Name: Fase di contrasto risonanza magnetica nellarteria carotica comune ratto (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-05T15:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 2 s
Description: Impara a misurare il flusso sanguigno nell'arteria carotica comune del ratto con la risonanza magnetica a contrasto di fase non invasiva. Questa tecnica consente di studiare le alterazioni emodinamiche cardiovascolari in vivo.

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Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni dal Ministero della scienza e della tecnologia, Taiwan, sotto il numero di concessione di MOST-105-2314-B-039-044-MY2.

La cura istituzionale e uso comitati (IACUC) di China Medical University ha approvato tutte le procedure.
1. animale preparazione e monitoraggio
<ol><li>Lasciare tutti gli oggetti magneticamente suscettibili quali portafogli, chiavi, carta di credito, ecc. all'esterno della camera dello scanner prima di iniziare la preparazione degli animali per l'esame di MRI.</li>
	<li>Inizialmente anestetizzare il rat (ratto Sprague-Dawley (deviazione standard) maschio di 2 mesi, 280 – 350 g) in una scatola di induzione utilizzando una miscela di 5% isoflurane (ISO) e ossigeno (2 L/min) per 3 – 5 min, se necessario.</li>
	<li>Quando l'animale è recumbent e non mostre nessuna risposta a un pizzico di punta o coda, interrompere la somministrazione di ISO e trasferire l'animale nella stanza di scansione.</li>
	<li>Posizionare il ratto nel letto MRI in posizione prona a capofitto e consegnare 2-3% ISO attraverso un dispositivo di cono di naso per mantenere l'anestesia.</li>
	<li>Respirazione di monitor posizionando un sensore respiratoria cuscino sotto il busto dell'animale.</li>
	<li>Collegare il sensore a un sistema respiratorio e verificare per tasso respiratorio tra 40-50 battiti al minuto (bpm).</li>
	<li>Per l'acquisizione di PC-MRI cine-gated, posizionare un elettrodo ogni sulla zampa anteriore destra e la sinistra posteriore della zampa, rispettivamente (Figura 1a).</li>
	<li>Attorcigliare i cavi di elettrocardiografia (ECG).</li>
	<li>Utilizzare un supporto per testine con orecchio bar e un morso per proteggere l'animale per limitare il movimento della testa.</li>
	<li>Utilizzare un sistema o una garza pastiglie di riscaldamento ad aria per mantenere la temperatura corporea mentre nel magnete.</li>
	<li>Assicurarsi che l'onda R è chiaro sul monitor ECG (Figura 1b) e inserire l'animale nello scanner. Non c'è nessun bisogno di posizionare la bobina di superficie nella parte superiore il collo dell'animale come immagini vengono acquisite dalla bobina di volume.</li>
</ol>2. MRI acquisizione
<ol><li>Utilizzare 2 – 3% ISO per mantenere l'anestesia durante l'intera procedura di imaging. Monitorare continuamente le risposte fisiologiche e mantenere quanto più possibile costante.</li>
	<li>Avviare le scansioni MRI, una volta che l'animale è posto all'interno dello scanner e continua ad essere fisiologicamente stabile. In questo studio, utilizzare un animale di piccola T 7 sistema MRI con una resistenza di pendenza di 630 metri, ma possono essere utilizzati altri punti di forza di campo di sistemi MRI per piccoli animali.</li>
	<li>Selezionare la sequenza di "Localizzatore" dal monitor console dello scanner MRI e acquisire immagini scout lungo tutti e tre gli orientamenti utilizzando qualsiasi sequenza di acquisizione rapida delle immagini, ad esempio, l'eco di rotazione veloce, per creare coronale, assiale e immagini sagittali . Lo scopo di questi scout immagini consiste nel determinare i piani di formazione immagini.</li>
	<li>Assicurarsi che il centro della testa e del collo dell'animale è al centro del magnete. Se necessario, regolare la posizione dell'animale fino a quando non viene raggiunta la posizione corretta. Se l'animale viene riposizionata, ripetere la scansione per ottenere immagini scout.</li>
	<li>Selezionare la sequenza di "tempo di volo (TOF) angiogramma" dal monitor console dello scanner MRI e acquisire un angiogramma 2D TOF in primo luogo per accertare l'esatta posizione anatomica del CCA. Utilizzare i seguenti parametri di scansione: ripetizione tempo (TR) / echo tempo (TE) = 22/4,87 ms, flip angolo = 90°, campo visivo (FOV) = 40 × 40 mm2, dimensione della matrice = 256 × 256, spessore 0,6 mm, con il numero di eccitazione (NEX) = 1. Nota: Il nome della sequenza TOF potrebbe essere vender-specifici. L'utente può inserire questi parametri nel monitor console.</li>
	<li>Assicurarsi che la band di saturazione è "on" ed è posizionata sulla parte superiore per evitare le interferenze da segnali di venosi. Nota: Per la band di saturazione, viene solitamente con la sequenza TOF. Se la banda di saturazione non viene visualizzato sul monitor, si prega di avvisare la persona di servizio.</li>
	<li>Dopo aver individuato il CCA utilizzando l'angiogramma TOF, il piano dell'immagine del PC-MRI al centro del CCA di destinazione e orientare tale che la fetta è perpendicolare alla direzione di flusso sanguigno (Figura 2a).</li>
	<li>Assicurarsi che la respirazione sia ECG gating sono collegati al sistema MRI, mostrando il chiaro segnale del computer monitor (Figura 1b) e impostare il modulo trigger di essere "on" in "modalità operativa" dal monitor console dello scanner MRI.</li>
	<li>Confermare che le risposte fisiologiche dell'animale sono stabili prima di iniziare la scansione del PC-MRI dal monitoraggio computer (Figura 1b). Verificare che le selezioni Gate sono "on" nel monitor computer e il monitor console di scanner MRI. Nota: La fisiologia monitoraggio sistema utilizzato in questo studio è fornita dal vender. Per gli scanner più animali, i sistemi di monitoraggio di fisiologia simili sono forniti e vender-specifici.</li>
	<li>Selezionare la sequenza di sequenza di PC-MRI dal monitor console dello scanner MRI ed eseguire scansioni del PC-MRI gated utilizzando i seguenti parametri: TR/TE=15.55/4.51 ms (minimo TR e TE), flip angle = 30°, FOV = 40 × 40 mm2, dimensione della matrice = 192 × 192, fetta spessore = 2 mm, velocità di codifica (VENC) = 120 cm/s, con NEX = 8. VENC unidirezionale viene acquisito nella direzione del attraverso-piano. Nota: Il tempo di scansione è di circa 8,5 min, ma il tempo di scansione effettiva può essere leggermente diverso tra gli animali a causa della variazione nei cicli cardiaci.</li>
	<li>Ripetere i passaggi da 2.6 – 2,9 di acquisizione dell'immagine se la regione di interesse (ROI) è di essere cambiato in un'altra posizione del CCA, come ad esempio presso la biforcazione 4.</li>
	<li>Rimuovere l'animale dallo scanner e restituirlo alla sua gabbia di recupero quando la scansione è completata.</li>
	<li>Caldo l'animale con una lampada riscaldante per mantenere la temperatura corporea. Tenere la lampada almeno 15 cm dall'animale per evitare il surriscaldamento.</li>
	<li>Quando l'animale comincia a muoversi ed esibisce una risposta ad un pizzico di punta o coda, spegnere la lampada di riscaldamento.</li>
</ol>3. elaborazione dei dati
<ol><li>Salvare i dati di MRI in Digital Imaging and Communications in formato medicina (DICOM) o qualsiasi altro formato di vender-specifici. Generare la serie cine con due tipi di immagini: una grandezza immagine (anatomia) e un'immagine di fase (Figura 2b). Nota: In alcuni scanner, il terzo tipo di immagine, che potrebbe essere l'immagine di grandezza immagine × fase o il complesso-differenza (sottrazione complessa tra le due acquisizioni con diversi gradienti di velocità di codifica), viene generato. La terza immagine è dipendente dal fornitore.</li>
	<li>Pre-elaborare i dati di immagine. Segreta la fase immagine nella mappa delle velocità e correggere l'errore di offset di fase 5. Nota: L'immagine di fase ha un'unità di MR arbitraria dell'intensità del segnale invece di valori della velocità vera, ma l'intensità di segnale del signor è linearmente proporzionale alla velocità. Il massimo segnale di MRI dall'immagine fase in genere viene assegnato come valore di VENC e il minimo segnale viene assegnato il valore opposto di VENC. Vedere file di codice supplementare 1 per un esempio dello script Matlab e premere il pulsante di "eseguire".</li>
	<li>Delineare il ROI attentamente tracciando il contorno del CCA. Come l'arteria può dilatare e costruire durante le varie fasi cardiache, delineare ROIs per ogni intervallo di tempo. Calcolare il flusso di sangue integrando sopra l'arteria ROI, cioè, velocità × area. Il flusso di sangue è derivato di ogni arteria era nelle unità di mL/s. Vedere file di codice supplementare 2 per un esempio dello script Matlab e premere il pulsante di "eseguire".</li>
</ol>

<ol><li>Zakszewski, E., Schmit, B., Kurpad, S., Budde, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diffusion+imaging+in+the+rat+cervical+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Diffusion imaging in the rat cervical spinal cord.</a> J Vis Exp. (98), (2015).</li>
<li>Wise, R. G., Al-Shafei, A. I., Carpenter, T. A., Hall, L. D., Huang, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simultaneous+measurement+of+blood+and+myocardial+velocity+in+the+rat+heart+by+phase+contrast+MRI+using+sparse+q-space+sampling%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Simultaneous measurement of blood and myocardial velocity in the rat heart by phase contrast MRI using sparse q-space sampling.</a> J Magn Reson Imaging. 22 (5), 614-627 (2005).</li>
<li>Skardal, K., Espe, E. K., Zhang, L., Aronsen, J. M., Sjaastad, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Directional+Evaluation+of+Mitral+Flow+in+the+Rat+Heart+by+Phase-Contrast+Cardiovascular+Magnetic+Resonance%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Three-Directional Evaluation of Mitral Flow in the Rat Heart by Phase-Contrast Cardiovascular Magnetic Resonance.</a> PLoS One. 11 (3), e0150536(2016).</li>
<li>Peng, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase-contrast+magnetic+resonance+imaging+for+the+evaluation+of+wall+shear+stress+in+the+common+carotid+artery+of+a+spontaneously+hypertensive+rat+model+at+7T%3A+Location-specific+change%2C+regional+distribution+along+the+vascular+circumference%2C+and+reproducibility+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Phase-contrast magnetic resonance imaging for the evaluation of wall shear stress in the common carotid artery of a spontaneously hypertensive rat model at 7T: Location-specific change, regional distribution along the vascular circumference, and reproducibility analysis.</a> Magn Reson Imaging. 34 (5), 624-631 (2016).</li>
<li>Yu, H. Y., Peng, H. H., Wang, J. L., Wen, C. Y., Tseng, W. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+the+pulse+wave+velocity+of+the+descending+aorta+using+axial+velocity+profiles+from+phase-contrast+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Quantification of the pulse wave velocity of the descending aorta using axial velocity profiles from phase-contrast magnetic resonance imaging.</a> Magn Reson Med. 56 (4), 876-883 (2006).</li>
<li>Peng, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+phase-contrast+MRI+for+the+quantification+of+whole-brain+cerebral+blood+flow%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Optimization of phase-contrast MRI for the quantification of whole-brain cerebral blood flow.</a> J Magn Reson Imaging. 42 (4), 1126-1133 (2015).</li>
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<li>Neff, K. W., Horn, P., Schmiedek, P., Duber, C., Dinter, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2D+cine+phase-contrast+MRI+for+volume+flow+evaluation+of+the+brain-supplying+circulation+in+moyamoya+disease%5BTitle%5D)+AND+%22AJR+Am+J+Roentgenol%22%5BJournal%5D)">2D cine phase-contrast MRI for volume flow evaluation of the brain-supplying circulation in moyamoya disease.</a> AJR Am J Roentgenol. 187 (1), W107-W115 (2006).</li>
<li>Stalder, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+2D+and+3D+phase+contrast+MRI%3A+optimized+analysis+of+blood+flow+and+vessel+wall+parameters%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Quantitative 2D and 3D phase contrast MRI: optimized analysis of blood flow and vessel wall parameters.</a> Magn Reson Med. 60 (5), 1218-1231 (2008).</li>
<li>Dall'Armellina, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+method+for+quantification+of+regional+cardiac+function+in+mice+using+phase-contrast+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Improved method for quantification of regional cardiac function in mice using phase-contrast MRI.</a> Magn Reson Med. 67 (2), 541-551 (2012).</li>
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<li>Xu, F., Ge, Y., Lu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+quantification+of+whole-brain+cerebral+metabolic+rate+of+oxygen+%28CMRO2%29+by+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Noninvasive quantification of whole-brain cerebral metabolic rate of oxygen (CMRO2) by MRI.</a> Magn Reson Med. 62 (1), 141-148 (2009).</li>
<li>Lotz, J., Meier, C., Leppert, A., Galanski, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+flow+measurement+with+phase-contrast+MR+imaging%3A+basic+facts+and+implementation%5BTitle%5D)+AND+%22Radiographics%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular flow measurement with phase-contrast MR imaging: basic facts and implementation.</a> Radiographics. 22 (3), 651-671 (2002).</li>
<li>Pelc, N. J., Herfkens, R. J., Shimakawa, A., Enzmann, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phase+contrast+cine+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Q%22%5BJournal%5D)">Phase contrast cine magnetic resonance imaging.</a> Magn Reson Q. 7 (4), 229-254 (1991).</li>
<li>Kim, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerated+phase-contrast+cine+MRI+using+k-t+SPARSE-SENSE%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Accelerated phase-contrast cine MRI using k-t SPARSE-SENSE.</a> Magn Reson Med. 67 (4), 1054-1064 (2012).</li>
<li>Valvano, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accelerating+4D+flow+MRI+by+exploiting+low-rank+matrix+structure+and+hadamard+sparsity%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Accelerating 4D flow MRI by exploiting low-rank matrix structure and hadamard sparsity.</a> Magn Reson Med. 78 (4), 1330-1341 (2017).</li>
</ol>

Non c'è niente di divulgare.

PC-MRI è un approccio globale per la valutazione non invasiva e longitudinale del flusso sanguigno. Vi presentiamo un protocollo per l'esecuzione di PC-MRI del ratto CCA. Questa procedura è facile da eseguire in qualsiasi animale scanner MRI e dimostra buona riproducibilità.
La tecnica di PC-MRI ha guadagnato la popolarità aumentante in umano 10,11 , nonché gli studi sugli animali 4,...

La formazione immagine a risonanza magnetica (MRI) è un approccio versatile che fornisce informazioni dettagliate sulla fisiologia e strutture interne del corpo e sempre più sta usanda per la diagnosi clinica e negli studi sugli animali preclinici. Modelli animali sono vitali per una migliore comprensione di notevole implicazione clinica 1. Come modelli animali differiscono notevolmente da esseri umani per quanto riguarda l'anestesia requisiti e parametri fisiologici, ottimizzazione delle procedure di MRI per tali animali assume importanza.
MRI di contrasto di fase (PC-MRI) è un tipo specializzato di MRI che utilizza la velocità dei giri che scorre per quantificare il flusso relativi parametri quali il flusso di sangue. Con PC-MRI, mappatura schemi di flusso nelle arterie principali utilizzando modelli animali può aiutare a fare luce su patologie cardiovascolari 2. Inoltre, PC-MRI non invadente può monitorare le alternanze insite nel flusso sanguigno in condizioni fisiopatologiche 3. Queste osservazioni suggeriscono che PC-MRI è un valido approccio che può essere utilizzato nei modelli animali di malattie cardiovascolari.
In questo rapporto, descriviamo un metodo per la quantificazione del flusso sanguigno nell'arteria carotica comune (CCA) dei ratti. I due CCAs fornire la testa ed il collo con sangue ossigenato, e la malattia dell'arteria carotica è delle principali cause di ictus. Pertanto, rilevando la patologia iniziale in CCA è fondamentale. Questa procedura ha una durata di circa 15 min e potenzialmente applicabile a condizioni con alterazioni di emodinamica, tale aterosclerosi o ictus.

<table><tbody><tr><td>Sistema di risonanza magnetica per piccoli animali 7T</td><td>Bruker</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane&nbsp;</td><td>Baxter</td><td>1001936040</td><td></td></tr><tr><td>elettrocatetere ECG</td> anestetico<td>3M</td><td>2269T</td><td></td></tr><tr><td>Matlab</td><td>MathWorks</td><td></td><td>sofeware per l'elaborazione delle immagini</td></tr><tr><td>Sistema di monitoraggio e gating</td><td>SA instruments, Inc</td><td>Modello 1030</td><td></td></tr></tbody></table>

fase di contrasto risonanza magnetica nell'arteria carotica comune ratto

Phase Contrast Magnetic Resonance Imaging in the Rat Common Carotid Artery

Fase di contrasto risonanza magnetica (PC-MRI) è un approccio non invasivo che può quantificare il flusso relativi parametri quali il flusso di sangue. Gli studi precedenti hanno indicato che il flusso sanguigno anormale può essere associato con il rischio vascolare sistemico. Quindi, PC-MRI può facilitare la traduzione dei dati ottenuti da modelli animali di malattie cardiovascolari a indagini cliniche pertinenti. In questo rapporto, descriviamo la procedura per la misurazione del flusso sanguigno nell'arteria carotica comune (CCA) di ratti utilizzando cine-gated PC-MRI e discutere i metodi di analisi pertinenti. Questa procedura può essere eseguita in un animale vivo, anestetizzato e non richiede l'eutanasia dopo la procedura. I parametri di scansione proposti resa misurazioni ripetibili per il flusso di sangue, che indica eccellente riproducibilità dei risultati. La procedura di PC-MRI descritta in questo articolo può essere utilizzata per test farmacologici, valutazione patofisiologica e valutazione emodinamica cerebrale.

Corretta fetta della geometria è fondamentale per garantire il successo dell'esperimento PC-MRI. Il posizionamento di un'immagine precisa aereo produce una forma di "turno" dell'arteria (Figura 3a), e come l'angolazione aumenta, vale a dire, quando è meno perpendicolare all'arteria, la geometria risultante dell'arteria diventa Ovo, portando a maggiore volume parziale effetti (Figura 3b). Effetti di volume parziale severo...

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di misurare il flusso sanguigno nell'arteria carotica comune ratto utilizzando la risonanza magnetica di contrasto di fase non invadente.

Fase di contrasto risonanza magnetica nell'arteria carotica comune ratto

Phase contrast magnetic resonance imaging (PC-MRI) is a noninvasive approach that can quantify flow-related parameters such as blood flow. Previous ...

Questo metodo può rispondere a domande chiave in campo cardiovascolare relative all'anomalia del flusso sanguigno. Il vantaggio principale di questa tecnica è che non è invasiva. Può essere fatto in qualsiasi sistema di risonanza magnetica per piccoli animali.Le implicazioni di questa tecnica si estendono alla diagnosi delle malattie cardiovascolari perché possono far luce sulle alterazioni emodinamiche. La dimostrazione visiva di questo metodo è fondamentale, poiché la scansione attivata è importante per il successo della risonanza magnetica a contrasto di fase, ma è difficile da imparare e non è comunemente utilizzata nelle scansioni di routine. A dimostrare la procedura saranno Chiu Shao-Chieh e Hsu Shih-Ting, assistente di ricerca del nostro centro.Prima di eseguire questa tecnica, rimuovere tutti gli oggetti magneticamente sensibili, come portafogli, chiavi e carte di credito, e lasciarli fuori dalla stanza dello scanner. Dopo la dose iniziale di anestesia, posizionare il ratto nel letto MRI in posizione prona a testa in giù e somministrare dal 2 al 3% di isoflurano attraverso un cono nasale per mantenere l'anestesia. Monitora la respirazione dell'animale posizionando un sensore a cuscino respiratorio sotto il busto dell'animale e collega il sensore a un sistema di monitoraggio.Prima di procedere, controlla che la frequenza respiratoria del ratto sia compresa tra 40 e 50 battiti al minuto. Per l'acquisizione PC-MRI cine-patinata, posizionare un elettrodo sulla zampa anteriore destra e uno sulla zampa posteriore sinistra. Attorcigliare i cavi dell'elettrocardiogramma e assicurarsi che siano collegati al monitor.Quindi, posiziona il ratto in un supporto per la testa con barre auricolari e una barra per morsi per fissare l'animale e limitare il movimento della testa. Quindi, accendi il sistema di riscaldamento ad aria calda o usa delle garze per aiutare il ratto a mantenere la temperatura corporea durante la risonanza magnetica. Infine, assicurati che l'onda R sia chiara sul monitor ECG e posiziona l'animale nello scanner.Una volta che l'animale risulta fisiologicamente stabile, iniziare le scansioni MRI. Selezionare la sequenza di localizzazione dal monitor della console dello scanner MRI e acquisire immagini scout lungo tutti e tre gli orientamenti utilizzando qualsiasi sequenza di acquisizione rapida delle immagini, come l'eco di rotazione veloce, per creare immagini coronali, assiali e sagittali. Guarda le immagini degli esploratori per assicurarti che il centro della testa e del collo dell'animale sia al centro del magnete.Se necessario, regolare la posizione dell'animale fino a raggiungere la posizione corretta. Se l'animale viene riposizionato, ripetere le scansioni dell'immagine scout. Una volta che il ratto è posizionato correttamente, selezionare la sequenza dell'angiogramma a tempo di volo dal monitor della console dello scanner MRI e acquisire prima un angiogramma a tempo di volo 2D per accertare la precisa posizione anatomica dell'arteria carotide comune.Assicurarsi che la banda di saturazione sia attiva e posizionata in alto per evitare interferenze da segnali venosi. La banda di saturazione di solito viene fornita con una sequenza del tempo di volo. Se la banda di saturazione non viene visualizzata sul monitor, avvisare il tecnico dell'assistenza.Dopo aver localizzato l'arteria carotide comune utilizzando l'angiogramma a tempo di volo, puntare il piano dell'immagine dell'imager a risonanza magnetica a contrasto di fase al centro della stessa arteria e orientarlo in modo tale che la fetta sia perpendicolare alla direzione del flusso sanguigno. Assicurarsi che sia la respirazione che il gating ECG siano collegati al sistema MRI, mostrando il segnale chiaro sul computer del monitor, e impostare il modulo di attivazione in modo che sia attivo in modalità trigger dal monitor della console dello scanner MRI. A questo punto, confermare nuovamente che le risposte fisiologiche dell'animale siano stabili e verificare che le selezioni di gating siano attive sia nel computer monitor che nel monitor della console dello scanner MRI.Ricordarsi di assicurarsi che le selezioni del gating siano attive sia nel computer del monitor che in quello del monitor dello scanner MRI. Quindi, selezionare la sequenza PC-MRI dal monitor della console dello scanner MRI ed eseguire le scansioni PC-MRI gated. Ripetere questo processo per ogni area di interesse.Una volta che tutte le regioni sono state riprese, rimuovere l'animale dallo scanner e rimetterlo nella sua gabbia. Riscalda l'animale con una lampada riscaldante per mantenere la temperatura corporea. Tenere la lampada ad almeno 15 centimetri di distanza dall'animale per evitare il surriscaldamento fino a quando l'animale non inizia a muoversi e mostra una risposta a un pizzicamento della coda o delle dita.Infine, assicurati di salvare i dati della risonanza magnetica ed elaborarli come descritto nel protocollo di testo allegato. Una fetta corretta con geometria rotonda è fondamentale per garantire il successo dell'esperimento PC-MRI. All'aumentare dell'angolazione, la geometria dell'arteria risultante diventa ovoidale, portando a maggiori effetti di volume parziale e alla sovrastima del flusso sanguigno.Se è stata osservata la sezione a destra, la scansione deve essere riposizionata e ripetuta. Se posizionato correttamente, la riproducibilità intra-scansione delle variazioni del flusso sanguigno all'interno di un ciclo cardiaco dovrebbe essere elevata. Come si può notare, il flusso sanguigno raggiunge il suo massimo durante la fase sistolica e ritorna al basale durante la fase diastolica.Il flusso sanguigno nell'arteria carotide comune nei ratti è dipendente dall'età, evidenziato qui, nelle scansioni longitudinali, dalla differenza nel picco del flusso sistolico tra un ratto di due mesi e uno di quattro mesi. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come applicare la PC-MRI per misurare in modo non invasivo il flusso sanguigno nell'arteria carotide comune del ratto in meno di 30 minuti se eseguito correttamente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordarsi di collegare correttamente il sistema di iniezione.Dopo il suo sviluppo, questa tecnica ha aperto la strada alla ricerca sul campo per esplorare il meccanismo alla base di alcune malattie cardiovascolari.

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Induzione chirurgica del danno ischemico cerebrale nel ratto è un modello ampiamente utilizzato per la ricerca ictus. Qui mostriamo l'induzione di ischemia cerebrale focale da occlusione dell'arteria cerebrale media. Visualizzazione delle infarto risultante dalla colorazione istologica e la risonanza magnetica è anche mostrato.

Modello di ischemia cerebrale focale da occlusione endovascolare Sutura della arteria cerebrale media nel ratto

Fonte: Chiu, S., et al. Risonanza magnetica a contrasto di fase nell'arteria carotide comune di ratto. J. Vis. Exp. (2018). Questo video mostra la risonanza magnetica a contrasto di fase (PC-MRI) per misurare il flusso sanguigno nell'arteria carotide comune di un ratto. Dopo aver assicurato un ratto anestetizzato sul letto della risonanza magnetica e aver assicurato parametri fisiologici stabili, l'arteria carotide comune viene scansionata per acquisire immagini a intervalli definiti. Il flusso...

 Risonanza magnetica a contrasto di fase per valutare il flusso sanguigno nelle arterie di un ratto

Monitoraggio perfusione cerebrale è stata dimostrata per migliorare l'accuratezza in modelli ictus ischemico. Le difficoltà tecniche spesso limitano l'uso di questo strumento essenziale per la ricerca cerebrovascolare. In questo video, un sistema ottimizzato viene mostrato per ottenere un monitoraggio singolo o multi-sito emodinamico durante intraluminale occlusione dell'arteria cerebrale media nel ratto.

Sistema ottimizzato per il monitoraggio perfusione cerebrale nel modello Rat Stroke of intraluminale occlusione dell&#39;arteria cerebrale media

Il danno cerebrale derivante dall'ischemia cerebrale può essere esaminato in modo non invasivo e studiato nei ratti utilizzando la tomografia a emissione di positroni preclinica accoppiata con la sonda radioattiva iniettabile, 18F-fluorodesossiglucosio. Inoltre, l'uso di moderni strumenti software che includono modelli cerebrali VOI (Volume of Interest) aumenta notevolmente le informazioni quantitative raccolte da questi studi.

Imaging non invasiva e analisi di ischemia cerebrale in ratti Living Utilizzando Positron Emission Tomography con<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG

Il metodo qui presentata utilizza simultaneamente la tomografia ad emissione di positroni e la risonanza magnetica. Nel modello di ipossia-ischemia cerebrale, cambiamenti dinamici nel metabolismo del glucosio e diffusione si verificano durante e dopo l'infortunio. Il danno in continua evoluzione e irriproducibile in questo modello richiede la simultanea acquisizione se dati di imaging multimodali significativi devono essere acquisite.

Simultanea Imaging PET / MRI Durante mouse cerebrale ipossia-ischemia

Un protocollo per la stima di tempo di insorgenza ictus in un modello del ratto del colpo sfruttando la formazione immagine a risonanza magnetica quantitativa (qMRI) parametri è descritto. La procedura sfrutta la diffusione MRI per la delineazione della lesione colpo acuto e quantitativa T1 e T2 (qT1 e qT2) tempi di rilassamento per la temporizzazione del colpo.

Un protocollo di risonanza magnetica per la stima del tempo di corsa inizio nell'Ischemia cerebrale permanente

Qui, presentiamo le modifiche necessarie a un ben caratterizzato e comunemente usato piccolo indotta da cloruro ferrico (FeCl3) dell'arteria carotica ferita modello animale per l'uso in un modello di grande animale ferita vascolare. Il modello risultante può essere utilizzato per la valutazione pre-clinica prova degli interventi farmacologici e meccanici sia profilattici e trombolitici.

Trombosi dell'arteria carotica canini cloruro ferrico-indotta: Un grande modello animale di danno vascolare

Qui, presentiamo un protocollo sperimentale di imaging per la quantificazione della funzione cardiaca e della morfologia utilizzando la tomografia ad emissione di positroni ad alta risoluzione / tomografia computerizzata per piccoli animali. Vengono considerati sia i topi che i ratti, discutendo i diversi requisiti degli agenti di contrasto della tomografia computerizzata per le due specie.

Tomografia cardiaca ad emissione di positroni ad alta risoluzione/tomografia computerizzata per piccoli animali

La valutazione della stenosi dell'arteria carotide interna (ICA) si basa sulla stima della stenosi percentuale, che non tiene conto dei fattori di rischio fisiologicamente rilevanti per l'ictus, come la composizione della placca e l'emodinamica. Questo protocollo sfrutta la risonanza magnetica quantitativa e la fluidodinamica computazionale per caratterizzare la composizione e l'emodinamica della placca ICA.

Un protocollo computazionale basato sulla risonanza magnetica per l'analisi della morfologia e dell'emodinamica della placca in pazienti con stenosi dell'arteria carotidea

Un metodo pratico e preciso per misurare i parametri ceppo nel tessuto miocardico è di grande valore clinico, poiché è stato dimostrato, che il ceppo è un marker più sensibile e precedenti per la disfunzione contrattile rispetto al parametro di uso frequente EF.

Risonanza Magnetica Derivato valutazione di deformazione miocardica Utilizzo del rilevamento delle caratteristiche

Impara a misurare il flusso sanguigno nell'arteria carotica comune del ratto con la risonanza magnetica a contrasto di fase non invasiva. Questa tecnica consente di studiare le alterazioni emodinamiche cardiovascolari in vivo.

Fase di contrasto risonanza magnetica nell'arteria carotica comune ratto

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