Name: Analisi di N- glicani da Raphanus sativus cultivar utilizzando PNGasi H+ (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-06-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 26 s
Description: Scopri un metodo rapido per analizzare gli N-glicani da Raphanus sativus usando PNGasi H⁺. Questa tecnica semplifica la preparazione enzimatica senza cambi di tampone, facilitando la caratterizzazione glicanica nelle piante.

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Questo lavoro è stato supportato in parte dalla Natural Science Foundation of China (concedere numeri 31471703, A0201300537 e 31671854 a J.V. e L.L., concedere il numero 31470435 a G.Y.) e il piano di talenti stranieri 100 (concessione numero JSB2014012 di J.V.).

1. raccolta del campione
<ol><li>Acquistare diverse cultivar di fresco ravanello (Raphanus sativus L.).</li>
</ol>2. isolamento della proteina dal ravanello
<ol><li>Omogeneizzare circa 100 g di ravanello fresco con un frullatore di cucina per 10 min.</li>
	<li>Trasferire l'impasto per un tubo di centrifuga da 50 mL e centrifugare a 14.000 × g a 4 ° C per 20 minuti rimuovere il materiale insolubile.</li>
	<li>Trasferire il surnatante con attenzione in una nuova provetta da centrifuga 50 mL e aggiungere un volume equivalente di soluzione di acido tricloroacetico (TCA) di 2 M. Nota: L'aggiunta di TCA precipiterà solubile (glico) proteine.</li>
	<li>Centrifugare a 14.000 × g a 4 ° C per 30 min e rimuovere il surnatante da pellettato (glico) proteine.</li>
	<li>Lavare la pallina con 20 mL di acqua deionizzata e centrifugare a 14.000 × g a 4 ° C per 5 min rimuovere polisaccaridi e oligosaccaridi solubili.</li>
	<li>Ripetere il punto 2.5. quattro volte.</li>
	<li>Risospendere il pellet in 1 mL di acqua deionizzata e trasferimento in una provetta da centrifuga fresca 1,5 mL.</li>
</ol>3. preparazione di N- glicani
<ol><li>Mix 50 µ l della soluzione di proteina dal punto 2.7. (pari a 5 g di ravanello fresco) con 0,2 mU di ricombinante PNGasi H+ in acido acetico 10 mM.</li>
	<li>Incubare a 37 ° C per 12 h, la miscela di reazione. Dopo l'incubazione, centrifugare a 14.000 × g per 5 min rimuovere le proteine extra e degli enzimi.</li>
	<li>Trasferire il surnatante in una provetta da centrifuga fresca 1,5 mL.</li>
</ol>4. purificazione di N- glicani
<ol><li>Preparare la colonna di estrazione in fase solida (SPE) per arricchire gli N- glicani e rimuovere i sali ed altre impurità dalla miscela di reazione, aumentare la selettività dell'agente d'etichettatura fluorogenic 2-aminobenzamide (2-AB) per N- glycan derivatizzazione.<ol>
<li>Aggiungere 3 mL di acqua deionizzata per lavare la colonna.</li>
		<li>Aggiungere 3 mL di soluzione di acetonitrile 80% contenente acido trifluoroacetico (TFA, 0.1% v/v) in attivo la SPE-colonna.</li>
		<li>Aggiungere 3 mL di acqua deionizzata per equilibrare la SPE-colonna.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Trasferire il campione dal punto 3.3 sulla colonna e scartare il flusso continuo.</li>
	<li>Aggiungere 1,5 mL di acqua deionizzata per lavare la colonna e scartare il flusso continuo.</li>
	<li>Eluire il N- glicani rilasciato dalla colonna utilizzando 1,5 mL di soluzione acquosa al 20% acetonitrile, contenente 0,1% TFA (v/v) in una provetta da centrifuga da 2 mL.</li>
	<li>Rimuovere il solvente per evaporazione centrifuga a temperatura ambiente. Evaporare fino a quando il campione è completamente asciutto.</li>
</ol>5. fluorescenza derivatizzazione di N- glicani
<ol><li>Preparare 1 mL di soluzione 2-AB, composto da 35 mM 2-AB e 0,1 M cianoboroidruro di sodio in soluzione di acido acetico/solfossido dimetilico (7:3, v/v).</li>
	<li>Aggiungere 5 µ l di soluzione di 2-AB ai campioni secchi (passo 4.5.) derivati da sei differenti ravanelli. Vortex ciascun campione fino a quando completamente sciolto.</li>
	<li>Incubare la miscela per 2 ore a 65 ° C.</li>
	<li>Lasciate raffreddare il campione a temperatura ambiente per 5 minuti e aggiungere 5 µ l di acqua deionizzata e 40 µ l di acetonitrile. Centrifugare le provette a 14.000 x g per 3 min.</li>
	<li>Trasferire 48 µ l dal surnatante in un flaconcino HPLC di 300 µ l alta-recupero. Memorizzare i derivatizzato N- glycan campioni a-20 ° C fino ad un mese.</li>
</ol>6. HILIC-UPLC profilatura di N- glicani
<ol><li>Analizzare i campioni utilizzando un sistema UPLC standard collegato a un detectorset di fluorescenza online alle lunghezze d'onda di eccitazione/emissione della 330 nm/420 nm, rispettivamente.</li>
	<li>Utilizzare una cromatografia liquida di interazione idrofobica (HILIC)-colonna glycan UPLC a una temperatura di 60 ° C per l'analisi della colonna.</li>
	<li>Preparare il solvente A diluendo 50 mL della soluzione madre (soluzione di formiato di ammonio 1 M, pH 4.5) con 950 mL di liquida cromatografia spettrometria di massa (LCMS)-acqua di grado. Preparare la soluzione di riserva come segue:<ol>
<li>Aggiungere 43 mL di acido formico a 700 mL di LCMS-grade H2O.</li>
		<li>Regolare il pH a 4.5 aggiunta goccia a goccia di soluzione di ammoniaca acquosa (25% w/w).</li>
		<li>Trasferire il solvente per un cilindro graduato e riempire fino a 1000 mL con LCMS-grade H2O. negozio a 4-6 ° C fino a 3 mesi.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Utilizzare acetonitrile LCMS-grado come solvente B.</li>
	<li>Separare gli N- glicani con l'eluizione di pendenza seguente:<ol>
<li>Iniziare aggiungendo il 95% di solvente B in solvente A. imposta la velocità di flusso a 0,5 mL/min da 0 a 44,5 min.</li>
		<li>Da 0 a 6 minuti, gradualmente diminuire la proporzione del solvente B con un gradiente lineare di to78%.</li>
		<li>Da 6 a 44,5 minuti, gradualmente diminuire la proporzione del solvente B con una sfumatura lineare al 55,9%.</li>
		<li>Da 44,5 a 46,5 minuti, rapidamente diminuire la proporzione del solvente B con una sfumatura lineare dal 55,9% allo 0% e tenere allo 0% per 2 min e avviare il lavaggio della colonna. Ridurre il tasso di flusso a 0,25 mL/min da 44,5 a 55 min.</li>
		<li>Lavare la colonna ulteriormente aumentando solvente B al 95% da 48,5 a 50,5 minuti e tenere al 95% per 4,5 min.</li>
		<li>Riequilibrare la colonna per le condizioni di partenza del solvente B al 95% a 0,5 mL/min da 50,5 a 57 min.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Iniettare 45 µ l del campione nel sistema UPLC.</li>
	<li>Eluire gli N- glicani di UPLC con tempi di ritenzione tra 15 e 40 min.</li>
	<li>Raccogliere ogni frazione di picco UPLC osservati usando provette da centrifuga 2 mL e asciugare i campioni per evaporazione centrifugo.</li>
	<li>Iniettare circa 1 pmol di 2-AB etichettato destrano standard (2−20 unità di glucosio) per calibrare la pianta -N- glycan profilatura e di assegnare loro tempi di eluizione in unità di glucosio standardizzati.</li>
</ol>7. MALDI-TOF MS Analysis
<ol><li>Sciogliere i campioni da passo 6,8 a 5 µ l di LCMS-acqua di grado. Mescolare 1 µ l della soluzione campione e 1 µ l di soluzione (ATT) (0,3% p/v in acetonitrile acquosa 70% v/v) 6-aza-2-thiothymine e pipetta il composto sul porta-campioni MALDI-TOF.</li>
	<li>Analizzare i campioni utilizzando uno strumento di spettrometro di massa MALDI-TOF in modalità ioni positivi premendo il pulsante Start .</li>
	<li>Analizzare gli spettri di massa utilizzando il software di analisi MALDI-TOF-MS accompagnamento.</li>
	<li>Interpretare gli spettri utilizzando un opensource glycan interpretazione software19. Impostare i parametri di ricerca per 2-AB etichettatura, [M + Na]+e impostare il parametro di precisione Da 2.0.</li>
</ol>

<ol><li>Altmann, F. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/17033195">The Role of Protein Glycosylation in Allergy.</a> International Archives of Allergy and Immunology. 142 (2), 99-115 (2007).</li>
<li>Van Ree, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%CE%B2+%281%2C+2%29-xylose+and+%CE%B1+%281%2C+3%29-fucose+residues+have+a+strong+contribution+in+IgE+binding+to+plant+glycoallergens%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">β (1, 2)-xylose and α (1, 3)-fucose residues have a strong contribution in IgE binding to plant glycoallergens.</a> Journal of Biological Chemistry. 275 (15), 11451-11458 (2000).</li>
<li>Biswas, H., Chattopadhyaya, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stability+of+Curcuma+longa+rhizome+lectin%3A+Role+of+N-linked+glycosylation%5BTitle%5D)+AND+%22Glycobiology%22%5BJournal%5D)">Stability of Curcuma longa rhizome lectin: Role of N-linked glycosylation.</a> Glycobiology. 26 (4), 410-426 (2016).</li>
<li>Lefebvre, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+N-glycosylation+sites+and+CXC+motifs+in+trafficking+of+Medicago+truncatula+Nod+factor+perception+protein+to+plasma+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Role of N-glycosylation sites and CXC motifs in trafficking of Medicago truncatula Nod factor perception protein to plasma membrane.</a> Journal of Biological Chemistry. 287 (14), 10812-10823 (2012).</li>
<li>Severino, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+the+glycan+moiety+on+the+structure-function+relationships+of+PD-L1%2C+type+1+ribosome-inactivating+protein+from+P.+dioica+leaves%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+BioSystems%22%5BJournal%5D)">The role of the glycan moiety on the structure-function relationships of PD-L1, type 1 ribosome-inactivating protein from P. dioica leaves.</a> Molecular BioSystems. 6 (3), 570-579 (2010).</li>
<li>Lige, B., Ma, S., Van Huystee, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+the+site-directed+removal+of+N-glycosylation+from+cationic+peanut+peroxidase+on+its+function%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+Biochemistry+and+Biophysics%22%5BJournal%5D)">The effects of the site-directed removal of N-glycosylation from cationic peanut peroxidase on its function.</a> Archives of Biochemistry and Biophysics. 386 (1), 17-24 (2001).</li>
<li>Ceriotti, A., Duranti, M., Bollini, R. <a target="_blank" href="https://academic.oup.com/jxb/article/49/324/1091/481062">Effects of N-glycosylation on the folding and structure of plant proteins.</a> Journal of Experimental Botany. 49 (324), 1091-1103 (1998).</li>
<li>Kamerling, J. P., Gerwig, G. J. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/46698050_Strategies_for_the_Structural_Analysis_of_Carbohydrates">Strategies for the Structural Analysis of Carbohydrates.</a> Comprehensive Glycoscience. , 1-68 (2007).</li>
<li>Huang, Y., Mechref, Y., Novotny, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscale+nonreductive+release+of+O-linked+glycans+for+subsequent+analysis+through+MALDI+mass+spectrometry+and+capillary+electrophoresis%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Microscale nonreductive release of O-linked glycans for subsequent analysis through MALDI mass spectrometry and capillary electrophoresis.</a> Analytical Chemistry. 73 (24), 6063-6069 (2001).</li>
<li>Triguero, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+and+enzymatic+N-glycan+release+comparison+for+N-glycan+profiling+of+monoclonal+antibodies+expressed+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Chemical and enzymatic N-glycan release comparison for N-glycan profiling of monoclonal antibodies expressed in plants.</a> Analytical Biochemistry. 400 (2), 173-183 (2010).</li>
<li>Tretter, V., Altmann, F., Marz, L. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1868849">Peptide-N4-(N-acetyl-β-glucosaminyl)asparagine amidase F cannot release glycans with fucose attached α1 → 3 to the asparagine-linked N-acetylglucosamine residue.</a> European Journal of Biochemistry. 199 (3), 647-652 (1991).</li>
<li>Fan, J. -Q., Lee, Y. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detailed+studies+on+substrate+structure+requirements+of+glycoamidases+A+and+F%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Detailed studies on substrate structure requirements of glycoamidases A and F.</a> Journal of Biological Chemistry. 272 (43), 27058-27064 (1997).</li>
<li>Altmann, F., Paschinger, K., Dalik, T., Vorauer, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterisation+of+peptide-N4-%28N-acetyl-%CE%B2-glucosaminyl%29asparagine+amidase+A+and+its+N-glycans%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Characterisation of peptide-N4-(N-acetyl-β-glucosaminyl)asparagine amidase A and its N-glycans.</a> European Journal of Biochemistry. 252 (1), 118-123 (1998).</li>
<li>Altmann, F., Schweiszer, S., Weber, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kinetic+comparison+of+peptide%3A+N-glycosidases+F+and+A+reveals+several+differences+in+substrate+specificity%5BTitle%5D)+AND+%22Glycoconjugate+Journal%22%5BJournal%5D)">Kinetic comparison of peptide: N-glycosidases F and A reveals several differences in substrate specificity.</a> Glycoconjugate Journal. 12 (1), 84-93 (1995).</li>
<li>Wang, T., Voglmeir, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PNGases+as+valuable+tools+in+glycoprotein+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Protein+and+Peptide+Letters%22%5BJournal%5D)">PNGases as valuable tools in glycoprotein analysis.</a> Protein and Peptide Letters. 21 (10), 976-985 (2014).</li>
<li>Wang, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discovery+and+characterization+of+a+novel+extremely+acidic+bacterial+N-glycanase+with+combined+advantages+of+PNGase+F+and+A%5BTitle%5D)+AND+%22Bioscience+Reports%22%5BJournal%5D)">Discovery and characterization of a novel extremely acidic bacterial N-glycanase with combined advantages of PNGase F and A.</a> Bioscience Reports. 34 (6), 00149(2014).</li>
<li>Du, Y. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+sample+preparation+methodology+for+plant+N-.glycan+analysis+using+acid-stable+PNGase+H%2B%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Agricultural+and+Food+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Rapid sample preparation methodology for plant N-.glycan analysis using acid-stable PNGase H+.</a> Journal of Agricultural and Food Chemistry. 63 (48), 10550-10555 (2015).</li>
<li>Wang, T., Hu, X. -C., Cai, Z. -P., Voglmeir, J., Liu, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Qualitative+and+Quantitative+Analysis+of+Carbohydrate+Modification+on+Glycoproteins+from+seeds+of+Ginkgo+biloba%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Agricultural+and+Food+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Qualitative and Quantitative Analysis of Carbohydrate Modification on Glycoproteins from seeds of Ginkgo biloba.</a> Journal of Agricultural and Food Chemistry. 65 (35), 7669-7679 (2017).</li>
<li>Ceroni, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GlycoWorkbench%3A+a+tool+for+the+computer-assisted+annotation+of+mass+spectra+of+glycans%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Proteome+Research%22%5BJournal%5D)">GlycoWorkbench: a tool for the computer-assisted annotation of mass spectra of glycans.</a> Journal of Proteome Research. 7 (4), 1650-1659 (2008).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Il protocollo che abbiamo presentato qui consente il confronto dei profili N- glycan di varie cultivar di ravanello. Un notevole vantaggio di questo metodo rispetto ai protocolli esistenti è che è necessaria alcuna modifica di buffer tra il rilascio enzimatico di N- glicani e la reazione di derivatizzazione con 2-AB. Il punto più critico di questa procedura è la purificazione di N- glicani utilizzando la colonna SPE, come la mancata rimozione di sali o altre impurità nella miscela di reazione p...

N- glicani in piante hanno attirato l'attenzione aumentata negli ultimi anni, come la ricerca precedente ha evidenziato N- glicani come una potenziale fonte di reazioni crociate immunologiche che può provocare reazioni allergiche1,2 . È stato dimostrato in precedenza che N- glicani su glicoproteine vegetali può influire sulle attività catalitica3,4, termostabilità e pieghevole5,6 o localizzazione subcellulare e secrezione7. Al fine di correlare le strutture glycan con le rispettive funzioni, N- glicani deve essere rilasciata prima da glicoproteine chimicamente o enzimaticamente. Il classico metodo chimico per il rilascio di N- e O- glicani è β-eliminazione, in cui il trattamento alcalino campione è accompagnata da riduzione con boroidruro di cedere un alditol8. Tuttavia, questa procedura preclude etichettatura con un fluoroforo e causa decadimento significativo di unità monosaccaridiche dall'estremità riducente della struttura glycan. Deglycosylation chimico basato su carbonato di ammonio idrossido/trattamento è anche un metodo alternativo comunemente usato9. Nessuno di questi metodi di rilascio chimico degrada le proteine intatte, che permette l'analisi di spettrometria di massa di adenoide glycan piscine senza l'interferenza di frammenti peptidici nello stesso intervallo di massa. Tuttavia, uno svantaggio di questi metodi è il tasso di degradazione aumentata di α1, 3-fucosylated N- glicani, una struttura comune di carboidrato trovata in piante10. In alternativa, i metodi di rilascio enzimatico utilizzando peptide:N- glycanases (PNGases, CE 3.5.1.52) sono anche ampiamente applicato. Ricombinante PNGasi F (da Flavobacterium meningosepticum) è la scelta più comune e permetta la liberazione di tutti i tipi di N- glicani, tranne le strutture recanti un nucleo α1, fucosio 311,12. Pertanto, PNGasi A (isolato da semi di mandorla) viene solitamente utilizzato per l'analisi della pianta N- glicani13. Tuttavia, questo enzima deglycosylates solo proteoliticamente-derivati glicopeptidi ed è in grado di deglycosylate nativo glicoproteine14. Quindi, un workup di multi-step campione è richiesto prima di ulteriori analisi, che provoca perdita di glicani, specialmente quelli di abbondanza bassa15. L'obiettivo generale del metodo è di presentare un workflow ottimizzato per N- glycan rilascio e fluorescenza etichettatura in modo semplice e robusto. La logica sottostante è che PNGasi H+, che è stato recentemente scoperto in Terriglobus roseus e può essere recombinantly espresso in e. coli, possono idrolizzare N- glicani direttamente dal patibolo della proteina in acidi condizioni16. Un vantaggio chiave di utilizzo rispetto ai metodi alternativi di PNGasi H+ è che le reazioni d'etichettatura fluorescente possono essere eseguite nello stesso tubo di reazione senza modificare il buffer di reazione17,18. Le condizioni di preparazione semplice e alto recupero di basso-abbondanza oligosaccaridi fanno di questo metodo un prezioso strumento nell'analisi di N- glicani. Questo protocollo è adatto per l'analisi di N- glicani da varie specie di piante.

<table><tbody><tr><td><forte>Sostanze chimiche:</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Acido tricloroacetico&nbsp;</td><td>SCR, Shanghai</td><td>80132618</td><td></td></tr><tr><td>Acido acetico glaciale</td><td>Huada, Guangzhou</td><td>64-19-7</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitrile</td><td>Reagente generale</td><td>G80988C</td><td></td></tr><tr><td>Acido trifluoroacetico Energia</td><td>chimica</td><td>W810031</td><td></td></tr><tr><td>2-amminobenzammide</td><td>Heowns, Tianjin</td><td>A41900</td><td></td></tr><tr><td>Cianoboroidruro di sodio</td><td>J& K Scientific Ltd</td><td>314162</td><td></td></tr><tr><td>Dimetil solfossido Huada</td><td>, Guangzhou</td><td>67-68-5</td><td></td></tr><tr><td>scala destrano marcata 2AB, 200 pmol</td><td>Agilent Technologies</td><td>AT-5190-6998</td><td></td></tr><tr><td>6-Aza-2-tiotimina</td><td>Sigma</td><td>275514</td><td></td></tr><tr><td>Strumenti/Materiali:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Frullatore da cucina</td><td>Orso, Centrifuga Guangzhou</td><td>LLJ-A10T1</td><td></td></tr><tr><td>Evaporatore</td> centrifugo <td>Techcomp</td><td>CT15RT</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Hualida, Colonna Taicang</td><td>LNG-T120</td><td></td></tr><tr><td>SPE</td><td>Colonna Supelco</td><td>Supelclean ENVI Carb SPE</td><td></td></tr><tr><td>Spettrometro di massa MALDI-TOF</td><td>Bruker</td><td>Autoflex</td><td></td></tr><tr><td>HPLC Analisi:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fiala HPLC ad alto recupero</td><td>Agilent Technologies</td><td>&nbsp;# 5188-2788</td><td></td></tr><tr><td>Sistema HPLC</td> Rivelatore a fluorescenza <td>Shimadzu</td><td>Nexera</td><td></td></tr><tr><td>per HPLC</td><td>Shimadzu</td><td>RF-20Axs&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Forno a colonna</td><td>Hengxin</td><td>CO-2000</td><td></td></tr><tr><td>HPLC Colonna</td><td>Acque Acquity</td><td>UPLC BEH colonna glicano</td><td>2,1 &volte; 150 mm, 1,7 &; m granulometria</td></tr><tr>Acqua <td>Merck Millipore</td> di<td>grado LCMS</td><td>#WX00011</td><td></td></tr><tr><td>Acetonitrile Merck</td><td>Millipore</td><td># 100029</td><td></td></tr><tr><td>Acido formico</td><td>Aladino</td><td>F112034</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di ammoniaca</td><td>Aladino</td><td>A112080</td><td></td></tr></tbody></table>

analisi di n- glicani da raphanus sativus cultivar utilizzando pngasi h+

Analysis of N-glycans from Raphanus sativus Cultivars Using PNGase H+

Negli ultimi anni, le moiety carboidrati delle piante hanno ricevuto una notevole attenzione, sono una fonte potenziale di cross-reattivi, provocando Allergia risposte immunitarie. Inoltre, strutture di carboidrati anche giocare un ruolo critico nel metabolismo vegetale. Qui, presentiamo un metodo semplice e veloce per la preparazione e l'analisi di N- glicani da diverse cultivar di ravanello (Raphanus sativus) usando un N- glycanase specifici per il rilascio delle strutture di carboidrati vegetali. Per raggiungere questo obiettivo, greggio acido tricloroacetico precipitati di ravanello omogeneati erano trattati con PNGasi H+ed etichettati utilizzando 2-aminobenzamide come un tag fluorescente. Con etichetta N- glycan campioni sono stati successivamente analizzati da altissime prestazioni cromatografia liquida (UPLC) separazione e matrix-assisted laser desorption ionizzazione-tempo di spettrometria di massa (MALDI-TOF) volo per una dettagliata strutturale valutazione e di quantificare il relativo abundancies di ravanello-derivati N- glycan strutture. Questo protocollo può essere utilizzato anche per l'analisi di N- glicani da varie altre specie di piante e può essere utile per ulteriori indagini della funzione e gli effetti di N- glicani sulla salute umana.

La figura 1 Mostra una panoramica schematica del protocollo descritto, compreso l'isolamento delle proteine (glico-) dal ravanello, la preparazione di N- glicani, l'analisi UPLC e l'analisi MALDI-TOF-MS di questi componenti. La figura 2 Mostra rappresentative cromatogrammi UPLC di N- glicani derivatizzata delle cultivar ravanello analizzati. La figura 3 Mostra i risultati ottenuti d...

Descriviamo un metodo semplice e veloce per la preparazione e l'analisi di N- glicani da diverse cultivar di ravanello (Raphanus sativus).

Analisi di N- glicani da Raphanus sativus cultivar utilizzando PNGasi H+

In recent years, the carbohydrate moieties of plants have received considerable attention, as they are a potential source of cross-reactive, ...

Questo metodo può aiutare a rispondere a domande nel campo della glicoscienza vegetale, come ad esempio come gli N-glicani di origine vegetale possono essere rapidamente analizzati e caratterizzati. Il vantaggio principale di questa tecnica è che non richiede alcuna modifica del tampone tra il rilascio enzimatico di N-glicani e le reazioni di derivatizzazione con 2-amminobenzamide. A dimostrare la procedura saranno la signorina Ya-Min Du e la signorina Shen-Li Zhen; due studenti laureati presso il Glycomics and Glycan Bioengineering Research Center dell'Università Agraria di Nanchino.Per iniziare a isolare le proteine, usa un frullatore da cucina per omogeneizzare circa 100 grammi di ravanello fresco per dieci minuti. Trasferire il liquame risultante in una provetta da centrifuga da 50 millilitri. Centrifugare a 14.000 volte la gravità a quattro gradi Celsius per 20 minuti per rimuovere il materiale insolubile.Successivamente, trasferire con cura il surnatante in una nuova provetta da centrifuga da 50 millilitri. Aggiungere una quantità uguale di una soluzione di acido tricloroacetico a due molari. Centrifugare a 14.000 volte la gravità a quattro gradi Celsius per 30 minuti.E poi r

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Descriviamo un metodo per l'analisi dell'alterazione di N-glicani legati attraverso la vita inizi di glicoproteine ​​dopo la loro biosintesi in cellule di mammifero. Ciò si ottiene pulse-chase analisi di metabolicamente glicani etichettati, rilascio enzimatico da glicoproteine ​​e l'esame mediante HPLC.

Pulse-chase Analisi di N-linked catene di zuccheri da glicoproteine ​​in cellule di mammifero

Un modo rapido per guadagnare è descritto lo studio della struttura di polisaccaridi in una matrice extracellulare. Il metodo sfrutta la specificità del glycosylhydrolases e la sensibilità della spettrometria di massa permette piccole quantità di materiale da analizzare. Questa tecnica è adattabile per essere utilizzato direttamente sul tessuto stesso.

Oligo Profiling di massa (OLIMP) di polisaccaridi extracellulari

Utilizzando glicosidasi specifico per rimuovere gli zuccheri da glicoproteine ​​seguita da SDS-PAGE è un metodo valido per individuare modifiche glycan su campioni di proteine ​​ed è una buona scelta per gli studi Glycobiology iniziale. Seguenti modifiche deglycosylation possono essere rilevati come spostamenti della mobilità gel o con la colorazione glycan reagenti sensibili.

Identificazione e caratterizzazione di glicosilazione delle proteine ​​con specifiche endo-e exoglycosidases

Profiling Glycan dei polimeri cellula vegetale da parete usando i microarrays

È stato sviluppato un protocollo ad alto rendimento per la purificazione combinata di proteomica e glicomica e la quantificazione LC-MS/MS nel plasma. L'analisi della deamidazione dei motivi di glicosilazione legati all'N era specifica per i siti deglicosilati. La quantificazione accurata degli N-glicani è stata ottenuta accoppiando la separazione degli N-glicani assistita dal filtro alla normalizzazione dell'individualità durante la marcatura con la strategia dei tag glicano idrazide.

Un quantitativo Glycomics e proteomica combinata strategia Purificazione

Questo articolo presenta una forma migliorata di una nuova tecnica di glicomica bottom-up progettata per analizzare il profilo composizionale aggregato dei glicani in biofluidi non frazionati attraverso la scomposizione chimica dei glicani nei loro monosaccaridi specifici per il linkage costituente per il rilevamento mediante GC-MS. Le potenziali applicazioni includono la diagnosi precoce del cancro e di altri disturbi affettivi dei glicani.

Glycan Nodo Analisi: un approccio bottom-up per Glycomics

Un protocollo per l'analisi strutturale dei polisaccaridi mediante elettroforesi su gel (APCE), utilizzando mannano come esempio, è descritto.

Caratterizzazione strutturale di Mannan polisaccaridi di parete cellulare nelle piante usando passo

ImmunoglobulinG (IgG) N-glican è caratterizzato utilizzando l'interazione idrofila cromatografica UPLC. Inoltre, la struttura di IgG N-glycan è chiaramente separata. Presentato qui è un'introduzione a questo metodo sperimentale in modo che possa essere ampiamente utilizzato nelle impostazioni di ricerca.

Immunoglobulin G N-Glycan Analisi di Ultra-Performance Liquid Chromatoography

La profilazione polimerica microarray (MAPP) è una tecnica ad alto rendimento per l'analisi della composizione dei glicani in campioni biologici.

Microarray Polymer Profiling (MAPP) per l'analisi dei glicani ad alto rendimento

Qui, presentiamo un protocollo dettagliato per il rilascio di O-glicani dalle mucine e la successiva desalinizzazione, permetilazione e analisi mediante spettrometria di massa MALDI-TOF.

Profilazione degli O-glicani di mucina permetilata mediante spettrometria di massa a tempo di volo con desorbimento/ionizzazione laser assistita da matrice

Scopri un metodo rapido per analizzare gli N-glicani da Raphanus sativus usando PNGasi H⁺. Questa tecnica semplifica la preparazione enzimatica senza cambi di tampone, facilitando la caratterizzazione glicanica nelle piante.

Analisi di N- glicani da Raphanus sativus cultivar utilizzando PNGasi H⁺

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