Name: Angiografia bidimensionale a raggi x per esaminare bene struttura vascolare utilizzando un composto di iniezione gomma Silicone (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 26 s
Description: Impara l'angiografia bidimensionale a raggi X per esaminare le strutture vascolari fini utilizzando un composto di iniezione di gomma siliconica. Questo metodo migliora la pianificazione chirurgica in chirurgia ricostruttiva.

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Questo lavoro (2017R1A2B1006403) è stato sostenuto dal programma di ricercatore di metà carriera attraverso una sovvenzione di National Research Foundation, finanziata dal governo coreano (Ministero delle scienze e TIC).

Tutte le procedure, tra cui soggetti animali, sono state approvate dal istituzionale Animal Care e uso comitati di Seoul National University Hospital (IACUC n ° 10-0184). Questo protocollo è ottimizzato per la ricerca sul sistema vascolare del lembo. Questo esempio è basato su un modello di quattro-territorio lembi nei nostri rapporti precedenti.
1. stabilire una condizione di falda
Nota: È importante generare un cambiamento vascolare in un modello di lembi di ratto 4 o 5 giorni prima visibile stima6,7.
<ol><li>Utilizzare ratti Sprague-Dawley 7-settimana-vecchio peso di 200-250 g.</li>
	<li>Anestetizzare i ratti con isoflurano a 3-5% per induzione e 2-2,5% per la manutenzione. Eseguire un test di riflessione punta pizzico ritiro per confermare che la profondità dell'anestesia è sufficiente.  Iniettare meloxicam 5mg/kg per via sottocutanea per alleviare il dolore.</li>
	<li>Radere il tronco utilizzando un tagliatore di capelli degli animali e la crema depilatoria (tioglicolico acido, 80%). Preparare un campo operatorio sterile con povidone-iodio 10% e un telino sterile per mantenere una condizione sterile durante le procedure. Applicare un unguento veterinario agli occhi per prevenire la secchezza. Mantenere tutti gli strumenti in condizioni sterili.</li>
	<li>Stabilire l'appropriato la condizione di falda.<ol>
<li>Contrassegnare un disegno della falda della circonferenza della pelle dall'addome inferiore alla parte posteriore, misura 4 x 12 cm. individua il centro della falda a metà strada tra il processo xifoideo e il pene (Figura 1).</li>
		<li>Effettuare l'incisione come segnato con una lama chirurgica.</li>
		<li>Sezionare la falda utilizzando le forbici, tra cui il carnosus del pannicolo e della pelle.</li>
		<li>Sezionare intorno il pedicle vascolare [navi (DCI) bilaterali iliache circonflesse profonda e bilaterali vasi superficiali (SIE) epigastrici inferiori] al basso addome ed esporre il pedicle vascolare utilizzando una lente di ingrandimento chirurgico e strumenti di microchirurgia.</li>
		<li>Mantenere o legare i vasi a seconda le condizioni desiderate.</li>
		<li>Dividere il lembo lungo la linea mediana dorsale usando una lama chirurgica o forbici.</li>
		<li>Appoggiare il lembo nella sua posizione originale e fissarla con una cucitrice di pelle.</li>
		<li>Applicare un unguento d'attualità per la ferita chirurgica per 3 giorni e fornire analgesia postoperatoria con la somministrazione di meloxicam ad una dose di 5 mg/kg per via orale una volta al giorno per 3 giorni.</li>
		<li>Confermare che il ratto riprende conoscenza sufficiente per mantenere decubito sternale. Restituire il topo nella gabbia e spostarlo nell'area di alloggiamento. Applicare un elisabettiano collare per ogni ratti.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. preparazione degli strumenti
<ol><li>Preparare un catetere 24G e un rubinetto a tre vie.</li>
	<li>Preparare la pinza mosquito, piccole forbici, un bisturi chirurgico e una lama chirurgica.</li>
	<li>Preparare l'agente angiografica (iniezione di gomma del silicone composto).<ol>
<li>L'agente di colore composto con il diluente in Coppa di raccolta del campione sterile si fondono. Garantire una quantità uguale di peso: 15 mL di agente di colore composto e 15 mL di diluente MV a un rat (ratto Sprague-Dawley, 200-250 g).</li>
		<li>Aggiungere l'agente indurente al 5% in peso o volume della miscela soluzione immediatamente prima dell'iniezione: 1,5 mL di catalizzatore in un rat (ratto Sprague-Dawley, 200-250 g).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. ratto arteria preparazione
<ol><li>Utilizzare isoflurano per anestetizzare i ratti (3-5% per induzione) e 2-2,5% per la manutenzione. Eseguire un test di riflessione punta pizzico ritiro per confermare che la profondità dell'anestesia è sufficiente.</li>
	<li>Radere il collo utilizzando un tagliatore di capelli degli animali e la crema depilatoria (tioglicolico acido, 80%).</li>
	<li>Esporre l' arteria carotica comune10.<ol>
<li>Fare un'incisione mediana di 2 cm tra le scapole.</li>
		<li>Sezionare più profondamente con pinza mosquito e forbici smussate fino a quando il complesso della ghiandola salivaria è esposto.</li>
		<li>Ritrarre la ghiandola salivaria e senza mezzi termini sezionare il muscolo omohyoid longitudinalmente.</li>
		<li>Sezionare intorno all'arteria carotica comune.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Agganciare i lati cefalico e caudali dell'arteria carotica comune con seta nera e fissarlo.<ol>
<li>Fare una cravatta sulla sutura prossimale e mantenere la trazione per mantenere l'ingorgo dell'arteria.</li>
		<li>Preparare una sutura seta sul lato caudale per il fissaggio del catetere 24G.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. inserimento di una canula
<ol><li>Incannulare l'arteria carotica preparato utilizzando un catetere di 24G.</li>
	<li>Stringere il legame pre-fatto nella parte caudale e fare attenzione a non rimuovere il catetere durante l'iniezione.</li>
	<li>Preparare l'agente indurente (punto 1.3.2).</li>
	<li>Connettersi in modo sicuro il rubinetto a tre vie il catetere inserito.<ol>
<li>Confermare rigurgitato sangue nel catetere aggiungendo pressione negativa utilizzando una siringa vuota.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. iniezione
<ol><li>Iniettare l'iniezione di gomma del silicone composto fino a quando ha cambiato il colore dell'occhio e del piede. Nota: Il cambiamento di colore deve essere visualizzato come il procede fluido iniettato (importo dell'iniezione è circa 25-30 mL per ogni ratto).</li>
	<li>Bloccare il rubinetto a tre vie e attendere che l'agente si solidifica.<ol>
<li>Fare attenzione a non contaminare con l'agente, in particolare quando togliere la siringa al rubinetto a tre vie. Utilizzare una barriera protettiva come garza o vinile per separare lo spazio di iniezione dall'ambiente circostante. Attenzione: Eventuali contaminazioni rende difficile analizzare l'immagine angiografica perché il composto è radio-opaco.</li>
		<li>Confermare la cessazione del battito cardiaco e la respirazione. Interrompere l'anestesia.</li>
		<li>Osservare il tasso di durezza con l'agente rimanente come riferimento (circa 15 min necessari).</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. raccolta del campione
<ol><li>Fare un'incisione con una lama chirurgica per il carnosus del pannicolo 1cm di fuori della falda per evitare danni a qualsiasi struttura vascolare all'interno della ribalta.</li>
	<li>Sezionare lungo il piano precedentemente dissecato dal passaggio 1.4 (sotto l'aereo di carnosus del pannicolo) e raccogliere il tessuto compresa la patta e il pedicle vascolare con le forbici (la struttura vascolare è incluso nella falda).</li>
	<li>Legare il pedicle della falda utilizzando una sutura seta 5 / 0 e separare il lembo dal corpo. Fare attenzione a non danneggiare la struttura vascolare.</li>
</ol>7. catturare l'immagine angiografica
<ol><li>Stendere l'esemplare, assicurando che non piegare e posizionare delicatamente il telo chirurgico usando il forcipe.</li>
	<li>Prendere un'immagine di radiografia.<ol>
<li>Trasferire il campione che si trova sulla cassetta del film al campione spazio di carico.</li>
		<li>Impostare il sistema a raggi x dei tessuti molli a 60 kVp, 5 mA e 5 s esposizione.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Sviluppare la pellicola in una camera oscura utilizzando una macchina di sviluppo automatico.</li>
	<li>Eseguire la scansione della pellicola alla massima risoluzione possibile.</li>
</ol>8. analizzare l'immagine6,7,11
<ol><li>Distinguere le arterie e le vene basate sulla continuità del flusso e diametro.<ol>
<li>A partire dall'afflusso dell'arteria del pedicle e messa a fuoco sulla nave di destinazione in esame.</li>
		<li>Misurare i diametri con software aprendo prima l'immagine.<ol>
<li>Fare clic sul pulsante dritto e disegnare una linea nella barra della scala è la stessa lunghezza.</li>
			<li>Apri il analizzare | Impostare la scala menu e immettere il valore della barra della scala in conosciuto distanza.</li>
			<li>Fare clic sul pulsante dritto e tracciare una linea sulla nave di cui il diametro deve essere misurata.</li>
			<li>Apri il analizzare | Misura menu e confermare la lunghezza.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
	<li>Analizzare il pattern vascolare considerando l'area di sopravvivenza della falda.</li>
</ol>

<ol><li>Taylor, G. I., Minabe, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Angiosomes+of+the+Mammals+and+Other+Vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">The Angiosomes of the Mammals and Other Vertebrates.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 89 (2), 181-215 (1992).</li>
<li>Taylor, G. I., Palmer, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+vascular+territories+%28angiosomes%29+of+the+body%3A+experimental+study+and+clinical+applications%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Plastic+Surgery%22%5BJournal%5D)">The vascular territories (angiosomes) of the body: experimental study and clinical applications.</a> British Journal of Plastic Surgery. 40 (2), 113-141 (1987).</li>
<li>Geddes, C. R., Morris, S. F., Neligan, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perforator+flaps%3A+evolution%2C+classification%2C+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Plastic+Surgery%22%5BJournal%5D)">Perforator flaps: evolution, classification, and applications.</a> Annals of Plastic Surgery. 50 (1), 90-99 (2003).</li>
<li>Saint-Cyr, M., Schaverien, M. V., Rohrich, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perforator+Flaps%3A+History%2C+Controversies%2C+Physiology%2C+Anatomy%2C+and+Use+in+Reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Perforator Flaps: History, Controversies, Physiology, Anatomy, and Use in Reconstruction.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 123 (4), 132-145 (2009).</li>
<li>Lie, K. H., Taylor, G. I., Ashton, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogen+peroxide+priming+of+the+venous+architecture%3A+a+new+technique+that+reveals+the+underlying+anatomical+basis+for+venous+complications+of+DIEP%2C+TRAM%2C+and+other+abdominal+flaps%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Hydrogen peroxide priming of the venous architecture: a new technique that reveals the underlying anatomical basis for venous complications of DIEP, TRAM, and other abdominal flaps.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 133 (6), 790-804 (2014).</li>
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<li>Chang, H., Minn, K. W., Imanishi, N., Minabe, T., Nakajima, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+Venous+Superdrainage+on+a+Four-Territory+Skin+Flap+Survival+in+Rats%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Effect of Venous Superdrainage on a Four-Territory Skin Flap Survival in Rats.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 119 (7), 2046-2051 (2007).</li>
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<li>Feng, J., Fitz, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+the+carotid+artery+and+jugular+vein+to+perform+hemodynamic+measures%2C+infusions+and+blood+sampling+in+a+conscious+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Catheterization of the carotid artery and jugular vein to perform hemodynamic measures, infusions and blood sampling in a conscious rat model.</a> Journal of Visualized Experiments. (95), e51881(2015).</li>
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<li>Schaverien, M., Saint-Cyr, M., Arbique, G., Rohrich, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-+and+four-dimensional+arterial+and+venous+anatomies+of+the+thoracodorsal+artery+perforator+flap%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Three- and four-dimensional arterial and venous anatomies of the thoracodorsal artery perforator flap.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 121 (5), 1578-1587 (2008).</li>
<li>Schaverien, M., Saint-Cyr, M., Arbique, G., Hatef, D., Brown, S. A., Rohrich, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-+and+Four-Dimensional+Computed+Tomographic+Angiography+and+Venography+of+the+Anterolateral+Thigh+Perforator+Flap%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery%22%5BJournal%5D)">Three- and Four-Dimensional Computed Tomographic Angiography and Venography of the Anterolateral Thigh Perforator Flap.</a> Plastic and Reconstructive Surgery. 121 (5), 1685-1696 (2008).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Iniezione di gomma del silicone composto angiografia può essere eseguita facilmente, non richiede attrezzature costose e offre molti vantaggi. In contrasto con le valutazioni preoperative ed intraoperative di pazienti, esperimenti con animali e cadaveri possono fornire dettagli su condizioni specifiche, consentendo più vari e approfonditi studi. Il modello di falda utilizzando ratti è particolarmente prezioso per i clinici perché cambiamenti in vari contesti possono essere osservati prima applicazioni cliniche<sup class=...

Esaminando le strutture vascolari quali le arterie e le vene è un'importante area di interesse, in particolare nella chirurgia ricostruttiva. In questo campo, flap chirurgia ampiamente è effettuato. Pertanto, la formazione immagine angiografica attivamente è usata per studiare il territorio di falda, angiosome e rifornimento vascolare del tessuto fresco1. In particolare, ci sono stati continui sforzi di osservare il vasculature pregiato, tra cui vasi fini quali perforatori (vasi emergenti da navi in profondità raggiungendo la pelle) e soffocare le navi (navi tra adiacente angiosomes di collegamento)2 . Questi due tipi di vasi sono importanti nel campo di ricostruzione di perforator flap e sono l'obiettivo principale della ricerca3,4.
Vari materiali sono utilizzati in angiografia. In primo luogo, non c'è inchiostro di India, che è utile nell'osservare l'anatomia lorda dei vasi sanguigni. Tuttavia, è radiotrasparente, quindi non è possibile ottenere immagini angiografiche. I materiali radiopachi più comunemente utilizzati sono ossido di piombo e bario. Tuttavia, la tossicità è uno svantaggio cruciale dell'ossido di piombo, ed è scomodo da usare quando miscelato con acqua a causa della sua forma in polvere. Il bario è privo di tossicità; Tuttavia, non è molto fattibile, come dovrebbe essere usato dopo la diluizione. Entrambi questi materiali radiopachi non possono attraversare i capillari; Pertanto, se una struttura intera vascolare deve essere analizzata, è necessario iniettare loro nell'arteria e vena separatamente5. Inoltre, i due materiali causano perdita della tintura durante la dissezione anatomica, così essi dovrebbero essere combinati con gelatina. Miscele di ossido-gelatina e gelatina di bario-piombo prendono almeno un giorno a solidificare1,6,7.
Angiografia di tomografia computata (CT) è un altro metodo ampiamente utilizzato e può aiutare nella visualizzazione di strutture tridimensionali (3D)8. Tuttavia, le vene non possono essere visualizzati in modo efficace5. In questa modalità, chiara visualizzazione del vasculature bene quali le vene choke è difficile, se non quando utilizzando apparecchiature specifiche. La necessità di apparecchiature più costosa può essere uno svantaggio, quindi l'angiografia di CT non può essere utilizzato in tutti i laboratori. Al contrario, il sistema a raggi x dei tessuti molli sono relativamente a buon mercato e possono operare più facilmente. Questo sistema è ottimo per la visualizzazione dei tessuti molli e in grado di fornire immagini di tessuto molle di qualità superiore rispetto al semplice sistema di raggi x. Anche se il tessuto molle sistema di raggi x stesso non può mostrare le immagini 3D, può aiutare a visualizzare bene strutture vascolari più chiaramente che l'angiografia di CT. Di conseguenza, abbiamo usato il sistema a raggi x dei tessuti molli in molti esperimenti, in particolare in vari modelli di falda e anatomia di base2,9.
Infine, l'uso di silicone gomma iniezione composto angiografia ha numerosi vantaggi. Perché sono preparati vari agenti di colore, che può essere iniettato e visualizzare colori distinguibili come inchiostro di India. Pertanto, allo stesso tempo studiare l'anatomia lorda e l'angiografia è possibile. Può sia passare attraverso capillari e consentire vene possano essere visualizzati, rendendo possibili gli esami di fine strutture vascolari. A differenza della miscela di gelatina, l'iniezione di gomma del silicone composto si solidifica entro un breve periodo di tempo, circa 15 minuti, senza ulteriori procedure. L'intero processo è riassunta nell'immagine schematica in Figura 1.

<table><tbody><tr><td>MICROFIL Composti per iniezione di gomma siliconica</td><td>Flow Tech Inc.</td><td>MV-112</td><td>Colorante bianco</td></tr><tr><td>MICROFIL Composti per iniezione di gomma siliconica</td><td>Flow Tech Inc.</td><td>MV-117</td><td>Agente colorante arancione</td></tr><tr><td>MICROFIL Composti di iniezione di gomma siliconica</td><td>Flow Tech Inc.</td><td>MV-120</td><td>Colorante blu</td></tr><tr><td>MICROFIL Composti per iniezione di gomma siliconica</td><td>Flow Tech Inc.</td><td>MV-122</td><td>Agente colorante giallo</td></tr><tr><td>MICROFIL Composti per iniezione di gomma siliconica</td><td>Flow Tech Inc.</td><td>MV-130</td><td>Colorante rosso</td></tr><tr><td>MICROFIL Composti di iniezione di gomma siliconica</td><td>Flow Tech Inc.</td><td>MV-132</td><td>Agente trasparente</td></tr><tr><td>MICROFIL Composti per iniezione di gomma siliconica</td><td>Flow Tech Inc.</td><td>Diluente MV</td><td>Diluente</td></tr><tr><td>MICROFIL CP-101 per preparati per la corrosione della colata</td><td>Flow Tech Inc.</td><td>CP-101</td><td>Agente indurente</td></tr><tr><td>SOFTEX Pellicola a raggi X che fotografa l'attrezzatura di ispezione</td><td>SOFTEX</td><td>CMB-2</td><td>Sistema a raggi X per tessuti molli</td></tr><tr><td>Pellicola&nbsp;</td><td>Fujifilm</td><td>Pellicola Radiografica Industriale (FR 12x16.5cm)</td><td></td></tr><tr><td>Macchina di Sviluppo Automatico</td><td>Fujifilm</td><td>FPM 2800</td><td></td></tr><tr><td>Rat&nbsp;</td><td></td><td></td><td>Ratto Sprague-Dawley del peso di 200-250 g</td></tr><tr><td>Rubinetto</td><td></td><td></td><td></td>a tre vie</tr><tr><td>Catetere</td><td></td><td></td><td></td>calibro 24</tr><tr><td>Immagine J</td><td>National Institutes of Health&nbsp;</td><td></td><td>https://imagej.nih.gov/ij/</td></tr></tbody></table>

angiografia bidimensionale a raggi x per esaminare bene struttura vascolare utilizzando un composto di iniezione gomma silicone

Two-Dimensional X-Ray Angiography to Examine Fine Vascular Structure Using a Silicone Rubber Injection Compound

L'angiografia è uno strumento essenziale per lo studio delle strutture vascolari in vari campi di ricerca. Lo scopo di questo studio è quello di introdurre un semplice metodo angiografico per esaminare la fine struttura vascolare del tessuto non fissato, fresco utilizzando un silicone gomma iniezione composto del tessuto molle e sistema a raggi x. Questo studio si concentra particolarmente sui territori di falda utilizzate in chirurgia ricostruttiva. Questo studio si avvale di angiografia con un'iniezione di gomma del silicone composto in varie condizioni sperimentali utilizzando ratti Sprague-Dawley. In primo luogo, 15 mL di MV composto e 15 mL di diluente è misto. Quindi, 1,5 mL dell'agente indurente è preparato e un catetere di 24G è cannulato nell'arteria carotica comune del ratto. Un rubinetto a tre vie è quindi connesso a un catetere, e l'agente radiopaco, dopo essere stato miscelato con l'agente indurente preparato, viene iniettato immediatamente senza alcuna perdita. Infine, come l'agente si solidifica, il campione è raccolto, e un'immagine angiografica è ottenuta utilizzando un sistema a raggi x dei tessuti molli. Questo metodo indica che l'angiografia di alta qualità mostrando bene strutture vascolari possa essere facilmente e semplicemente ottenuto all'interno in un breve periodo di tempo.

Seguendo questo protocollo, è stata esaminata la vascolarità falda del ratto Sprague-Dawley. Un lembo di pelle della circonferenza dall'addome inferiore sul retro che ha misurato 4 x 12 cm è stato contrassegnato basato sulle nostre precedenti relazioni. Ogni esemplare era in una condizione vascolare diversa.
Tutti i lembi sono stati elevati basato sulla vena e dell'arteria iliaca circonflessa profonda (DCIA) e quindi sovraliment...

Questo studio presenta un metodo angiografico bidimensionale semplice per esaminare le strutture vascolari bene usando un silicone gomma iniezione composto e morbido tessuto sistema a raggi x.

Angiografia bidimensionale a raggi x per esaminare bene struttura vascolare utilizzando un composto di iniezione gomma Silicone

Angiography is an essential tool for the study of vascular structures in various research fields. The aim of this study is to introduce a simple ...

Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave nel campo della chirurgia ricostruttiva su come eseguire la chirurgia di sollevamento perforativo. Il principale vantaggio di questa tecnica è che la variazione delle strutture vascolari fini, come i vasi di strozzamento, può essere eseguita facilmente in varie condizioni del lembo vascolare. Per stabilire una condizione del lembo, confermare il livello appropriato di sedazione per mancanza di risposta al dito del piedino in un ratto Sprague-Dawley maschio di 200-250 grammi di 7 settimane anestetizzato e contrassegnare un design del lembo della pelle circonferenziale di 4 per 12 centimetri dall'addome inferiore alla schiena.Con il centro del lembo a metà strada tra il processo xifoide e il pene. Utilizzare una lama chirurgica per rendere l'incisione contrassegnata e utilizzare le forbici per sezionare il lembo, compresa la pelle e il carnoso pannicolare. Sezionare intorno al pedicolo vascolare nell'addome inferiore e utilizzare un microscopio o un anello chirurgico per esporre il tessuto vascolare.Ligate i vasi e dividete il lembo lungo la linea mediana dorsale. Riportare il lembo nella sua posizione originale e fissare il lembo con la cucitrice della pelle. È importante fare lembi che hanno evidenti territori vascolari per consentire di apportare facilmente modifiche alle condizioni vascolari del lembo come richiesto per fare protocollo sperimentale.Il giorno della procedura, fai un'incisione della pelle della linea mediana di 2 centimetri tra le scapole e usa le forcezanti delle zanzare e le forbici smussate per esporre il complesso della ghiandola salivare. Dopo la dissezione longitudinale del muscolo omoioide, sezionare intorno alla comune arteria carotide e usare la seta nera per ritrarre i lati cefalici e caudali dell'arteria. Fai una cravatta sull'sutura prossimale e mantieni la trazione per mantenere l'ingozzamento dell'arteria e posizionare liberamente la sutura caudale.Inserire un catetere calibro 24 nell'arteria preparata e fissare il catetere con la sutura caudale. Collegare un fermante a tre strade al catetere e utilizzare una siringa vuota per applicare una pressione negativa al catetere confermando un flusso di sangue nel catetere. Successivamente, iniettare da 25 a 30 millilitri di composto di iniezione di gomma siliconica appena preparato nel catetere fino a quando i colori dell'occhio e del piede non sono cambiati.Quando tutto il composto è stato iniettato, bloccare il fermafiaere a tre modi e consentire all'agente di solidificarsi per circa 15 minuti. Quindi posizionare una barriera protettiva attorno alla siringa del composto in modo da non contaminare l'agente radio opaco. E rimuovere la siringa dal fermagli.Per raccogliere il campione, utilizzare una lama chirurgica per fare un'incisione nel panniculus carnosus a un centimetro di distanza dal lembo per prevenire danni a qualsiasi struttura vascolare all'interno del lembo e sezionare intorno al lembo sotto il piano panniculus carnosus. Quindi utilizzare le forbici per raccogliere il tessuto tra cui il lembo e il pedicolo vascolare all'interno del lembo e utilizzare una sutura di seta five o per ligare il pedicolo del lembo, separando il lembo dal corpo. L'angiografia a iniezione di gomma siliconica rivela chiaramente strutture vascolari fini, consentendo l'acquisizione di immagini angiografiche di alta qualità delle vene di soffocamento dilatate anche in condizioni di imaging altrimenti difficili.Ad esempio, in questo esperimento rappresentativo, si può osservare che tutti i lembi sono stati elevati in base all'arteria e alla vena iliaca circonflessa profonda prima di essere sovraliati con arterie provenienti da varie posizioni. Se un intero lembo è diviso in quattro zone come standard con il recipiente principale che carica il territorio del lembo, l'agente angiografico che raggiunge il recipiente principale carica la successiva zona distale oltre l'arteria di sovralimento. Si può anche osservare la vena di strozzatura dilatata, anche se non è stata vista nella normale angiografia cutanea.Una volta padroneggiata, questa tecnica può essere completata in un'ora per ratto se viene eseguita correttamente. Durante il tentativo di questa procedura, è importante ricordare di non contaminare o versare l'agente angiografico durante l'iniezione. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione di come creare un lembo di condizione specifico ed eseguire un'angiografia.

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Impara l'angiografia bidimensionale a raggi X per esaminare le strutture vascolari fini utilizzando un composto di iniezione di gomma siliconica. Questo metodo migliora la pianificazione chirurgica in chirurgia ricostruttiva.

Angiografia bidimensionale a raggi x per esaminare bene struttura vascolare utilizzando un composto di iniezione gomma Silicone

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