Rampin, O., Sachs, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracavernous+pressure+during+erection+in+rats%3A+an+integrative+approach+based+on+telemetric+recording%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Intracavernous pressure during erection in rats: an integrative approach based on telemetric recording.</a> Am J Physiol. 276 (2 Pt 2), R441-R449 (1999).</li>
<li>Adachi, H., Kodama, K., Ishihara, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+erectile+response+by+continuous+measurement+of+penile+diameter+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pharmacol+Toxicol+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of erectile response by continuous measurement of penile diameter in rats.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. 41 (4), 147-152 (1999).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare

Come una misura diretta della funzione erettile, ICP è un metodo affidabile di14. Permette l'acquisizione di dati su basale ICP, ICP, picco del plateau ICP, tempo per tempo di erezione e detumescenza, durata della risposta, ecc. Oltre a questi diretti parametri misurati, ci sono alcuni altri parametri di indice: (1) "T80", il tempo per raggiungere l'80% del picco ICP; (2) "D20", il tempo per ridurre al 20% del picco ICP; (3) "ΔT80", il tasso di aumento della pressione (al secondo) a T80; ...

ED è definito come l'incapacità di raggiungere o mantenere un'erezione ed è diventato un comune disturbo sessuale maschile1. Animali da esperimento sono utilizzati e forniscono modelli riproducibili per studiare la funzione erettile2. Per lungo tempo, diversi modelli di animali più grandi sono state impiegate per indagare la funzione erettile3,4,5. Anche se i roditori sono relativamente piccoli rispetto agli altri animali, sono utilizzati anche per lo studio della disfunzione erettile maschile a causa di esporre diversi vantaggi6. In primo luogo, le caratteristiche morfologiche e funzionali sessuali degli esseri umani sono ricapitolate in roditori. In secondo luogo, rispetto agli animali più grandi utilizzati negli studi di ED, roditori sono più economiche da acquistare, casa e mantenere. Modelli di roditori geneticamente modificati, terzi forniscono vantaggi negli studi comportamentali, nonché neurofisiologici riproducibili e successivi. Di conseguenza, roditori sono rapidamente diventate primarie animali utilizzati per lo studio della disfunzione erettile maschile.
Beneficiando di una priorità bassa genetica pura e coerente della cultura, modelli del roditore hanno fornito dati costantemente riproducibile5,6,7,8. Tra i numerosi studi disponibili relazionati a molti aspetti delle funzioni erettili, l'apomorfina (APO)-risposta erettile indotta e il test di risposta ICP indotto da stimolazione elettrica sono i metodi più diffusi che riflettano fedelmente erettile funzione9,10,11,12. Il test di funzione erettile indotta da APO, sviluppato da Heaton et al. 13, è un saggio biologico che utilizza il fenomeno che l'amministrazione di apomorfina ai ratti suscita erezioni e sbadigli. Come un semplice, non invadente e stabile bio-test per valutare la funzione erettile, il test di funzione erettile indotta da APO è ampiamente usato in molti studi. Tuttavia, questo test non riflette adeguatamente la qualità delle erezioni o i cambiamenti dinamici nel flusso sanguigno connesso con una risposta erettile14. Misurazioni di ICP sono stati inizialmente sviluppati da Quinlan et al. 15. in questo metodo, un catetere viene inserito nell'arteria carotica per misurare la pressione arteriosa sistemica, e un altro catetere viene inserito nel cru cavernosi per registrare l'ICP. Prima o durante l'ICP di registrazione, un agente vasoattivo e/o il campo elettrico stimolazione del ganglio pelvico principale (MPG) o CN erano spesso dato ai ratti14. Questo test è stato uno strumento affidabile per valutare le terapie e farmaci per la disfunzione erettile e sarà probabilmente utilizzato come un metodo di valutazione vitale in futuro6.
Rispetto alla prova effettuata facilmente la funzione erettile indotta da APO, registrazioni di ICP successo richiedono attenzione al dettaglio, la pratica e l'aderenza al metodo dell'operazione. Pertanto, qui, forniamo una descrizione dettagliata di come eseguire la registrazione ICP.

<table><tbody><tr><td>Animale</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ratti</td><td></td><td></td><td>Ceppo: Sprague-Dawley Età: 2-3 mesi</td></tr><tr><td>Ceppo di ratti</td><td></td><td></td><td>: Sprague-Dawley Età: 15-18 mesi</td></tr><tr><td>Nome</td><td>Azienda</td><td>Numero di catalogo</td><td>Comments</td></tr><tr><td><forte>Reagenti</soluzione salina forte></td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td></td><td>Sigma-Aldrich, S7653</td><td></td><td>sciogliere 8,5 grammi di cloruro di sodio in acqua distillata</td></tr><tr><td>Soluzione di pentobarbital sodico</td><td>Sigma-Aldrich, P3761</td><td></td><td>sciogliere 1 grammo in 100 ml di soluzione salina</td></tr><tr><td>Povidone-iodio</td><td>BTP Pharmaceutical Co. Limited</td><td></td><td>10% (V/V)</td></tr><tr><td>Etanolo</td><td>China National Pharmaceutical Group Corporation (SINOPHARM)</td><td></td><td>70% (V/V)</td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Sigma-Aldrich, H3149</td><td></td><td>scioglie 20000U eparina in 100 ml di soluzione fisiologica</td></tr><tr><td><forte>Nome</forte></td><td><forte>Azienda</forte></td><td><forte>Numero di catalogo</forte></td><td><forte>Commenti</forte></td></tr><tr><td><forte>Materiali</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ago ipodermico</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd.</td><td>Siringa 23G</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd</td><td>Rubinetto a tre vie da 10 ml</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Chengdu Strumento di fabbrica</td><td>TSK 01</td><td></td></tr><tr><td>Elettrodo</td><td>Chengdu Strumento di fabbrica</td><td>JST-1</td><td></td></tr><tr><td>Tubo catetere</td><td>Chengdu Strumento di fabbrica</td><td>PE-10, PE-50</td><td></td></tr><tr><td>Forbici operative</td><td>Shanghai fabbrica</td><td>J22010, J22020</td><td></td></tr><tr><td>Forbici operative oftalmiche</td><td>Fabbrica di apparecchiature operative di Shanghai</td><td>Y00010, Y00020</td><td></td></tr><tr><td>Pinze oftalmiche</td><td>Fabbrica di apparecchiature operative di Shanghai</td><td>JD1010, JD1020</td><td></td></tr><tr><td>MicroScissors</td><td>World Precision Instruments</td><td>WAA260</td><td></td></tr><tr><td>sutura di seta</td><td>Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd.&nbsp;</td><td>5-0</td><td></td></tr><tr><td>Name</td><td>Company</td><td>Numero di catalogo</td><td>Comments</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stimulator</td><td>Nanjing medease science and technology co. ltd (modello 4C501H)</td><td></td><td>15 Hz, impulso di 5 ms, 5 V, durata di 60 s e intervallo di 5 minuti</td></tr><tr><td>Sistema di elaborazione della raccolta del segnale multicanale</td><td>Nanjing medease science and technology co. ltd (modello 4C501H)</td><td></td><td>Modello di pressione sanguigna</td></tr><tr><td>Trasduttore di pressione</td><td>Pechino Xin Hang Xing Ye Technology Trading Company Limited (modello YP100)</td><td></td><td>40KPa</td></tr></tbody></table>

registrazione di pressione intracavernosa per valutare la funzione erettile in roditori

Intracavernosal Pressure Recording to Evaluate Erectile Function in Rodents

La disfunzione erettile (de) è definita come l'incapacità di raggiungere o mantenere un'erezione del pene, e questo è diventato un disturbo sessuale maschile prevalente. Roditori sono impiegati da molti studi per ricercare la fisiologia/patologia della funzione erettile. La funzione erettile in roditori può essere valutata misurando la pressione intracavernosa (ICP). In pratica, può essere monitorato ICP dopo stimolazione elettrica dei nervi cavernosi (CNs). La pressione arteriosa dell'arteria carotica (la pressione arteriosa media) è utilizzata come riferimento per ICP. Utilizzando protocolli di registrazione ICP, molti parametri chiave della funzione erettile possono essere misurati dalla curva di risposta di ICP. La misurazione di ICP fornisce ulteriori informazioni rispetto al test di indotto da apomorfina l'erezione del pene ed è più conveniente di monitoraggio telemetrico del corpo spugnoso del pene, rendendo questo metodo quello più popolare per valutare la funzione erettile. Tuttavia, rispetto alla prova effettuata facilmente la funzione erettile indotta da APO, registrazioni di ICP successo richiedono attenzione al dettaglio, la pratica e l'aderenza al metodo dell'operazione. In questo lavoro, un'introduzione alla registrazione di ICP in ratti è fornita per integrare la procedura in modo efficiente.

Numerosi studi hanno dimostrato che la disfunzione erettile in invecchiato maschi sta diventando un problema comune. Tuttavia, il trattamento medico è limitato nella gestione della relazione con l'invecchiamento ED16. Nei modelli del roditore di relazione con l'invecchiamento ED, molte terapie sono testate sulla funzione erettile dei ratti invecchiati. Quanto abbiamo introdotto sopra, il test di registrazione ICP poteva essere utilizzato per distinguere gli animali...

Registrazione di pressione intracavernosa (ICP) è un metodo importante per valutare la funzione erettile di animali da esperimento. Qui, un protocollo dettagliato è dimostrato per la procedura di registrazione di ICP cateterismo pene crura e quindi elettricamente stimolando i nervi cavernosi in ratti.

Registrazione di pressione intracavernosa per valutare la funzione erettile in roditori

Erectile dysfunction (ED) is defined as the inability to attain or keep an erection of the penis, and this has become a prevalent male sexual disorder. ...

L'obiettivo generale di questa procedura è testare la funzione erettile dei ratti cateterizzando il crus corpus cavernoso e registrando la pressione intracavernosa dopo la stimolazione dei nervi cavernosi. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della disfunzione erettile maschile, come ad esempio per valutare le terapie e i farmaci per la disfunzione erettile. Quindi un vantaggio di questa tecnica è che fornisce una valutazione più accurata della funzione erettile e dei riflessi, il cambiamento dinamico del flusso sanguigno associato alla risposta erettile.La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale in quanto il cateterismo è difficile da imparare perché la piccola area della tunica albuginea bianca del crus corpus cavernoso rende difficile l'inserimento dell'ago nel pene crura. Per prepararsi all'intervento chirurgico, realizzare un paio di elettrodi bipolari per le registrazioni della pressione intracavernosa. Piegare leggermente le estremità degli elettrodi e regolare la distanza tra loro a uno o due millimetri.Quindi collegare gli elettrodi allo stimolatore utilizzando due pinze a coccodrillo. Quindi, assemblare il sistema di catetere. Inn

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Gli 8-Channel High Throughput CODA sistema non invasivo della pressione arteriosa misura la pressione arteriosa in un massimo di 8 topi o ratti contemporaneamente. Questa coda polsino sistema utilizza la pressione del volume di Registrazione (VPR) per misurare la pressione arteriosa attraverso la determinazione del volume di sangue coda.

Misurazione della pressione sanguigna nei topi mediante pressione del volume di registrazione, una coda-bracciale Metodo

Una nuova tecnica per registrare le pressioni all'interno del cranio è descritto. Il metodo minimamente invasivo utilizza una fibra ottica sistema di rilevamento della pressione per misurare accuratamente la pressione endocranica (ICP) in ratti anestetizzati senza causare traumi significativi cervello. La tecnica può essere utilizzata in un'ampia gamma di modelli sperimentali.

Epidurale Misurazione della pressione intracranica in ratto utilizzando una fibra ottica trasduttore di pressione

Questo video dimostra una tecnica di studio dell'attività dei nervi simpatici renali (RSN) in risposta ai cambiamenti della pressione arteriosa nei ratti. Dopo aver collegato un catetere sensibile alla pressione all'arteria femorale, i nervi simpatici renali vengono esposti. I nervi vengono quindi sollevati su un elettrodo di registrazione e la loro attività elettrica viene registrata. Successivamente, viene iniettato un farmaco vasocostrittore per aumentare la pressione sanguigna e vengono...

Registrazione dei cambiamenti nell'attività del nervo simpatico renale in risposta alla pressione arteriosa nei ratti

Questo video dimostra l'isolamento e la stimolazione del nervo cavernoso in un ratto anestetizzato per studiare i cambiamenti della pressione sanguigna nel corpo cavernoso.

Esecuzione della stimolazione del nervo cavernoso nei ratti per misurare la pressione intracavernosa

Questo manoscritto fornisce un protocollo per l'impianto di telemetri nel topo allo scopo di misurare le pressioni intrauterine durante la gravidanza.

Telemetria intrauterina misurare mouse contrattile Pressione<em&gt; In Vivo</em

Topi anestetizzati mostrano non-fisiologica pressione arteriosa sistemica, che preclude una valutazione significativa del tono autonomo dato l'intima relazione tra pressione sanguigna e il sistema nervoso autonomo. Così, è descritto un metodo novello per attività simpatica renale contemporaneamente record del nervo e pressione del sangue con l'infusione endovenosa in topi coscienti.

Nuovo approccio per la registrazione simultanea di attività simpatica renale del nervo e pressione del sangue con l'infusione endovenosa in consapevole, topi sfrenati.

Questo protocollo descrive prima la procedura chirurgica di impianto permanente di un catetere vescicale combinato con elettrodi dello sfintere uretrale esterno e la seconda, la misurazione della funzione della vescica urinaria e uretra esterno sfintere in animali svegli impiantati.

Cistometrici ed esterni misure dello sfintere uretrale in ratti svegli con catetere impiantato ed elettrodi consentendo misurazioni ripetute

Questo studio descrive una procedura chirurgica semplificata e tecnica per l'effettuazione di stimolazione del nervo cavernoso con l'isolamento del nervo-elettrodo complesse utilizzando colla siliconica e misurazione della pressione intracavernosa.

Stimolazione del nervo cavernoso e registrazione della pressione intracavernosa in un ratto

Qui, descriviamo una configurazione per la registrazione simultanea di elettrocardiografia e pressione sanguigna intra-arteriosa (BP) in ratti sperimentali, che possono essere fatto con attrezzatura standard in strutture per animali e possono essere applicati a fisiologiche o farmacologiche studi per studiare i meccanismi patogeni o terapeutici nella medicina cardiovascolare.

Elettrocardiografia simultanea registrazione e invasiva sangue pressione misura in ratti

Questo protocollo descrive la procedura per misurare le concentrazioni di ATP nel lume della vescica in un roditore anestetizzato.

In vivo Misurazione luminale del rilascio uroteliale di ATP evocato dalla distensione nei roditori

Impara a registrare la pressione intracavernosa nei ratti per valutare la funzione erettile. Questo metodo utilizza la stimolazione dei nervi cavernosi e la cateterizzazione del corpo cavernoso per studiare la disfunzione erettile maschile.

Registrazione di pressione intracavernosa per valutare la funzione erettile in roditori

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