7 gennaio 2019
Qui usiamo bioluminescenti, raggi x ed emissione di positroni tomografia/computato tomografia imaging per studiare l'attività come inibitore di mTOR urta i tumori del midollo osseo-engrafted mieloma in un modello dello xenotrapianto. Questo permette analisi fisiologicamente pertinenti, non invasivo e multimodale dell'effetto anti-mieloma di terapie designando i tumori del midollo osseo-engrafted mieloma in vivo.
Questo metodo può essere utilizzato per rispondere a domande chiave sul ruolo del micro-ambiente del midollo osseo e sulla sopravvivenza dei tumori del mieloma innestati. Il vantaggio principale di questa procedura è che può essere applicato a studi longitudinali anti-farmaci e utilizzato per saggiare più vie biochimiche in modo non invasivo. Il giorno dell'esperimento lavare per la prima volta le 8226 cellule trasfatte luciferasi tre volte in PBS ghiacciato a 200 RCF per cinque minuti per centrifigazione e rimescolare il pellet in PBS freddo ghiaccio fresco a cinque volte dieci al sesto cellule per 200 microlitri di PBS ghiacciato per topo.
Successivamente confermare una mancanza di risposta al dito del dito in un topo NOG anestetizzato di quattro o sei settimane e applicare un unguento oftalmico agli occhi dell'animale. Caricare le cellule in una siringa per insulina da un millilitro dotata di un ago calibro 26. Iniettare l'intero volume di cellule nella vena di coda dell'animale, prima di riportare il mouse nella sua gabbia, monitorando fino al pieno recupero.
Da dieci a venti giorni dopo la sfida, iniettare ogni animale innestato con 200 microlitri di substrato D-luciferina di grado in vivo in intraperitonealy salina sterile. Posizionare gli animali anestetizzati in posizione supina in un piccolo sistema di imaging animale entro 5-10 minuti dall'iniezione. Misurare la luminosità media in aree di interesse selezionate all'interno del software di imaging corrispondente.
Per una terapia mirata dei tumori della Luciferasi 8226, dopo aver misurato la bioluminescenza di base in ogni animale come appena dimostrato, randomizzare gli animali in gruppi di trattamento e trattare ogni topo con una serie di iniezione IP di 200 microlitri di Temsirolimus o un controllo salino. Misurare l'attività della Luciferasi due volte a settimana e tracciare i cambiamenti nella bioluminescenza nel tempo. Per misurare i cambiamenti nel metabolismo tumorale, rimuovere prima il cibo dalla gabbia domestica dei topi per 24 ore per evitare l'assorbimento di fludeossiglucosio non specifico in eccesso.
Il giorno successivo diluire da 500 a 100 microcuries di 18 sonda fludeossiglucosio radioetichettata fluoro in salina sterile ad un volume finale di 100 microlitri per topo e registrare il tempo e l'attività delle sonde con un calibratore di dose. Quando le sonde sono pronte, posizionare il primo animale anestetizzato su una pastiglia riscaldante con la testa rivolta verso l'interno e utilizzare una siringa per insulina da millilitro schermata dotata di un ago calibro 26 per iniettare 100 microlitri della sonda nella vena della coda. Misurare la radioattività residua nell'ago e nella siringa con il calibratore di dose e annotare l'attività e il tempo.
Quindi misurare l'attività del fludeossiglucosio radioetichettato in regioni selezionate di interesse che corrispondono ai tumori innestati in un piccolo sistema di imaging PET CT animale. Un'innesto tumorale del midollo osseo di successo può essere confermata dall'imaging a bioluminescenza come dimostrato. L'imaging seriale di più animali può essere utilizzato per visualizzare la distribuzione del midollo osseo innestato tumori multipli del mieloma.
Inoltre, l'analisi ottica dei raggi X mostra una determinazione rapida e non invasiva della posizione esatta e della distribuzione dei tumori multipli del mieloma all'interno dello scheletro del topo. La bioluminescenza prodotta da queste cellule tumorali innestati può essere misurata in modo seriale e non invasivo per valutare i cambiamenti nella crescita tumorale. Inoltre, la sopravvivenza dei topi trattati con l'inibitore mTOR Temsirolimus può essere monitorata e l'emissione di positroni e l'analisi tomografica computerizzata per l'assorbimento di fludeossiglucosio radioetichettato tumorale possono essere utilizzate per dimostrare i cambiamenti mediati del Temsirolimus nel metabolismo del glucosio.
Durante l'esecuzione di questa procedura è importante iniettare le celle IEV. Abbiamo scoperto che la mancata iniezione delle cellule nella vena provoca la formazione di cellule tumorali non innestati dal midollo vicino al sito di iniezione. Seguendo questa procedura, altri metodi come l'immunoistochimica e la micro-TC possono essere utilizzati per affrontare domande sull'impatto dei tumori sull'architettura ossea e sui componenti cellulari e molecolari non tumorali dell'ambiente del midollo.
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Questo studio utilizza l'imaging bioluminescente, a raggi X e mediante tomografia a emissione di positroni/tomografia computerizzata per analizzare gli effetti dell'inibizione di mTOR su tumori del mieloma innestati nel midollo osseo in un modello di xenotrapianto. Questo approccio consente analisi non invasive e multimodali degli effetti terapeutici sui tumori del mieloma in vivo.
Questo approccio di imaging multimodale consente una valutazione longitudinale e non invasiva della crescita tumorale e del metabolismo in un microambiente del midollo osseo fisiologicamente rilevante, affrontando una lacuna critica nei modelli preclinici di mieloma. Combinando letture bioluminescenti e PET/TC, il metodo supporta l'analisi meccanicistica e la riduzione del rischio dei candidati terapeutici mirati alle interazioni tumore-stroma. Fornisce una previsione affidabile nella validazione del bersaglio, collegando l'inibizione di mTOR a modifiche misurabili della bioluminescenza tumorale e del metabolismo del glucosio nel tempo.
Il metodo si integra nel percorso di scoperta, dalla validazione del bersaglio all'ottimizzazione del composto attivo, fornendo una validazione ortogonale dell'attività farmacologica in un sistema rilevante per la malattia.