Name: Un metodo In Vivo per valutare la Gut-barriera e metabolismo epatico del Microbiota prodotti (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-10-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 54 s
Description: Scopri un metodo in vivo per valutare la permeabilità della barriera intestino-sangue nei ratti mediante campionamento del sangue portale. Questa tecnica misura direttamente la clearance epatica e il metabolismo dei prodotti del microbiota.

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Il lavoro è supportato dal Ministero della scienza e dell'istruzione superiore Repubblica di Polonia, Diamond concedere no: DI2017 009247.

Gli esperimenti sono stati effettuati su ratti maschi Wistar Kyoto secondo direttiva 2010/63 UE sulla protezione degli animali utilizzati a fini scientifici e sono stati approvati da I Comitato di bioetica locale a Varsavia.
1. inserimento della linea per l'amministrazione Intraintestinal
Nota: Qui vi proponiamo amministrazione intracolonic di un marcatore utilizzando un catetere. Può essere modificato da somministrazione orale o sonda gastrica a vari livelli del tratto digestivo per esempio dello stomaco o del duodeno. Ricordatevi di usare indumenti chirurgici monouso, compresi camice chirurgico, cappuccio e guanti e assicurarsi di seguire le precauzioni di sicurezza relazionate agli strumenti taglienti utilizzati in chirurgia (aghi, ecc.) durante le procedure 1-6.
<ol><li>Animali veloci durante la notte prima della procedura. Tutte le procedure eseguite durante l'anestesia generale, cioè, ottenuta tramite l'iniezione di amputate corretta di uretano 1,5 g/kg bw i.p. Assess dalla mancanza di riflessi corneali e palpebrali e dal metodo punta- e coda-pizzico.</li>
	<li>Utilizzare un catetere di Foley pediatrico (10F o 8F) come un catetere Colico. Contrassegnare il catetere per indicare la parte che verrà inserita nel colon (circa 8 cm).</li>
	<li>Controllare la regione anale e il contenuto di feci nel retto prima di inserire il catetere nel colon. Se sgabello è presente, è possibile svuotare il retto di massaggiare la zona rettale.</li>
	<li>Mettere un lubrificante (ad es. glicerina o vaselina) lungo il catetere. Inumidire l'ano e i suoi dintorni con il lubrificante.</li>
	<li>Inserire il catetere con una guida del cavo circa 8 cm attraverso lo sfintere anale esterno. Fare movimenti lenti e circolari e avanti-indietro. Nota: Continuare a controllare la posizione del catetere mediante palpazione addominale durante l'inserimento del catetere.</li>
</ol>2. la cateterizzazione della Vena Cava inferiore
<ol><li>Radere il pelo nell'inguine. Disinfettare la pelle con alcool e povidone iodio 3 volte e coprire la zona inguinale con teli chirurgici alternativamente.</li>
	<li>Prova a sentire il polso sull'arteria femorale e tagliare la pelle longitudinalmente per la lunghezza di circa 2,0 cm nel posto dove l'impulso è palpabile.</li>
	<li>Sezionare la gronda e muscoli per visualizzare il fascio neurovascolare.</li>
	<li>Sezionare la vena femorale da pacco neurovascular: nervi primi, quindi l'arteria femorale e la vena. Nota: Fare attenzione durante la dissezione del fascio neurovascolare, poiché piccoli rami della vena femorale possono facilmente essere danneggiati, produrre sanguinamento.</li>
	<li>Mettere due legature sulla vena femorale. Non legare i nodi ancora. Prendere le estremità della legatura prossimale con un porta-aghi.</li>
	<li>Estrarre con cautela il legatura si conclude con il supporto verso l'alto per chiudere la parte prossimale della vena. Attendere che la vena è riempita di sangue e legare il nodo distale.</li>
	<li>Praticare una piccola incisione (ca. 1 mm) sulla vena tra il nodo e la legatura prossimale, usando le forbici microsurgical. Inserire il catetere con una pinzetta o l'ago con l'estremità ricurva. Nota: Forare la vena e utilizzare la punta dell'ago piegata come una guida per il catetere. Allentare la legatura prossimale durante l'inserimento del catetere. Inserire il catetere per 6-7.0 cm.</li>
	<li>Fissare il catetere nella vena femorale con due singoli nodi chirurgici. Legare la legatura prossimale pure.</li>
	<li>Controllare la pervietà del catetere nel tentativo di prelevare il sangue con una siringa. Lavare il catetere con 0,3 mL della soluzione fisiologica eparinata (100 unità/mL).</li>
	<li>Chiudere la ferita chirurgica con due strati di singoli punti di sutura.</li>
</ol>3. la cateterizzazione della vena portale
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/58456/58456fig1.jpg"> Figura 1 : Catetere portal. Il catetere portale è costituito da un ago OD: 0,9 mm con una lunghezza di circa 25,0 mm [A], OD un catetere flessibile in poliuretano: 0.025", lunghezza circa 100,0 mm [B], una punta flessibile in polietilene del catetere OD: 0.040", circa 15,0 mm lunga [C], una spina [D]. e una legatura 3/0 con una lunghezza di 100,0 mm [E]. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/58456/58456fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
<ol><li>Preparare il catetere portale secondo la Figura 1.<ol>
<li>Inserire l'estremità tagliata dell'ago (OD: 9 mm) nel catetere in poliuretano OD: 0.025".</li>
		<li>Legare la legatura 3/0 all'incrocio tra l'ago e il catetere. Nota: Assicurarsi che la parte più lunga della legatura è almeno 6 cm di lunghezza.</li>
		<li>Inserire l'estremità del catetere OD: 0.025" nel catetere polietilene OD: 0.040".</li>
		<li>Chiudere il catetere con una spina di metallo o di plastica.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Laparotomia mediana<ol>
<li>Radere la pelliccia nell'addome, alternativamente disinfettare la pelle con alcool e povidone iodio 3 volte e coprire l'area con teli chirurgici.</li>
		<li>Tagliare la pelle longitudinalmente da xifoideo dello sterno all'ombelico.</li>
		<li>Tagliare i muscoli della parete addominale lungo la linea bianca.</li>
		<li>Espandere il taglio rostralmente a forma Y in modo che la cartilagine xifoide è tra i due tagli.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Dissezione della vena portale<ol>
<li>Inumidire i tamponi chirurgici con soluzione fisiologica.</li>
		<li>Esternare il ciclo cieco, ascendente e colon trasverso e intestino tenue. Mettere l'intestino sul lato sinistro per esporre la radice del mesentery. Nota: Coprire l'intestino con una garza inumidita con una soluzione fisiologica per proteggere l'intestino dall'essiccazione.</li>
		<li>Per esporre la vena portale, muovere con cautela i lobi epatici ai lati o verso l'alto verso il diaframma con i tamponi inumiditi.</li>
		<li>Localizzare la parte della vena portale che non è coperto con il mesentere (nel hilum epatico, lunghi circa 5 mm) e passare la legatura 3/0 (15 cm di lunghezza) sotto la vena portale. Nota: Per proteggere i tessuti da danni pur ponendo la legatura, inumidire la legatura con una soluzione fisiologica.</li>
		<li>Fissare le estremità della legatura con il forcipe e serrare delicatamente per stabilizzare la nave.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Inserimento e stabilizzazione del catetere<ol>
<li>Passare la parte più lunga della legatura del catetere portale sotto la parte libera della vena portale e tirarlo in modo che il catetere si trova proprio accanto alla vena portale.</li>
		<li>Inserire l'ago nella vena mesenterica superiore 3 mm sotto la giunzione della vena mesenterica superiore e la vena portale. Tenendo l'ago con un angolo di 30° e, dopo aver inserito nella vena, riduzione dell'angolo e far avanzare l'ago quasi orizzontalmente, in parallelo alla vena portale. Nota: Inserire l'ago per una lunghezza di circa 6-7 mm. La legatura stabilizzante dovrebbe stringere con delicatezza la vena portale durante l'inserimento del catetere.</li>
		<li>Applicare 1-2 gocce di colla del tessuto nel luogo dove l'ago è inserito. Rimuovere i tamponi che coprono il fegato.</li>
		<li>Rimettere l'intestino nella cavità addominale.</li>
		<li>Inumidire l'intestino con una soluzione salina riscaldata e coprire con garza sterile inumidito.</li>
		<li>Controllare la pervietà del catetere e lavare il catetere con 0,3 mL della soluzione fisiologica eparinata (100 unità/mL). Nota: Sangue venoso spontaneamente ritorni nel catetere.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Fine della chirurgia<ol>
<li>Dopo 5 minuti, controllare il colore di intestini e movimenti peristaltici, assicurarsi che il flusso di sangue mesenterico corretto venga mantenuto.</li>
		<li>Chiudere la cavità addominale con 3 punti di sutura: parete peritoneo con lo strato interno dei muscoli della parete addominale - un suturare assorbibile, continuo; restanti muscoli della parete addominale - un suturare assorbibile, continuo; pelle e tessuto sottocutaneo - singole suture non assorbibili. Nota: Esternare la parte distale del catetere intorno all'ombelico.</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. vena portale campionamento del sangue
<ol><li>Sangue della vena portale campione a volte secondo il protocollo di collaudo specifico utilizzato; vedere tabella 1.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Protocollo corto</td>
			<td>Protocollo lungo</td>
		</tr>
<tr>
<td>t0 – linea di base (prima amministrazione intracolonic)</td>
			<td>t0 – linea di base (prima amministrazione intracolonic)</td>
		</tr>
<tr>
<td>t1 – 5 min dopo la somministrazione di intracolonic</td>
			<td>t1 – 30 min dopo la somministrazione di intracolonic</td>
		</tr>
<tr>
<td>t2 – 30 min dopo la somministrazione di intracolonic</td>
			<td>t2 – 60 min dopo la somministrazione di intracolonic</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 1: Protocolli di campionamento di sangue di portale per la valutazione di permeabilità dell'intestino.
Nota: Il tempo tra il prelievo di sangue consecutivi dipende principalmente la biodisponibilità delle sostanze testate e nel sito di somministrazione (colon, stomaco, ecc.).
<ol start="2"><li>Aprire il tappo di portale catetere e lasciare che il flusso di sangue liberamente.</li>
	<li>Uso siringa (vol. 2 mL) e smussare needle OD: 0,9 mm. raccogliere non più di 0,7 mL di sangue.</li>
	<li>Lavare il catetere con 0,3 mL di soluzione fisiologica eparinata (100 unità/mL) e richiudere il tappo del catetere.</li>
</ol>5. inferior Vena Cava sangue campionamento
<ol><li>Sangue della vena cava inferiore del campione a volte secondo il protocollo di collaudo specifico utilizzato; vedere la tabella 2.</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Vena portale</td>
			<td>Vena cava inferiore</td>
		</tr>
<tr>
<td>t0 – linea di base (prima amministrazione intracolonic)</td>
			<td>t0 – linea di base (prima amministrazione intracolonic)</td>
		</tr>
<tr>
<td>t1 – 30 min dopo la somministrazione di intracolonic</td>
			<td>t1 – 30 min dopo la somministrazione di intracolonic</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 2: Protocollo di sangue di campionamento per la misurazione della clearance epatica e il sentiero di sangue sangue-fegato-sistemico gut-portale di monitoraggio.
<ol start="2"><li>Aprire il tappo del catetere della vena cava inferiore e lasciar fluire il sangue liberamente.</li>
	<li>Raccogliere non più di 0,7 mL di sangue utilizzando la siringa (vol. 2 mL) e rotto OD ago: 0,9 mm.</li>
	<li>Lavare il catetere con 0.2-0.3 mL di eparinizzata (100 unità/mL) e richiudere il tappo del catetere.</li>
</ol>6. l'amministrazione di un marcatore di permeabilità dell'intestino
<ol><li>Rimuovere il filo guida e gonfiare il palloncino del catetere colica, con adeguato volume di acqua sterile (solitamente 1 mL ma controllare le dimensioni pallone reale prima dell'inserimento). Nota: Il diametro del palloncino non deve superare 1 cm.</li>
	<li>Posizionare la testa del ratto verso il basso (circa il 15% di inclinazione), per ridurre al minimo il rischio del deflusso della soluzione amministrato dal colon.</li>
	<li>Somministrare lentamente la sostanza testata (ad es. trimetilammina, 100 mg/kg bw) utilizzando una porta di drenaggio nel catetere colica. Nota: Non superare il volume di 0,75 mL di soluzione somministrata e la velocità di avanzamento di 0,5 mL/min per impedire il deflusso della soluzione amministrato dall'ano.</li>
	<li>Dopo 10 min, sgonfiare il palloncino del catetere.</li>
	<li>Sangue di campione dalla vena cava inferiore e la vena portale secondo il protocollo di collaudo specifico utilizzato; vedere tabella 1 e tabella 2.</li>
	<li>Eutanasia animale tramite metodo approvato.</li>
</ol>7. calcolo della Clearance epatica
<ol><li>Esprimere la clearance epatica, intesa come estrazione epatica, dalla differenza tra la concentrazione nel sangue portale e concentrazione nel sangue della vena cava inferiore o dal rapporto della vena cava inferiore alla concentrazione di sangue portale, (1 - (concentrazione di vena cava inferiore / concentrazione della vena portale)).</li>
</ol>8. valutazione dei campioni di sangue n di sostanza concentrazione
<ol><li>A seconda della sostanza in esame e la metodologia di prova, è necessario sottoporre il campione a procedure di laboratorio appropriati (centrifugazione, ecc.). Nei protocolli proposti, valutiamo TMA/TMAO e concentrazione di SCFA mediante cromatografia liquida accoppiata alla spettrometria di massa triplo quadrupolo. Si prega di trovare una descrizione dettagliata del metodo nel materiale supplementare.</li>
</ol>

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</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

Descritto, diretto in vivo, metodo per misurare la permeabilità GBB mantiene condizioni di closetophysiological nell'apparato gastrointestinale (mantiene il flusso sanguigno intestinale) e praticamente non è influenzata dalla funzionalità epatica e renale.
Il passaggio fondamentale di questa tecnica è l'inserimento del catetere portale. Questo deve essere fatto delicatamente e in modo decisivo allo stesso tempo. Un breve, lieve sanguinamento può verificarsi dalla puntura la corretta e...

La barriera sangue-gut (GBB), noto anche come la barriera intestinale, è un complesso sistema multistrato che separa il lume intestinale dal flusso sanguigno al fine di limitare il passaggio di composti nocivi, consentendo l'assorbimento di sostanze nutritive1. Si compone di tre strati principali: la strato di muco, epitelio e lamina propria.
Numerosi fattori possono influenzare l' integrità e la funzione GBB2. È stato dimostrato che GBB è disturbato nelle malattie extraintestinali e gastrointestinali, tra cui malattie cardiovascolari e metaboliche3, che può portare a un maggiore passaggio di metaboliti batterica dell'intestino al flusso sanguigno4. Un aumento della penetrazione dei metaboliti batterici dell'intestino può influenzare il funzionamento dell'intero organismo. Ad esempio, gli studi recenti indicano un impatto significativo di metaboliti batterici, quali indoli, H2S, acidi grassi a catena corta (SCFA) e trimetilammina N-ossido, il sistema circolatorio funzioni5,6,7 ,8,9. Infine, è stato proposto che un aumento della permeabilità GBB può servire come un marcatore di malattie cardiovascolari e metaboliche che sono associati con alterazioni morfologiche e funzionali nell' intestino10. Pertanto, la via di sangue sangue-fegato-sistemico gut-portale dei metaboliti batterici di rilevamento può essere di interesse per le scienze di base e cliniche.
Comunemente utilizzati metodi sperimentali per la valutazione della permeabilità GBB sono eseguiti in vitro utilizzando segmenti intestinali resecati, frammenti di mucosa, o membrane artificiali11,12. La precisione di tali metodi è compromessa dal fatto che il corretto funzionamento del GBB richiede flusso sanguigno intestinale costante. D'altra parte, i metodi disponibili in vivo si basano sulla valutazione di urina o sangue periferico concentrazioni di marcatori esogeni13. Tuttavia, la concentrazione dell'urina e del sangue periferica di composti esogeni è influenzata dalla funzionalità renale, cioè, il tasso di filtrazione glomerulare e l'escrezione tubulare, nonché dal metabolismo epatico, cioè, metabolismo di primo passaggio. Entrambi i parametri possono differire notevolmente tra gli oggetti di studio indipendentemente dalla funzione GBB.
Questo articolo descrive una misura diretta della permeabilità GBB nei ratti mediante prelievo di sangue portale. Questo metodo in vivo mantiene il flusso sanguigno intestinale e praticamente non è influenzato dalla funzionalità epatica e renale. L'approccio descritto non è comunemente usato, possibilmente a causa di alcune difficoltà metodologiche. Descriviamo dettagliatamente il cateterismo della vena cava inferiore appena sopra la confluenza della vena epatica e della vena portale. Prelievo di sangue dalla vena portale e vena cava inferiore permette la valutazione della GBB permeabilità e fegato di liquidazione nonché rilevamento della via sangue sangue-fegato-sistemico gut-portale di molecole di interesse, come farmaci o metaboliti batterica dell'intestino. Siamo presenti anche diverse applicazioni del metodo che sono state testate nel nostro laboratorio. Questi includono la valutazione della permeabilità del colon per TMA, un metabolita batterico dell'intestino, una valutazione della clearance epatica di TMA e la valutazione di una via di sangue sangue-fegato-sistemico gut-portale di SCFA.
Per valutare la permeabilità della barriera emato-gut, dovrebbe essere seguita la procedura di protocollo seguenti, nell'ordine: 1 (inserimento della linea per le amministrazioni intraintestinal), 3 (cateterizzazione della vena portale), 4 (prelievo di sangue della vena portale ), 6 (somministrazione di un indicatore di permeabilità dell'intestino), 4.
Per valutare la clearance epatica e una via di sangue sangue-fegato-sistemico gut-portale, deve essere seguita la procedura di protocollo seguenti, nell'ordine: 1 (inserimento della linea per le amministrazioni intraintestinal), 2 (vena cava inferiore cateterizzazione), 3 (cateterizzazione della vena portale), 4 (prelievo di sangue della vena portale), 5 (prelievo di sangue della vena cava inferiore), 6 (somministrazione di un indicatore di permeabilità dell'intestino), 4, 5, 7 ( calcolo della clearance epatica).

<table><tbody><tr><td>Diametro esterno dell'ago: 9 mm</td><td>Becton Dickinson&nbsp; S.A.</td><td>301300</td><td></td></tr><tr><td>Catetere in polietilene ID: 0,025", OD: 0,040"&nbsp;</td><td>Materie prime scientifiche, Inc.</td><td>#BB520-40</td><td></td></tr><tr><td>Catetere in polietilene ID: 0,012", OD: 0,025"&nbsp;</td><td>Materie prime scientifiche, Inc.</td><td>#BB520-25</td><td></td></tr><tr><td>C-Flex Tubo, bianco opaco 1/50 "ID x 1/12" OD&nbsp; &nbsp;</td><td>Cole-Parmer Instrument Co.</td><td>06424-59</td><td></td></tr><tr><td>Catetere di Foley pediatrico (misura 10F o 8F)&nbsp;</td><td>Sigmed</td><td>0000 80305</td><td></td></tr><tr><td>Legature chirurgiche 3/0</td><td>Yavo Sp. Z o.o.</td><td>P48JE</td><td></td></tr><tr><td>Suture chirurgiche riassorbibili - Polyglactine 910 4/0</td><td>KRUUSE Polska Sp. Zo.o.</td><td></td><td></td>152336</tr><tr><td>Colla per tessuti - Loctite 454Cianoacrilato adesivo</td><td>Loctite&nbsp;</td><td></td><td></td>1370127</tr><tr><td>iodio povidone</td><td>EGIS Pharmaceuticals PLC</td><td>4449 11</td><td></td></tr><tr><td>eparina - Heparinium WZF&nbsp;</td><td>WZF Polfa S.A.</td><td>02BK0417</td><td>Diluire 10 volte con soluzione fisiologica</td></tr><tr><td>Glicerina 86%</td><td>Laboratorium Farmaceutyczne Avena</td><td>5.90999E+12</td><td>Serve come lubrificante nel cateterismo del colon</td></tr><tr><td>Xilocaina 2%</td><td>AstraZenca&nbsp;</td><td></td><td></td>9941342</tr><tr><td>Uretano</td><td>Sigma-Aldrich (Merck)&nbsp;</td><td>U2500-500G</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di trimetilammina 45%</td><td>Sigma-Aldrich (Merck)&nbsp;</td><td>92262-1L</td><td></td></tr><tr><td>Siringhe 2 mL</td><td>B.Braun Melsungen AG</td><td>4606027V</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione salina 250 mL</td><td>Fraesenius Kabi Polska Sp. Z o.o.</td><td>15LL707WL</td><td></td></tr><tr><td>Forbici chirurgiche, dritte, lunghezza 115 mm, 4 1/2" estremità smussate</td><td>Braun</td><td>NS-010-115-PKM</td><td></td></tr><tr><td>Pinza arteriosa tipo Micro-Adson piegato, lunghezza 140 mm 5 1/2 "</td><td>Braun</td><td>KN-008-140-ZMK</td><td></td></tr><tr><td>Pinza anatomica, lunghezza 95 mm, 3 3/4" affilata 0,7x0,55</td><td>Braun</td><td>PO-001-007-ZMK</td><td></td></tr><tr><td>Micro forbici tipo Vannas,&nbsp; dritto, lunghezza 85 mm, 3 3/8 " la lunghezza delle lame 6 mm</td><td>Braun&nbsp;</td><td>NO-010-085-PMK</td><td></td></tr><tr><td>Morsetti per asciugamani tipo Backhouse, lunghezza 130 mm, 5 1/8"&nbsp;</td><td>Braun</td><td>HO-128-130-PMK</td><td></td></tr><tr><td>Porta-aghi, lunghezza 150 mm, 6" t=0.4 1/2&nbsp;</td><td>Braun&nbsp;</td><td>IM-927-150-PZMK</td><td></td></tr><tr><td>Forbici delicate, lunghezza 110 mm, dritte, 4 3/8" affilate&nbsp;</td><td>Braun</td><td>NO-052-110-PMK</td><td></td></tr><tr><td>Pinza anatomica, lunghezza 95 mm, affilata 3 3/4"</td><td>Braun</td><td>PO-022-001-PMK</td><td></td></tr></tbody></table>

un metodo in vivo per valutare la gut-barriera e metabolismo epatico del microbiota prodotti

An In Vivo Method for Evaluating the Gut-Blood Barrier and Liver Metabolism of Microbiota Products

La barriera intestinale-(GBB) controlla il passaggio di nutrienti, metaboliti batterici e farmaci dal lume intestinale alla circolazione sanguigna. L'integrità GBB è disturbato nelle malattie gastrointestinali, cardiovascolari e metaboliche, che potrebbero facilitare l'accesso dei composti biologicamente attivi, quali metaboliti batterica dell'intestino, alla circolazione sanguigna. Così, la permeabilità della GBB può essere un indicatore di malattie extraintestinali ed intestinale. Inoltre, l'aumento della penetrazione dei metaboliti batterici può influenzare il funzionamento dell'intero organismo.
Metodi comunemente usati per studiare la permeabilità GBB sono eseguite ex vivo. L'accuratezza di tali metodi è limitata, poiché il funzionamento della GBB dipende dal flusso sanguigno intestinale. D'altra parte, metodi comunemente utilizzati in vivo possono essere prevenuti di fegato e rene prestazioni, come tali metodi si basano sulla valutazione di urina o / e le concentrazioni nel sangue periferico di marcatori esogeni. Qui, presentiamo una misura diretta della permeabilità GBB in ratti facendo uso di un metodo in vivo basato sull'anima portale di campionamento, che conserva il flusso sanguigno intestinale e praticamente non è influenzata dalla funzione epatica e renale.
I cateteri di poliuretano sono inseriti nella vena portale e vena cava inferiore appena sopra l'epatico vene confluenza. Sangue è provato al basale e dopo somministrazione di un marcatore selezionato in una parte del tratto gastrointestinale desiderata. Qui, presentiamo diverse applicazioni del metodo inclusi (1) valutazione della permeabilità del colon TMA, un metabolita batterica dell'intestino, (2) la valutazione della clearance epatica di TMA e (3) la valutazione di una via di sangue periferico-sangue-fegato intestino-portale del budello batteri-derivati di acidi grassi a catena corta. Inoltre, il protocollo può anche essere utilizzato per tenere traccia di assorbimento intestinale e metabolismo epatico dei farmaci o per misure di pressione sanguigna portale.

Con successo abbiamo misurato la clearance dei permeabilità e fegato GBB di TMA in ratti. Abbiamo dimostrato che i ratti ipertesi hanno una permeabilità aumentata del colon per TMA rispetto ai ratti normotesi (Figura 2)4. In un altro studio abbiamo trovato che l'assunzione di sale alta non influenzare la clearance di permeabilità e fegato GBB della TMA (Figura 3)14.
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L'accesso di nutrienti, microbiota metaboliti e farmaci per la circolazione è controllata dalla barriera intestinale-sangue (GBB). Descriviamo un metodo diretto per misurare la GBB permeabilità in vivo, che, contrariamente ai metodi indiretti comunemente usati, praticamente non è interessato dalle funzioni di fegato e rene.

Un metodo In Vivo per valutare la Gut-barriera e metabolismo epatico del Microbiota prodotti

The gut-blood barrier (GBB) controls the passage of nutrients, bacterial metabolites and drugs from intestinal lumen to the bloodstream. The GBB integrity ...

La barriera intestino-emato-ematica è un sistema multistrato che controlla il passaggio di nutrienti, metaboliti batterici, farmaci e altri composti esogeni dal lume intestinale al flusso sanguigno. Come sappiamo, l'integrità della barriera può essere compromessa sia nel flusso gastrointestinale che in quello cardiovascolare e in alcune malattie metaboliche che possono comportare un più facile accesso di composti biologicamente attivi come i metaboliti batterici intestinali al flusso sanguigno e possono influire sul funzionamento dell'intero organismo. Pertanto la permeabilità della barriera e intestino-ematica può essere un marcatore di malattie intestinali ed extraintestinali.In questo video, presentiamo una misurazione diretta della permeabilità della barriera intestino-ematica nei ratti utilizzando il prelievo del sangue a portale dopo la somministrazione di una sostanza in esame al tratto digestivo. Descriviamo in dettaglio la categorizzazione della vena porta e della vena cava inferiore appena sopra la confluenza epatica della vena. Il prelievo di sangue dalla vena portale e dalla vena cava inferiore consente di valutare non solo la permeabilità della barriera intestino-emati

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Ileo postoperatorio (POI) è una complicanza della chirurgia addominale che porta a un aumento della morbilità e degenza prolungata. Poiché le strategie profilattiche o terapeutiche mancano intensificazione della ricerca è necessaria. Pertanto abbiamo stabilito un modello di topo standardizzata e possibile esaminare la fisiopatologia di POI e di studiare i potenziali opzioni terapeutiche.

Valutazione funzionale della motilità intestinale e Wall infiammazione intestinale nei roditori: Analisi in un modello standardizzato di manipolazione intestinale

Fonte: Calatayud Arroyo, M., et al. Valutazione della vitalità di un consorzio batterico sintetico sull'interfaccia intestino-microbo ospite-microbo in vitro. J. Vis. Esp. (2018).Questo video dimostra un modello intestinale-microbio in vitro per studiare la vitalità batterica. Una co-coltura di cellule Caco-2 e HT29-MTX viene incubata con batteri pretrattati in condizioni digestive simulate. L'integrità della barriera epiteliale viene valutata utilizzando la resistenza elettrica...

Modello intestinale in vitro per valutare l'adesione batterica e l'internalizzazione

Questo protocollo descrive l'uso di preparati di tessuto intestinale asportati o "sacche intestinali" come modello ex vivo della funzione della barriera intestinale. Questo modello può essere utilizzato per valutare l'integrità sia della barriera epiteliale che dello strato di gel mucoso in specifici siti intestinali in modelli animali di malattia digestiva.

Ex Vivo intestinale Sacs per valutare mucosa Permeabilità in modelli di malattia gastrointestinale

Qui sono disponibili due metodi per determinare la funzione di barriera intestinale. Un contatore epiteliale (volt/ohm) è utilizzato per la misurazione della resistenza elettrica transepiteliale del epithelia coltivate direttamente in pozzi di coltura del tessuto. Nei topi, il metodo di alimentazione mediante sonda gastrica FITC-Destrano è utilizzato per determinare la permeabilità intestinale in vivo.

In Vitro e In Vivo approcci per determinare la permeabilità intestinale delle cellule epiteliali

Qui, presentiamo un protocollo per la coltura del microbiota dell'intestino, del colon in vitro, , utilizzando una serie di bioreattori che simulano le condizioni fisiologiche del tratto gastro intestinale.

L'applicazione di avanzate In Vitro coltura tecnologia per studiare il Microbiota dell'intestino umano

Abbiamo esposto un sistema microfisiologico (MPS) con organoidi intestinali e epatici ad acetaminofene (APAP). Questo articolo descrive i metodi per la produzione di organoidi e le valutazioni della proprietà farmacocinetica e tossicologica APAP nelle MPS. Descrive anche le analisi della funzionalità tissutale necessarie per convalidare i risultati.

Un sistema microfisiologico intestino/fegato per la valutazione farmacocinetica e tossicologica

Sfruttando la microscopia intravitale, il metodo qui presentato consente la visualizzazione in tempo reale dello spargimento di cellule epiteliali intestinali negli animali viventi. Pertanto, la mucosa intestinale macchiata localmente (acriflavina e rodiamminaB-dextran) dei topi anestetizzati viene imageizzata fino alla risoluzione a singola cellula utilizzando la microscopia confocale.

Un approccio intravitale basato sulla microscopia per valutare la permeabilità intestinale e le prestazioni di spargimento di cellule epiteliali

La funzione di barriera epiteliale intestinale disregolata e le risposte immunitarie sono segni distintivi della malattia infiammatoria intestinale che rimangono scarsamente studiate a causa della mancanza di modelli fisiologici. Qui descriviamo un modello di loop intestinale del topo che impiega un segmento intestinale ben vascolarizzato ed esteriore per studiare la permeabilità della mucosa e il reclutamento di leucociti in vivo.

Valutazione funzionale della permeabilità intestinale e della migrazione transepiteliale neutrofila nei topi utilizzando un modello standardizzato di loop intestinale

Questo articolo presenta un metodo unico per analizzare le interazioni ospite-microbioma utilizzando un nuovo sistema di coltura di organi intestinali per esperimenti ex vivo.

Un sistema di coltura di organi intestinali intestinali per l'analisi delle interazioni ospite-microbiota

Nel presente studio, il destrano marcato con fluoresceina-isotiocianato (FITC) viene somministrato ai topi tramite sonda gastrica orale per valutare la permeabilità intestinale sia in vivo che in campioni plasmatici e fecali. Poiché la funzione di barriera intestinale è influenzata in molti processi patologici, questo test diretto e quantitativo può essere utilizzato in diverse aree di ricerca.

Valutazione dell'integrità della barriera intestinale nei topi utilizzando destrano marcato con fluoresceina-isotiocianato

Scopri un metodo in vivo per valutare la permeabilità della barriera intestino-sangue nei ratti mediante campionamento del sangue portale. Questa tecnica misura direttamente la clearance epatica e il metabolismo dei prodotti del microbiota.

Un metodo In Vivo per valutare la Gut-barriera e metabolismo epatico del Microbiota prodotti

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