Name: Base di un semplice flusso Cytometry Assay per determinare In Vitro dellanticorpo dipendente valorizzazione del Virus di febbre rompiossa utilizzando siero convalescente Zika Virus (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-04-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 6 s
Description: Impara un saggio di citometria a flusso per determinare l'amplificazione dipendente da anticorpi del virus Dengue utilizzando siero convalescente di Zika. Questo metodo semplice e ad alto rendimento aiuta a studiare le interazioni tra virus Zika e Dengue.

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Il progetto descritto è stato sostenuto dalla Uniformed Services University Health Sciences a JJM. Le opinioni o le affermazioni contenute nel presente documento sono quelle private degli autori e non sono per essere interpretato come ufficiale o riflettenti le viste del dipartimento della difesa, la Uniformed Services University Health Sciences o qualsiasi altra agenzia degli Stati Uniti Governo.
WGV eseguito tutti gli esperimenti e analizzato i dati; JJM progettato e supervisionato lo studio; WGW e JJM ha scritto il libro.

I campioni di siero utilizzati per illustrare il protocollo descritto qui sono stati ottenuti da macaques del reso che erano alloggiate e curate secondo locale, statale e federale politiche in un'associazione per la valutazione e l'accreditamento di laboratorio Animal Care Internazionale (AAALAC)-accreditato facility. Tutti gli esperimenti sugli animali sono stati esaminati e approvati dal comitato di uso e cura degli animali istituzionali e i campioni sono stati acquisiti attraverso un protocollo di condivisione di tessuto.
1. giorno 1
Nota: Eseguire tutti i passaggi descritti di seguito in una flusso laminare sterile biosicurezza usata per coltura tissutale in un laboratorio BSL-2.
<ol><li>Scongelare i campioni di siero a temperatura ambiente e trasferire 100 µ l di ciascun campione di siero in una provetta sterile. Inattivare con il calore a 56° C in un bagno d'acqua o un thermomixer regolabile in temperatura per 30 minuti. Effettuare diluizioni seriali 10 volte campione di siero che vanno da 1:1 a 1:1,000 utilizzando freddo RPMI-10 (RPMI con 10% siero bovino fetale).</li>
	<li>Trasferire 10 µ l di campione di siero diluito serialmente in ciascun pozzetto di una piastra di fondo V 96 pozzetti sterile. Sono due serie di pozzetti di controllo, RPMI-10 con RVP solo e senza campione di siero e RPMI-10 solo senza RVP e senza campione di siero. Impostare ogni campione di siero e RPMI-10 controlli in triplici copie.</li>
	<li>Rimuovere il Dengue-1, 2, 3 e 4 RVP da-80 ° C e scongelare loro in bagnomaria a 37 ° C. Trasferire il RVP scongelati immediatamente in ghiaccio. Ottenere RVP circa 170 µ l per ogni campione di siero (10 µ l di RVP x 3 pozzi per ogni diluizione del siero (1:1, 01:10, 1: 100, 1:1, 000) e 10 µ l di RVP x 3 pozzi per ognuna delle RPMI-10 con RVP solo controllo pozzi).</li>
	<li>Pipettare 10 µ l di RVP in ciascun bene la piastra di fondo V 96 pozzetti contenenti il campione di siero e RPMI-10 con pozzetti di controllo RVP (nessun siero). Non aggiungere RVP RPMI-10 solo (nessun campione di siero e nessun RVP) pozzi. Mix accuratamente pipettando su e giù 5 – 10 volte. Aggiungere 10 µ l freddo RPMI-10 al posto di RVP per ogni freddo RPMI-10 soltanto pozzetti di controllo (nessun campione di siero e nessun RVP).</li>
	<li>Trasferire la piastra di fondo V 96 pozzetti per un'incubatrice e incubare la piastra per 1 ora a 37 ° C in presenza di 5% CO2. Mentre la piastra a 96 pozzetti fondo V è in incubazione, pulire la superficie della cappa di biosicurezza con etanolo al 70% ed eseguire la luce UV per 15 min.</li>
	<li>Rimuovere un pallone T75 completamente confluente di cellule K562 dall'incubatrice, mescolare le celle anche utilizzando una pipetta sterile 5 mL e trasferire 5 mL di cellule in una provetta conica sterile 15 mL. Nota: Le cellule K562 sono mantenute in RPMI-10 e una subcoltura a 1 x 106/ml.</li>
	<li>Contare il numero di cellule rimuovendo 10 celle µ l dalla provetta conica sterile 15 mL e mescolare con il blu di tryphan 10 µ l. Contare le celle utilizzando un emocitometro per determinare il numero totale di cellule nella provetta conica da 15 mL.</li>
	<li>Centrifugare il 15 mL conica con cellule a ~ 1.200 x g per 10 minuti, decantare il supernatante e risospendere le cellule in caldo RPMI-10 ad una concentrazione di 80.000 cellule/30 µ l di media (2,66 x 106 cellule/ml).</li>
	<li>Rimuovere la piastra a 96 pozzetti fondo V dall'incubatrice (passo 1.6), trasferire 30 µ l di cellule K562 in ciascun pozzetto della piastra 96 pozzetti fondo V e mescolare accuratamente pipettando su e giù 5 – 10 volte. Trasferire la piastra di fondo V 96 pozzetti per un'incubatrice e incubare la piastra per 1 ora a 37 ° C in presenza di 5% CO2.</li>
	<li>Dopo incubazione per 1 h, è necessario rimuovere la piastra a 96 pozzetti fondo V dall'incubatore e centrifugare a ~ 1.200 x g per 5 minuti. Dopo la centrifugazione, decantare i media dai pozzetti ruotando la piastra capovolta in un contenitore contenente candeggina al 10%.</li>
	<li>Lavare le cellule in ogni pozzetto da loro risospendere in 125 µ l di RPMI-10 caldo, mescolare accuratamente con una pipetta e centrifugare la piastra a ~ 1.200 x g per 5 min, decantare i media girando la piastra capovolta in un contenitore contenente candeggina al 10%. Ripetere questo passaggio di lavaggio due volte.</li>
	<li>Dopo il lavaggio, aggiungere 100 µ l di caldo RPMI-10 a ciascuno mescolare bene, su e giù con la pipetta e incubare la piastra per 48 h a 37 ° C in presenza di 5% CO2.</li>
</ol>2. giorno 3
<ol><li>Rimuovere la piastra di fondo V 96 pozzetti contenenti 100 µ l di cellule e media/pozzetto dall'incubatrice e spostarlo in una cappa di biosicurezza. Usando una pipetta multicanale, miscela il contenuto di ogni bene e trasferire le cellule e media per un fondo U ben 96 piastra o per pre-etichettata provette in polipropilene da 5 mL.</li>
	<li>Sciacquare ciascun pozzetto della piastra di fondo V 96 pozzetti con 100 µ l di 1% paraformaldeide (PFA) 1 x Phosphate Buffered Saline (PBS) e trasferimento ai rispettivi pozzetti in 96 ben U-fondo piatto o tubi in polipropilene da 5 mL con etichetta dal passaggio 2.1 per produrre una finale concentrazione dello 0,5% PFA/pozzetto o tubo. Mescolare accuratamente usando una pipetta multicanale, coprire la piastra con un foglio di alluminio e lasciarlo riposare nell'incubatrice per 30 minuti per fissare le cellule.</li>
	<li>Preparare il citometro a flusso (Vedi ad esempio la Tabella materiali ) eseguendo le cellule K562 non macchiate per calibrare il lato e forward scatter insieme alle impostazioni di fluorescenza. Il canale di fluorescenza solo richiesto è FL1, come GFP è l'unica fluorescenza emessa dalle cellule. Acquisire ~ 30, 000 – 50.000 cellule da ciascun campione. Nota: Qualsiasi cytometer di flusso in grado di leggere una singola fluorescenza può essere utilizzato per l'acquisizione dei dati, come le cellule infettate con RVP solo emette fluorescenza verde per la presenza di GFP, e nessun altro canale di fluorescenza sono necessari.</li>
</ol>3. analisi dei dati
<ol><li>
Analizzare i dati acquisiti sul citofluorimetro utilizzando qualsiasi software di analisi di citometria a flusso (Vedi tabella materiali).
	<ol>
<li>Insieme al primo cancello basato su FSC-A (forward scatter – zona) vs FSC-H (forward scatter – altezza) per includere singole cellule ed escludere auto-fluorescente doppietti da analisi12. Quindi, cancello singoletto-gated celle basate su SSC-A (dispersione laterale – zona) vs FSC-A per escludere eventuali detriti autofluorescenti.</li>
		<li>Analizzare vs SSC-A cellule gated FSC-A per l'espressione della GFP basato su vs SSC-A GFP-A. Determinare la percentuale di cellule GFP + per ogni diluizione dei campioni del siero e controllo impostando un cancello intorno cellule GFP +.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Determinare la percentuale media di cellule GFP + per ogni diluizione del campione di siero e pozzetti di controllo dividendo la percentuale totale di cellule GFP + nei pozzetti triplicate per 3.</li>
	<li>Piega-potenziamento dell'infezione viene calcolato dividendo la percentuale media di cellule GFP + nei campioni del siero per ogni diluizione diviso per la percentuale media di cellule GFP + in RPMI-10 con pozzetti di controllo RVP (nessun campione di siero).</li>
	<li>Piega-valorizzazione (asse y) del grafico contro diluizione (asse x) ed effettuare analisi statistiche, facendo uso di ANOVA seguito dal test post-hoc di Tukey per i confronti multipli.</li>
</ol>

<ol><li>George, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prior+exposure+to+zika+virus+significantly+enhances+peak+dengue-2+viremia+in+rhesus+macaques%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Prior exposure to zika virus significantly enhances peak dengue-2 viremia in rhesus macaques.</a> Sci Rep. 7 (1), 10498(2017).</li>
<li>Stettler, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specificity%2C+cross-reactivity%2C+and+function+of+antibodies+elicited+by+Zika+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Specificity, cross-reactivity, and function of antibodies elicited by Zika virus infection.</a> Science. 353 (6301), 823-826 (2016).</li>
<li>Mattia, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dengue+reporter+virus+particles+for+measuring+neutralizing+antibodies+against+each+of+the+four+dengue+serotypes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Dengue reporter virus particles for measuring neutralizing antibodies against each of the four dengue serotypes.</a> PLoS One. 6 (11), e27252(2011).</li>
<li>Chiofalo, M. S., Teti, G., Goust, J. M., Trifiletti, R., La Via,, F, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subclass+specificity+of+the+Fc+receptor+for+human+IgG+on+K562%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Immunol%22%5BJournal%5D)">Subclass specificity of the Fc receptor for human IgG on K562.</a> Cell Immunol. 114 (2), 272-281 (1988).</li>
<li>Klein, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Properties+of+the+K562+cell+line%2C+derived+from+a+patient+with+chronic+myeloid+leukemia%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Properties of the K562 cell line, derived from a patient with chronic myeloid leukemia.</a> Int J Cancer. 18 (4), 421-431 (1976).</li>
<li>Kliks, S. C., Nisalak, A., Brandt, W. E., Wahl, L., Burke, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibody-dependent+enhancement+of+dengue+virus+growth+in+human+monocytes+as+a+risk+factor+for+dengue+hemorrhagic+fever%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Trop+Med+Hyg%22%5BJournal%5D)">Antibody-dependent enhancement of dengue virus growth in human monocytes as a risk factor for dengue hemorrhagic fever.</a> Am J Trop Med Hyg. 40 (4), 444-451 (1989).</li>
<li>Littaua, R., Kurane, I., Ennis, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+IgG+Fc+receptor+II+mediates+antibody-dependent+enhancement+of+dengue+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol%22%5BJournal%5D)">Human IgG Fc receptor II mediates antibody-dependent enhancement of dengue virus infection.</a> J Immunol. 144 (8), 3183-3186 (1990).</li>
<li>Wang, T. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((IgG+antibodies+to+dengue+enhanced+for+FcgammaRIIIA+binding+determine+disease+severity%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">IgG antibodies to dengue enhanced for FcgammaRIIIA binding determine disease severity.</a> Science. 355 (6323), 395-398 (2017).</li>
<li>Dejnirattisai, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-reacting+antibodies+enhance+dengue+virus+infection+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Cross-reacting antibodies enhance dengue virus infection in humans.</a> Science. 328 (5979), 745-748 (2010).</li>
<li>Kawiecki, A. B., Christofferson, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zika+virus-induced+antibody+response+enhances+dengue+virus+serotype+2+replication+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Zika virus-induced antibody response enhances dengue virus serotype 2 replication in vitro.</a> J Infect Dis. 214 (9), 1357-1360 (2016).</li>
<li>Morens, D. M., Halstead, S. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+antibody-dependent+infection+enhancement+of+four+dengue+virus+serotypes+by+monoclonal+and+polyclonal+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gen+Virol%22%5BJournal%5D)">Measurement of antibody-dependent infection enhancement of four dengue virus serotypes by monoclonal and polyclonal antibodies.</a> J Gen Virol. 71 (Pt 12), 2909-2914 (1990).</li>
<li>Perfetto, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Amine+reactive+dyes%3A+an+effective+tool+to+discriminate+live+and+dead+cells+in+polychromatic+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22J+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">Amine reactive dyes: an effective tool to discriminate live and dead cells in polychromatic flow cytometry.</a> J Immunol Methods. 313 (1-2), 199-208 (2006).</li>
<li>Priyamvada, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B+Cell+responses+during+secondary+dengue+virus+infection+are+dominated+by+highly+cross-reactive%2C+memory-derived+plasmablasts%5BTitle%5D)+AND+%22J+Virol%22%5BJournal%5D)">B Cell responses during secondary dengue virus infection are dominated by highly cross-reactive, memory-derived plasmablasts.</a> J Virol. 90 (12), 5574-5585 (2016).</li>
<li>Priyamvada, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+antibody+responses+after+dengue+virus+infection+are+highly+cross-reactive+to+Zika+virus%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Human antibody responses after dengue virus infection are highly cross-reactive to Zika virus.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (28), 7852-7857 (2016).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Flavivirus come DENV e ZIKV condividere testimonianze significative di omologia in entrambe le loro proteine strutturali e non strutturali che generano gli anticorpi che cross-reagiscono con a vicenda13,14. Queste risposte di anticorpi cross-reattivi sono state indicate per migliorare di infezione sia in vivo che in vitro con un sierotipo eterologo o altro relativi flavivirus1,2. Il pote...

Anticorpo dipendente miglioramento (ADE) dell'infezione è un processo per cui le risposte parzialmente traversa-reattivo anticorpo indotte da un sierotipo del virus migliora l'assorbimento di un altro sierotipo del virus, che conduce la viremia e replicazione virale aumentata. ADE è stato ampiamente documentato nelle infezioni di Dengue virus (DENV) dove quattro principali sierotipi sono prevalenti. In un sottogruppo di pazienti, ADE è associata con febbre emorragica Dengue (DHF). Abbiamo recentemente dimostrato che l'infezione del virus (ZIKV) di Zika indotto significativamente elevati livelli di risposte di anticorpi cross-reattivi DENV causato ADE di DENV in vitro , che probabilmente ha contribuito alla valorizzazione di DENV viremia in vivo1 , 2. analisi dell'anticorpo dipendente di potenziamento sono uno strumento prezioso per valutare la capacità degli anticorpi per migliorare secondario infezione con virus collegati e offrire preziose comprensioni nella patogenesi delle infezioni da flavivirus e informare il sviluppo di vaccini.
Il test descritto qui usa DENV RVP insieme con le cellule K562 che sono normalmente inammissibile all'infezione. RVP sono strutturalmente intatto replica incompetente DENV particelle virali che codificano un replicone sub-genomica della proteina fluorescente verde (GFP) che è espresso dopo un singolo ciclo di replica3. Come tale, le cellule che infettano con RVP reagiscono in verde e possono essere facilmente individuate mediante citometria a flusso o microscopia. La RVP usato per questo test sono stati ottenuti da fonti commerciali. Tuttavia, possono essere generati contro altri virus e usato per il test descritto in questo manoscritto. Nel frattempo, le cellule K562 sono un'espressione FcγIII-linea cellulare di leucemia che si legano alla regione Fc degli anticorpi e infettarsi in presenza di Sub-neutralizzare le concentrazioni di anticorpi4,5.
Saggi di ADE sono stati ampiamente utilizzati negli studi che studiano i fattori di rischio per grave dengue e di delineare i meccanismi di in vitro ADE6,7,8. Il dosaggio di ADE descritto qui può essere rapidamente e facilmente utilizzato per determinare la capacità del siero per migliorare l'infezione in vitro utilizzando RVP e flusso cytometry, rispetto ad altri dosaggi utilizzati attualmente, che richiedono sia la determinazione della placca formando unità (pfu) in cellule Vero o macchiatura dell'anticorpo di infetti cellule6,7,8,9,10,11, entrambi i quali sono in termini di tempo e manodopera intensivo.

<table><tbody><tr><td>DENV 1-4 RVP</td><td>Cellule molecolari integrali</td><td>RVP-501</td><td></td></tr><tr><td>K562</td><td>ATCC</td><td>CCL-243</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Corning</td><td>10-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>GE lifesceinces</td><td>SH 30910.03</td><td>10% FBS in RPMI-10</td></tr><tr><td>Penicillina-Streptomicina</td><td>MP biomedicals</td><td>1670049</td><td>100 UI Pen/mL, 100 ug Strepto/mL in RPMI-10</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Cellegro</td><td>25-060-Cl</td><td>0.025M in soluzione di aminoacidi non essenziali RPMI-10</td></tr><tr><td>MEM (100&times;)</td><td>Sigma</td><td>M7145</td><td>1x in RPMI-10</td></tr><tr><td>Piruvato di Sodio</td><td>Cellegro</td><td>25-000-Cl</td><td>1mM in RPMI-10</td></tr><tr><td>L-glutammina</td><td>Fisher Scientific</td><td>MT25005CI&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Piastre sterili con fondo a V</td><td>Thomas</td><td>Scientific 333-8001-01V</td><td></td></tr><tr><td>BD Falcon Polipropilene Provette FACS da 5 ml</td><td>VWR</td><td>60819-728</td><td></td></tr><tr><td>Piastre con fondo a U non sterili</td><td>Falcon</td><td>Ref 353910</td><td>Un'alternativa ad alta produttività alle provette FACS</td></tr><tr><td>da 5 mL, sterile, pipetta sierologica</td><td>Denville</td><td></td> P7127 <td></td></tr><tr><td>200uL</td><td>Puntali</td> per pipette sterili Denville <td>P3020 CPS</td><td></td></tr><tr><td>20uL Pipetta multicanale</td><td>Denville</td><td>P1121</td><td></td></tr><tr><td>50-200uL Pipetta multicanale</td><td>Denville</td><td>P3975-8-B</td><td></td></tr><tr><td>5-50uL Pipetta multicanale</td><td>Denville</td><td>P3975-9-B</td><td></td></tr><tr><td>20% formadeide</td><td>Tousimis</td><td>&nbsp;#1008B</td><td></td></tr><tr><td>Bagnomaria</td><td>ThermoFisher</td><td>TSCOL35</td><td></td></tr><tr><td>termomiscelatore</td><td>Eppendorf</td><td>2231000387</td><td>Un'alternativa a un bagnomaria per l'inattivazione del calore</td></tr><tr><td>Incubatore a CO2</td><td>ThermoFisher</td><td>13-998-213</td><td></td></tr><tr><td>Etanolo</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E7023</td><td></td></tr><tr><td>Candeggina liquida</td><td>Fisher</td><td>Scientific NC9724348</td><td></td></tr><tr><td>Flowjo 9.8</td><td>TreeStar, Inc.</td><td></td><td>software di analisi per citometria a flusso</td></tr><tr><td>BD FACSDiva 6.1.2</td><td>Becton Dikinson</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD LSR II citometro a flusso</td><td>Becton Dikinson</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Liquid Bleach</td><td>Fisher</td><td>Scientific NC9724348</td><td></td></tr></tbody></table>

base di un semplice flusso cytometry assay per determinare in vitro dell'anticorpo dipendente valorizzazione del virus di febbre rompiossa utilizzando siero convalescente zika virus

A Simple Flow Cytometry Based Assay to Determine In Vitro Antibody Dependent Enhancement of Dengue Virus Using Zika Virus Convalescent Serum

Il potenziamento dipendente dell'anticorpo dell'infezione ha dimostrato di giocare un ruolo importante nella patogenesi virale Dengue. Tradizionale analisi che misurano la capacità di anticorpi o siero per migliorare infezione nelle linee cellulari impermissible hanno fatto affidamento sull'utilizzo uscita virale nei media seguiti da saggi di placca per quantificare l'infezione. Più recentemente, queste analisi hanno esaminato l'infezione di febbre rompiossa virus (DENV) nelle linee cellulari usando gli anticorpi fluorescente contrassegnati. Entrambi questi approcci presentano limitazioni che limitano l'uso molto diffuso di queste tecniche. Qui, descriviamo un'analisi semplice in vitro usando Dengue virus reporter particelle virali (RVP) che esprimono la proteina fluorescente verde e le cellule K562 per esaminare potenziamento dipendente dell'anticorpo (ADE) dell'infezione di DENV usando il siero che è stato ottenuto da rhesus macachi 16 settimane dopo l'infezione con il virus di Zika (ZIKV). Questa tecnica è affidabile, comporta la minima manipolazione delle cellule, non implicano l'uso di virus competente replica dal vivo e può essere eseguita in un formato di throughput elevato per ottenere una lettura quantitativa mediante citometria a flusso. Inoltre, questo test può essere facilmente adattato per esaminare aumento dipendente dell'anticorpo (ADE) di altre infezioni da flavivirus come il virus della febbre gialla (YFV), virus dell'encefalite equina giapponese (JEEV), virus del Nilo occidentale (WNV) ecc dove RVP sono disponibili. La facilità di configurazione di test, analisi dei dati e interpretazione dei risultati rende altamente favorevole alla maggior parte delle impostazioni di laboratorio.

I sieri da 4 rhesus macaques erano raccolti a 16 settimane dopo l'infezione con ZIKV e testato per il loro potenziale migliorare DENV-1, 2, 3 e 4 infezione in cellule K562. Gli animali hanno avuti viremia di picco di ~ 1 x 105 copie di ZIKV RNA/mL di plasma dal giorno 3 dopo infezione che è sceso a livelli che erano sotto il limite di rilevazione di 7 giorni dopo l'infezione. No la viremia è stata rilevata nel plasma post-all'infezione 16 settimane. L'analisi RVP è stata esegui...

Descriviamo un protocollo semplice e facile per misurare il miglioramento dipendente dell'anticorpo dell'infezione di siero convalescente di Zika virus utilizzando le particelle virali di Reporter di virus della Dengue.

Base di un semplice flusso Cytometry Assay per determinare In Vitro dell'anticorpo dipendente valorizzazione del Virus di febbre rompiossa utilizzando siero convalescente Zika Virus

Antibody dependent enhancement of infection has been shown to play a major role in Dengue viral pathogenesis. Traditional assays that measure the capacity ...

L'obiettivo generale di questa procedura è determinare la capacità dei sieri raccolti dai macachi rhesus infettati dal virus Zika di mediare l'aumento anticorpale dipendente dell'infezione da virus dengue in vitro. Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave relative al potenziamento anticorpale dipendente dell'infezione da dengue causato da anticorpi cross-reattivi indotti dal virus Zika. Il vantaggio principale di questa tecnica è che è alta, semplice e facile da eseguire.A dimostrare questa procedura sarà William Valiant, uno studente laureato in malattie infettive emergente, nel mio laboratorio. Iniziare scongelando i campioni di siero a temperatura ambiente. Una volta scongelato, trasferire 100 microlitri di ciascun campione di siero in una provetta sterile, scaldare e attivare per 30 minuti a 56 gradi Celsius.Successivamente, effettuare diluizioni seriali di 10 volte del campione di siero che vanno da uno a uno a uno, a uno-mille in RPMI 10 freddo. Quindi trasferire 10 microlitri di ciascun campione di siero diluito nei pozzetti di una piastra sterile con fondo a V a 96 pozzetti. Successivamente, scongelare le particelle virali di dengue una, due, tre e quattro pa

a-simple-flow-cytometry-based-assay-to-determine-vitro-antibody

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Immunologia e Infezioni

Source: Asad, S., et al. Quantification of Antibody-dependent Enhancement of the Zika Virus in Primary Human Cells. J. Vis. Exp. (2019)This video demonstrates antibody-dependent enhancement of Zika virus infection in human primary macrophages, using dengue antibody–virus complexes to model how cross-reactive antibodies facilitate Fcγ receptor–mediated viral entry and replication for studying infection mechanisms and immune interactions.

Antibody-Dependent Enhancement of Zika Virus by Dengue Antibodies in Human Primary Macrophages

Fonte: Contreras, D., et al.Sistema di coltura cellulare infettiva per il virus Zika e l'effetto profilattico in vitro degli interferoni. J. Vis. Exp. (2016)Il video dimostra il rilevamento degli intermedi di RNA a doppio filamento del virus Zika in cellule epiteliali infette mediante immunocitochimica. Le cellule infette vengono fissate e quindi bloccate con una soluzione di blocco. Vengono aggiunti l'anticorpo primario e quello secondario. I nuclei vengono colorati con un colorante...

Rilevazione degli intermedi di replicazione del dsRNA del virus Zika tramite immunocitochimica

Questo video mostra un test per misurare l'aumento anticorpo-dipendente (ADE) dell'infezione da virus Dengue utilizzando il siero convalescente del virus Zika. Il test utilizza particelle virali reporter di Dengue (RVP) che codificano per una proteina fluorescente verde. Gli anticorpi sierici contro il virus Zika reagiscono in modo incrociato con gli RVP per formare un complesso. Gli anticorpi legati aumentano l'assorbimento di RVP da parte delle cellule che esprimono il recettore Fc, che viene...

Un test in vitro per esaminare il potenziamento anticorpo-dipendente dell'infezione virale

Il video mostra un test in vitro per lo screening degli interferoni con attività antivirale contro il virus Zika, un patogeno umano. All'interno della cellula ospite, il virus Zika subisce la moltiplicazione dopo l'internalizzazione, infettando le cellule vicine e creando zone distinte o placche virali. L'interferone di tipo I, agendo come agente antivirale, ostacola la moltiplicazione del virus, prevenendo così la formazione di placche virali nel monostrato della cellula ospite.

Un test in vitro per lo screening degli interferoni come potenti inibitori della crescita del virus Zika

Il virus Zika (ZIKV), un patogeno emergente, è collegato ad anomalie dello sviluppo fetale e microcefalia. La creazione di un efficace sistema di coltura cellulare infettiva è fondamentale per gli studi sulla replicazione di ZIKV e per lo sviluppo di vaccini e farmaci. In questo studio, vengono illustrati e discussi vari saggi virologici relativi alla ZIKV.

Zika Virus System infettiva coltura cellulare e la<em&gt; In Vitro</em&gt; Effetto profilattico di interferoni

Corrente multiplexed diagnostica per rilevare virus dengue, chikungunya e Zika richiedono preparazione campioni complessi e costosi strumentazione e sono difficili da utilizzare in ambienti di risorse in esaurimento. Vi mostriamo una diagnostica che utilizza amplificazione isotermica con sonde displaceable strand mirate per rilevare e distinguere questi virus con alta sensibilità e specificità.

Amplificazione isotermica multiplex basato su piattaforma diagnostica per rilevare Zika, Chikungunya e Dengue 1

Un protocollo per valutare le risposte delle cellule T antigene-specifiche negli organi nuova di Ifnar1- / - modello murino per l'infezione del virus (ZIKV) di Zika è descritto. Questo metodo è fondamentale per indagare i meccanismi cellulari della protezione e immunopatogenesi di vaccini ZIKV ed è inoltre utile per la loro valutazione di efficacia.

Valutazione delle risposte a cellula T Zika Virus-specifici in organi di nuova di Ifnar1 infetti- / - Mice

Descriviamo un metodo per valutare l'effetto di pre-esistenti immunità contro il virus della dengue sull'infezione del virus di Zika utilizzando siero umano, cellule umane primarie e quantificazione di infezione da reazione a catena della polimerasi quantitativa in tempo reale.

Quantificazione di esaltazione anticorpo-dipendente del Virus in cellule umane primarie Zika

Il presente protocollo descrive la propagazione del virus Zika (ZIKV) in cellule renali di scimmia verde africana Vero e la quantificazione di ZIKV utilizzando metodi di immunorilevazione colorimetrica basati su cellule nei formati a 24 e 96 pozzetti (high throughput).

Propagazione del virus e quantificazione colorimetrica cellulare

Qui, dimostriamo l'uso dell'impedenza elettrica basata su cellule (CEI) come metodo molto semplice e diretto per studiare l'infezione e la replicazione del virus Zika nelle cellule umane in tempo reale. Inoltre, il saggio CEI è utile per la valutazione di composti antivirali.

Piattaforma di impedenza elettrica basata su cellule per valutare gli inibitori del virus Zika in tempo reale

Impara un saggio di citometria a flusso per determinare l'amplificazione dipendente da anticorpi del virus Dengue utilizzando siero convalescente di Zika. Questo metodo semplice e ad alto rendimento aiuta a studiare le interazioni tra virus Zika e Dengue.

Base di un semplice flusso Cytometry Assay per determinare In Vitro dellanticorpo dipendente valorizzazione del Virus di febbre rompiossa utilizzando siero convalescente Zika Virus (Video) | JoVE Journal

Base di un semplice flusso Cytometry Assay per determinare In Vitro dell'anticorpo dipendente valorizzazione del Virus di febbre rompiossa utilizzando siero convalescente Zika Virus

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