Name: Porcino come un modulo di formazione per ricostruzione microvascolare del collo e testa (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-09-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 43 s
Description: Impara la ricostruzione microvascolare del collo e testa utilizzando il lembo perforante dell'arteria epigastrica superiore del maiale. Questo modulo di formazione sviluppa competenze chirurgiche essenziali per chirurghi principianti.

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Questo lavoro è stato finanziato e sostenuto dal programma di ricerca di scienza base attraverso la National Research Foundation di Corea (NRF) finanziato dal Ministero della scienza, ICT e futuro pianificazione (2015R1C1A1A01051907). Questo lavoro è stato supportato anche dal programma di ricerca di scienza base attraverso la nazionale Ricerca Fondazione della Corea (NRF) finanziato dal Ministero della scienza, ICT & futuro pianificazione (NRF-2016M3A9E9941746).

Questo studio è stato guidato e approvato dal dipartimento di laboratorio animale risorse, Yonsei Biomedical Research Institute, Yonsei University College of Medicine, accreditato dall'associazione per la valutazione e l'accreditamento di laboratorio Animal Care Internazionale. Questo studio ha seguito le linee guida per la cura e l'uso di animali da laboratorio dell'Istituto di laboratorio animale risorse Commissione il Consiglio nazionale delle ricerche Scienze della vita. Tutti i suini sono stati acclimatati per una settimana prima dell'operazione.
1. preparazione
<ol><li>Mantenere i maiali senza cibo per oltre 12 ore prima l'anestesia generale con accesso gratuito all'acqua. Nota: Sei femmina Yorkshire maiali sono stati utilizzati 25 – 30 kg ciascuno.</li>
	<li>Utilizzare un ago di calibro 16 di 1 cm di lunghezza per iniettare per via intramuscolare azaperone (2 mg/kg), xilazina (2 mg/kg) e alfaxan (1 mg/kg), dietro e sotto l'orecchio per iniziare l'anestesia.</li>
	<li>Radere il midline anteriore del collo e della parete addominale del maiale utilizzando un rasoio depilazione chirurgica.</li>
	<li>Fissare un itinerario endovenoso (IV) attraverso la vena centrale o marginale dell'orecchio sul lato posteriore del padiglione auricolare con un ago 22-G. Iniettare Ketorolac (1 mg/kg) tramite una linea IV.</li>
	<li>Poi iniettano atropina (0,04 mg/kg) per via intramuscolare come descritto in 1.2. Iniettare per via intramuscolare come descritto in 1.2 cefazolina (30 mg/kg).</li>
	<li>Mettere il maiale sdraiati in posizione supina sul tavolo della sala operatoria.</li>
	<li>Consentire il maiale al respiro 2 L di ossigeno con 5% di isoflurane attraverso l'anestesia suina maschera spontaneamente.</li>
	<li>Esporre le corde vocali attraverso la bocca utilizzando un laringoscopio e spruzzarli con due sbuffi di soluzione topica di lidocaina 2% per evitare laryngospasm intubazione-indotto.</li>
	<li>Intubare con tubo da 6,5 mm, gonfiare il tubo con 3-5 mL di aria utilizzando una siringa senza ago collegato ad esso. Nota: Eseguire la capnometria per assicurarsi che il tubo trachea, che è una parte della macchina di anestesia, è nella posizione corretta e c'è CO2 torna alla macchina come un'indicazione di corretta ossigenazione.</li>
	<li>Mantenere l'anestesia dopo l'intubazione con 2% isoflurane.</li>
	<li>Usare l'unguento veterinario sugli occhi di maiale e chiuderla con una benda di copertura.</li>
</ol>2. procedura: Luogo di ricezione
<ol><li>Disinfettare il collo e la parete addominale con il peeling a base di iodio soluzione 1%.</li>
	<li>Avviare un'incisione verticale del midline nel collo anteriore usando la lama n. 23 fino allo sterno.</li>
	<li>Sezionare i muscoli della cinghia e ritirarlo lateralmente usando Kelly tessuto forbice e riavvolgitore Lahey.</li>
	<li>Esporre la trachea dal primo anello fino l'ingresso toracico.</li>
	<li>Quindi, esporre l'arteria carotica comune e la vena giugulare interna per l'anastomosi.</li>
	<li>Creare una finestra nella seconda o terza cartilagine trachea, ~ 1 cm di larghezza con lama n. 11.</li>
	<li>Cercare il tubo endotracheale attraverso il difetto trachea generato e assicurarsi che è continuata l'aerazione attraverso il tubo utilizzando il ventilatore senza una perdita.</li>
</ol>3. procedura: Falda sito
Nota: Il raccolto di falda del perforatore (SEAP) Arteria epigastrica superiore può essere eseguito, secondo il metodo descritto da Frederic Bodin7.
<ol><li>Progettare un lembo sulla parte superiore dell'addome di un pennarello chirurgico (Figura 1A).</li>
	<li>Creare un'incisione ellittica di pelle 4 x 3 cm utilizzando un bisturi n. 23 per la guaina anteriore della parete addominale sul lato mediale del lembo disegnato (Figura 1B).</li>
	<li>Elevare la guaina (buccia) il lembo dal muscolo retto dell'addome , cercando i perforatori andando al lembo di pelle mentre si tiene la fascia dalla allis.</li>
	<li>Eseguire la dissezione intramuscolare e seguire i perforatori per i vasi epigastrici superiori (Figura 1B)</li>
	<li>Ora eseguire l'incisione della pelle laterale sulla patta progettato (Figura 1A) usando un bisturi n. 23 (Figura 1)</li>
	<li>Bloccare i vasi epigastrici superiori e vene comitantes con la pinza emostatica superiormente ed utilizzare Kelly tessuto forbici per tagliare sotto la pinza emostatica e legare la nave sopra la pinza emostatica da sutura 3-0. Quindi togliere la pinza emostatica.</li>
</ol>4. anastomosi e chiusura
<ol><li>Mettere su una lente di ingrandimento chirurgico.</li>
	<li>Bloccare l'arteria carotide utilizzando due emostatiche con 1-2 cm di distanza tra di loro.</li>
	<li>Uso micro-forbici per tagliare tra l'arteria carotica e legare la parte superiore di doppia sutura non assicurano alcun stillicidio.</li>
	<li>Utilizzare il morsetto doppio senza la cornice tra l'arteria carotidea e l'arteria patta.</li>
	<li>Avviare l'anastomosi utilizzando 10-0 suturare semplice spessore completo interpretato.</li>
	<li>Il primo soggiorno di due suture circa 120 gradi sulla circonferenza della nave poi tra posto 2-3 punti.</li>
	<li>Allentare il blocco. Se c'è sangue stillano fare la sutura simile presso il sito di stillicidio.</li>
	<li>Cercare il flusso venoso posteriore da vene comitantes.</li>
	<li>Eseguire l'anastomosi come descritto al punto 4.1 a 4.7 per la vena giugulare interna e vene comitantes (Figura 1).</li>
	<li>Utilizzare una dimensione dell'ago di siringa 18 per pungere la pelle per garantire redditività falda vedendo una goccia di sangue.</li>
	<li>Chiudere la finestra trachea e sutura con la fascia del muscolo del PAES falda mediante sutura 3-0.</li>
	<li>Esternare e suturare una pagaia di pelle della falda SEAP per l'incisione cutanea del midline cervicale (Figura 2A).</li>
	<li>Chiudere l'incisione cutanea addominale (Figura 2B).</li>
</ol>5. post-operatorio
<ol><li>Tornare il maiale in posizione prona.</li>
	<li>Interrompere l'isoflurano e svezzare il maiale dal ventilatore.</li>
	<li>Consentire il maiale recuperare nella gabbia animale e monitorare strettamente per assicurare la sua liscia ripresa dalla procedura.</li>
	<li>Cercare lo sportello sul sito di ricostruzione dopo la guarigione (Figura 2).</li>
	<li>Guardate il sito donatore nell'animale dopo la guarigione (Figura 2D).</li>
	<li>Inizio del lattato della soneria al ritmo di 150 mL/h fino al completo recupero e amministrare 0,3 mg di buprenorfina per analgesia.</li>
	<li>A seguito di extubation, monitorare il maiale attentamente finché ha ripreso conoscenza sufficiente per mantenere la posizione e la respirazione ed è in grado di bere spontaneamente.</li>
	<li>Mantenere i maiali post-operatorio in luogo separato da animali non gestiti.</li>
	<li>Avviare intramuscolare amoxicillina-acido clavulanico (14 mg/kg) per 1 settimana.</li>
	<li>Avviare intramuscolare Meloxicam (0,2 mg/kg) per 1 settimana.</li>
</ol>6. l'eutanasia
<ol><li>Iniziare l'anestesia per il maiale iniettando propofol attraverso i.v. (5-10 mL) e mantenerla con isoflurano 5%.</li>
	<li>Intubare il maiale come descritto sul gradino (1.1, 1.2, 1.6-1.10).</li>
	<li>Indurre l'arresto cardiaco tramite l'iniezione endovenosa di 40 mmol KCl.</li>
</ol>

<ol><li>Chen, C. L., Zenga, J., Roland, L. T., Pipkorn, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complications+of+double+free+flap+and+free+flap+combined+with+locoregional+flap+in+head+and+neck+reconstruction%3A+A+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Head+%26+Neck+journal+of+the+Science+and+Specialties+of+the+Head+and+Neck%22%5BJournal%5D)">Complications of double free flap and free flap combined with locoregional flap in head and neck reconstruction: A systematic review.</a> Head & Neck journal of the Science and Specialties of the Head and Neck. 40 (3), 632-646 (2018).</li>
<li>Smith, R. K., Wykes, J., Martin, D. T., Niles, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perforator+variability+in+the+anterolateral+thigh+free+flap%3A+a+systematic+review%5BTitle%5D)+AND+%22Surgical+and+Radiologic+Anatomy%22%5BJournal%5D)">Perforator variability in the anterolateral thigh free flap: a systematic review.</a> Surgical and Radiologic Anatomy. 39 (7), 779-789 (2017).</li>
<li>Bauer, F., Koerdt, S., Hölzle, F., Mitchell, D. A., Wolff, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Eight+free+flaps+in+24+hours%3A+a+training+concept+for+postgraduate+teaching+of+how+to+raise+microvascular+free+flaps%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Oral+and+Maxillofacial%22%5BJournal%5D)">Eight free flaps in 24 hours: a training concept for postgraduate teaching of how to raise microvascular free flaps.</a> British Journal of Oral and Maxillofacial. 54 (1), 35-39 (2016).</li>
<li>Schoeff, S., Hernandez, B., Robinson, D. J., Jameson, M. J., Shonka, D. C. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microvascular+Anastomosis+Simulation+Using+a+Chicken+Thigh+Model%3A+Interval+Versus+Massed+Training%5BTitle%5D)+AND+%22The+Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Microvascular Anastomosis Simulation Using a Chicken Thigh Model: Interval Versus Massed Training.</a> The Laryngoscope. 127 (11), 2490-2494 (2017).</li>
<li>Bodin, F., Diana, M., Koutsomanis, A., Robert, E., Marescaux, J., Bruant-Rodier, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porcine+model+for+free-flap+breast+reconstruction+training%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Porcine model for free-flap breast reconstruction training.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 68 (10), 1402-1409 (2015).</li>
<li>Rodriguez, J. R., Yañez, R., Cifuentes, I., Varas, J., Dagnino, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgery+Workout%3A+A+Novel+Simulation+Training+Curriculum+Based+on+Nonliving+Models%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Microsurgery Workout: A Novel Simulation Training Curriculum Based on Nonliving Models.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 138 (4), 739e-747e (2016).</li>
<li>Carey, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simulation+of+plastic+surgery+and+microvascular+procedures+using+perfused+fresh+human+cadavers%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+journal%22%5BJournal%5D)">Simulation of plastic surgery and microvascular procedures using perfused fresh human cadavers.</a> Plastic and Reconstructive Surgery journal. 67 (2), e42-e48 (2014).</li>
<li>Chan, W., Niranjan, N., Ramakrishnan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structured+assessment+of+microsurgery+skills+in+the+clinical+setting%5BTitle%5D)+AND+%22Plastic+and+Reconstructive+Surgery+Journal%22%5BJournal%5D)">Structured assessment of microsurgery skills in the clinical setting.</a> Plastic and Reconstructive Surgery Journal. 63 (8), 1329-1334 (2010).</li>
<li>Matsumura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+newly+designed+training+tool+for+microvascular+anastomosis+techniques%3A+Microvascular+Practice+Card%5BTitle%5D)+AND+%22Surgical+Neurology+Journal%22%5BJournal%5D)">A newly designed training tool for microvascular anastomosis techniques: Microvascular Practice Card.</a> Surgical Neurology Journal. 71 (5), 616-620 (2010).</li>
<li>Kim, W. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracheal+reconstruction+with+a+free+vascularized+myofascial+flap%3A+preclinical+investigation+in+a+porcine+model+to+human+clinical+application%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Tracheal reconstruction with a free vascularized myofascial flap: preclinical investigation in a porcine model to human clinical application.</a> Scientific Reports. 7 (1), 10022(2017).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Difetti e morbosità significativa possono verificarsi nella testa e del collo pazienti malignità durante l'amministrazione chirurgica. Trasferimento libero microvascolare del tessuto è diventato essenziale per la ricostruzione nella maggior parte dei casi. La vitalità della falda è un problema critico, che richiede fermezza, precisa movimentazione del pedicle, sensazione tattile, abilità visuospatial e flow operativo eccellente dal chirurgo8. Per sviluppare queste competenze, uno ha bisogno di pra...

Ricostruzione dopo la chirurgia per le malattie maligne testa e del collo è una procedura difficile associata con la morbosità significativa. Ricostruzione microvascolare libero-falda è stato ben stabilito come l'approccio standard alla ricostruzione per oltre 20 anni1,2,3. Trasferimento libero-falda svolge un ruolo significativo nel migliorare la gestione del collo e della testa in malati di cancro e in lesioni post-traumatiche quindi spingendo i confini dell'asportazione chirurgica della malattia di là di tecniche precedenti, con conseguente maggiore paziente qualità della vita e la sopravvivenza più lunga tariffe1,2,3. I vari lembi per la ricostruzione sono rotazionali, innesto e gratuito lembi.
Ha ampliato il ruolo delle falde libere nella ricostruzione del collo e della testa. È il lembo più difficile da lavorare, che richiedono un trattamento specializzato e delicato. Fallimento di falda è un evento catastrofico, con morbosità significativa4,5. Così, tempo di allenamento considerevole è necessaria per sviluppare la precisione necessaria per il successo risultati chirurgici3,4,5,6,7,8, 9. La ripida curva di apprendimento connessa con tale una chirurgia può influenzare l'esito per i pazienti e interessano trattamento gestione3,4,5,6,7, 8,9. Per ridurre il tempo di allenamento e curva di apprendimento per nuovi chirurghi, un modello di formazione è necessario che imita la biologia umana e fornisce condizioni campo chirurgico simile8.
L'obiettivo di questo studio è quello di mostrare la visibilità di porcino come un modulo di formazione buona per la testa ed il collo ricostruzione microvascolare che assomiglia il caso umano con miglioramento delle competenze in modo attivo.
Questo studio ha studiato l'uso di un modello porcino per nuovi colleghi di formazione nella ricostruzione microvascolare testa e del collo per trasferimento libero-falda a fornire un conveniente e meno stressante supplemento in modo affidabile per l'addestramento di campo clinico con simili caratteristiche per le procedure di libero-falda. Suini sono stati utilizzati per molti studi e come insegnamento modelli per varie ricostruzioni chirurgiche, ad esempio, la ricostruzione del seno; 5 tuttavia, maiali non sono mai stati utilizzati per la ricostruzione del collo e della testa tranne nel nostro studio per ricostruzione tracheale a causa di stenosi tracheale10.
L'idea è stata iniziata dopo Frederic Bodin7, che descrivono la falda simile per ricostruzione del seno. Il vantaggio principale per lo studio sull'altro modulo di formazione microvascolare è il modulo attivo vivacizzare con un risultato reale immediato della procedura.

<table><tbody><tr><td>Pigs XP Bio, Seoul, Corea</td><td></td><td></td><td></td>del Sud</tr><tr><td>Rasoio chirurgico per la depilazione</td><td>3M</td><td></td><td></td></tr><tr><td>22 catetere</td><td>B.BRAUN</td><td></td><td></td></tr><tr><td>siringa con ago misura 18</td><td>Jung Rim Medical</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Intramuscolare alfaxan</td><td>Careside</td><td></td><td>10ml/VAL</td></tr><tr><td>Intramuscularxylazine</td><td>Bayer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Azaperone intramuscolare</td><td>Sigma-aldrich</td><td></td><td>34223</td></tr><tr><td>Atropina intramuscolare</td><td>Daewon</td><td></td><td>0,5 mg / A</td></tr><tr><td>Cefazolina intramuscolare</td><td>Yuhan</td><td></td><td>1g</td></tr><tr><td>Ketorolac</td><td>Hana Pharm</td><td></td><td>30mg</td></tr><tr><td>Maschera per anestesia suina</td><td>DRE</td><td></td><td>1392</td></tr><tr><td>tubo del bracciale endotracheale 6,5 mm</td><td>SMITH medico</td><td></td><td>100/150/065</td></tr><tr><td>Macchina per anestesia</td><td>Drä ger</td><td></td><td>PRIMUS IE</td></tr><tr><td>2% lidocaina soluzione topica</td> Unguento veterinario <td>Taejoon</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>Terramicina Pfizer</td><td></td><td><img alt="Misc" src="/files/ftp_upload/58104/58104misc1.jpg"></td></tr> <tr><td>cerotto per la copertura degli occhi</td><td>Innomed</td><td></td><td>S-universal010S</td></tr><tr><td>soluzione betadina 1%.</td><td>Corea Pharma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>garza 4 * 4</td><td>First Medical</td><td></td><td>22 * 30CM 320S</td></tr><tr><td>lama n. 23</td><td>Paragon</td><td></td><td>23</td></tr><tr><td>divaricatore lahey</td><td>V.Mueller</td><td></td><td>SU3960</td></tr><tr><td>kelly tessuto forbici</td><td>SOLCO</td><td></td><td>05-1990</td></tr><tr><td>lama n. 11</td><td>Paragon</td><td></td><td>11</td></tr><tr><td>penna di marcatura chirurgica</td><td>Aspen Surgical</td><td></td><td>Regular #2750</td></tr><tr><td>allis</td><td>V.Mueller</td><td></td><td>SU4055</td></tr><tr><td>cravatta sutura</td><td>Covidein</td><td></td><td>senza ago</td></tr><tr><td>3.5× lente chirurgica</td><td>zeiss</td><td></td><td>eyemag</td></tr><tr><td>smart doppio morsetto senza cornice</td><td>V.Mueller</td><td></td><td>CH7155</td></tr><tr><td>microforbici</td><td>AESCULAP</td><td></td><td>FD038R</td></tr><tr><td>Lattato di Ringer</td><td>Daehan</td><td></td><td>500ml/1 bustina</td></tr><tr><td>di amoxicillina– clavulanato</td><td>Ilsung</td><td></td><td>0,6 g / V</td></tr><tr><td>Meloxicam</td><td>Samil</td><td></td><td>7,5 mg</td></tr><tr><td>propofol</td><td>Dong Kook</td><td></td><td>120 mg / V</td></tr><tr><td>soluzione KCl per via endovenosa</td><td>Daehan</td><td></td><td>20 ml / 50P</td></tr><tr><td>zanzara curva</td><td>SOLCO</td><td></td><td>013-0111</td></tr><tr><td>zanzara diritta</td><td>SOLCO</td><td></td><td>05-1050</td></tr><tr><td>ethilone 10-0 sutura</td><td>ethicone</td><td></td><td>10/0W1756</td></tr><tr><td>Vicryl 3-0.</td><td>ethicone</td><td></td><td>3/0W9890</td></tr><tr><td>buprenorfina</td><td>Hanlim</td><td></td><td>0,3mg</td></tr></tbody></table>

porcino come un modulo di formazione per ricostruzione microvascolare del collo e testa

Porcine As a Training Module for Head and Neck Microvascular Reconstruction

Modelli dal vivo che assomigliano a condizioni chirurgiche degli esseri umani sono necessari per la formazione libero-falda raccolta e anastomosi. Modelli animali per gli scopi di addestramento sono stati disponibili per anni in molti campi della chirurgia. Abbiamo usato la femmina (perché sono facili da gestire per la procedura) Yorkshire maiali per la ricostruzione del collo e della testa raccogliendo il perforatore dell'arteria epigastrica inferiore profonda o la falda del perforatore dell'arteria epigastrica superiore. Il sito di anastomosi (difetto di pelle del collo o della trachea) è stato preparato tramite la dissezione dell'arteria carotica comune e la vena giugulare interna, in cui 3,5 × ingrandimento lente di ingrandimento è stato usato per anastomosi come si usa sui casi umani nella vita reale. Questa procedura viene illustrato un nuovo metodo di allenamento utilizzando un modello di apprendimento affidabile e fornisce un'anatomia dettagliata in uno scenario dal vivo. Ci siamo concentrati sul tempo di ischemia, raccolta, anastomosi di nave e progettare la falda per adattarsi sito del difetto. Questo modello migliora la gestione del tessuto e con l'uso di strumenti idonei può essere ripetuto molte volte, così che il chirurgo è pienamente fiducioso prima di iniziare l'intervento sugli esseri umani.

Abbiamo effettuato la procedura su sei suini: ricostruzione di difetto della pelle cervicale su due maiali, ricostruzione tracheale su due maiali e libero della falda per verificare l'anastomosi vascolare periferica in due maiali. I maiali sono stati monitorati per 3 mesi e non c'era alcun segno clinico di deficit neurologico.
Il tempo medio per ischemia era 50 min (range, min 35-80); il tempo è diminuito come la procedura è sta...

Qui presentiamo un protocollo per l'uso del maiale superiore dell'arteria epigastric perforator flap come un modulo di apprendimento per testa e collo ricostruzione microvascolare.

Porcino come un modulo di formazione per ricostruzione microvascolare del collo e testa

Live models that resemble surgical conditions of humans are needed for training free-flap harvesting and anastomosis. Animal models for training purposes ...

Questo metodo può aiutare a rispondere a domande chiave su come impostare un modulo di allenamento della vita per la ricostruzione microvascolare della testa e del collo. Il vantaggio principale di questa tecnica è che facilita un de froment di abilità di chirurgia ricostruttiva microvascolare per chirurghi principianti. Inizia usando un laringoscopio per esporre le corde vocali attraverso la bocca di un maiale yorkshire femmina da 25 a 30 grammi e spruzzando le corde con due sbuffi di soluzione topica al lidocaina al 2% per prevenire il laringospasmo indotto dall'intubazione.Intubato con un tubo da 6,5 millimetri. E usa una siringa per gonfiare il polsino del tubo con da tre a cinque millilitri d'aria. Dopo aver fatto in modo che il tubo tracheale sia nella posizione corretta, applicare un unguento agli occhi dell'animale.E proteggere gli occhi con un cerotto di copertura. Successivamente, utilizzare una soluzione di scrub a base di iodio all'1% per disinfettare il collo e la parete addominale. E usa una lama numero 23 per fare un'incisione verticale del collo anteriore della linea mediana allo sterno.Sezionare i muscoli del cinturino. E usa le forbici tissutali Kelly e un riavvol

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