Name: Un modello di effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-04-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 32 s
Description: Scopri come creare un modello di effusione pleurica nei ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilica. Questo metodo consente di studiare la tossicità polmonare dei nanomateriali in vivo.

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Lo studio presente e la produzione di questo articolo sono stati finanziati dalla National Natural Science Foundation of China (Grant 81773373, 81172614 e 81441089 di Grant). Ringraziamo Dr. Jin Yan e Dr. Pan Yujie, del dipartimento di emergenza, Beijing Chaoyang Hospital e Dr. Qu Peng del dipartimento di medicina di ultrasuono, Beijing Chaoyang Hospital per aiutare con la produzione video.

Lo studio ha seguito le linee guida di Capital Medical University (Beijing, Cina P.R.) per la cura e l'uso di animali da esperimento. Tutte le procedure sono state approvate dalla animale etico Comitato di capitale Medical University in Cina.
1. sperimentale preparazioni
Nota: Acclimatare il femminili ratti Wistar da organismi patogeni specifici (peso: 200 ± 10 g) agli ambienti sperimentali per una settimana prima della somministrazione (condizioni ambientali: luce / buio: 12h / 12h, temperatura 22 ± 2 ° C, umidità 50 ± 10%).
<ol><li>Utilizzare un fresco 10 mL di PA/NPSi sospensioni (nanosilice Ø:20 ± 5 nm di polimerizzazione in emulsione in situ) diluito in soluzione salina normale alle concentrazioni di 3.125, 6.25 e 12,5 mg/mL, rispettivamente10. Prima della somministrazione, Sonicare le sospensioni per 20-30 min e vortexare per 10 min al fine di impedire l'aggregazione nanoparticelle.</li>
	<li>Ugualmente dividere un totale di 20 ratti in quattro gruppi: un gruppo per ogni concentrazione di PA/NPSi (0, 3.125, 6.25 e 12,5 mg/mL).</li>
	<li>Per anestetizzare li, posizionare i ratti in un contenitore chiuso con 1,5 mL di etere (99,5%) o altri protocolli IACUC approvato. Dopo 60-90 s di anestesia, controllare la mancanza di risposta al riflesso del pedale. Garantire che i ratti sono la respirazione.</li>
	<li>Mettere il ratto anestetizzato sul bordo e difficoltà i suoi denti anteriori con una linea sterilizzata di nylon sulla scheda troppo.</li>
	<li>Aprire la sua bocca ed esporre la sua fenditura della glottide con l'aiuto di un forcipe chirurgico e la lente frontale.</li>
	<li>Infondere i ratti con 0,5 mL di sospensione di PA/NPSi al polmone di ogni ratto per un totale di 1 mL utilizzando un sottile tubo con un ago sterilizzato nel Bronco bilaterale.</li>
	<li>Posizionare i ratti su un bordo di plastica in una posizione supina e lasciare che i ratti di recuperare lentamente in 5-10 min.</li>
</ol>2. ecografia per effusione pleurica
<ol><li>Utilizzare un sistema a ultrasuoni con un array lineare trasduttore (frequenza: 8MHz) per esaminare i ratti su giorni 1, 3, 7 e 1410.</li>
	<li>Dare l'anestesia (10% cloralio idrato, 0,35 mL/100 g, i.p.) ai ratti e verifica per la mancanza di riflessi pedale.</li>
	<li>Rimuovere i peli dall'addome torace e del tronco di ratti utilizzando un rasoio elettrico. Quindi posizionare il ratto su una piastra di montaggio in posizione supina.</li>
	<li>Coprire la pelle con il gel rivestito e quindi posizionare il trasduttore sulla zona sottocostale per rilevare il liquido pleurico e spazio intercostale. Nota: Al fine di rilevare con precisione l'effusione, la posizioni laterale di destra e sinistra sono state selezionate per eseguire un esame di ultrasuono.</li>
	<li>Mettere il topo su un bordo di plastica in una posizione supina dopo l'esame di ultrasuono e lasciare che i ratti di recuperare lentamente in 10 min.</li>
</ol>3. cassa CT scansione per effusione pleurica
<ol><li>Amministrazione post-giorni 7 e 14, anestetizzare i ratti con 10% cloralio idrato (i. p). Considerarlo sufficiente profondità dell'anestesia quando il topo non reagisce ai riflessi del pedale. Nota: Dopo la somministrazione giorno 7 è il momento più opportuno per osservare l'effusione pleurica di esame di CT.</li>
	<li>Posizionare il ratto su un foglio di plastica in posizione prona e poi la scansione del suo petto per indagare l'effusione pleurica utilizzando un Use di CT. 64 canali le seguenti impostazioni: configurazione del rivelatore di 64 x 0,625 mm, 120 kV (picco) e 350 mAs.</li>
</ol>4. raccolta di effusione pleurica e l'isolamento delle nanoparticelle nell'effusione pleurica
<ol><li>Dopo petto CT scansione dei ratti e sotto anestesia di cloralio idrato, controllare il pedale riflesso dei ratti, radersi i capelli dall'addome al petto e poi disinfettare la pelle da iodio.</li>
	<li>Portare i ratti per l'area chirurgica.</li>
	<li>Nell'ambito dell'anestesia, tagliare rapidamente 1-1,5 cm di pelle e muscoli addominali al xifoideo lungo la linea mediana con il diaframma intatto.</li>
	<li>Aprite la cassa e ispezionare le cavità pleuriche bilaterali con l'aiuto di pinzette, soprattutto gli angoli frenici costale bilaterale con cura. Raccogliere 1-2 mL di effusione pleurica giallo-chiaro con una siringa sterile da 2 mL.</li>
	<li>Una volta fatto, sacrificare i ratti con protocollo IACUC approvato.</li>
	<li>Centrifugare il versamento pleurico in una provetta da 2 mL per 15 min a 300 x g per isolare le nanoparticelle.</li>
	<li>Utilizzare una goccia di livello superiore che è il liquido brillante e osservare sotto un microscope(TEM,) elettronico di trasmissione a una tensione di accelerazione di 60-80 kV.</li>
</ol>

<ol><li>Stathopoulos, G. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nuclear+factor-kappaB+affects+tumor+progression+in+a+mouse+model+of+malignant+pleural+effusion%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Respiratory+Cell+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Nuclear factor-kappaB affects tumor progression in a mouse model of malignant pleural effusion.</a> American Journal of Respiratory Cell and Molecular Biology. 34 (2), 142-150 (2006).</li>
<li>Shen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dosage-toxicity-efficacy+relationship+of+kansui+and+licorice+in+malignant+pleural+effusion+rats+based+on+factor+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Ethnopharmacology%22%5BJournal%5D)">The dosage-toxicity-efficacy relationship of kansui and licorice in malignant pleural effusion rats based on factor analysis.</a> Journal of Ethnopharmacology. 186, 251-256 (2016).</li>
<li>Nel, A., Xia, T., Mädler, L., Li, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxic+potential+of+materials+at+the+nanolevel%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Toxic potential of materials at the nanolevel.</a> Science. 311 (5761), 622-627 (2006).</li>
<li>Maynard, A. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safe+handling+of+nanotechnology%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Safe handling of nanotechnology.</a> Nature. 444 (7117), 267-269 (2006).</li>
<li>Duan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxic+effects+of+silica+nanoparticles+on+zebrafish+embryos+and+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Toxic effects of silica nanoparticles on zebrafish embryos and larvae.</a> PLoS One. 8 (9), 74606(2013).</li>
<li>Skuland, T., Ovrevik, J., Låg, M., Schwarze, P., Refsnes, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Silica+nanoparticles+induce+cytokine+responses+in+lung+epithelial+cells+through+activation+of+a+p38%2FTACE%2FTGF-%CE%B1%2FEGFR-pathway+and+NF-%CE%BA%CE%92+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicology+and+Applied+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Silica nanoparticles induce cytokine responses in lung epithelial cells through activation of a p38/TACE/TGF-α/EGFR-pathway and NF-κΒ signaling.</a> Toxicology and Applied Pharmacology. 279 (1), 76-86 (2014).</li>
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<li>Song, Y., Li, X., Du, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exposure+to+nanoparticles+is+related+to+pleural+effusion%2C+pulmonary+fibrosis+and+granuloma%5BTitle%5D)+AND+%22European+Respiratory+Journal%22%5BJournal%5D)">Exposure to nanoparticles is related to pleural effusion, pulmonary fibrosis and granuloma.</a> European Respiratory Journal. 34 (3), 559-567 (2009).</li>
<li>Song, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomaterials+in+humans%3A+identification%2C+characteristics%2C+and+potential+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicologic+Pathology%22%5BJournal%5D)">Nanomaterials in humans: identification, characteristics, and potential damage.</a> Toxicologic Pathology. 39 (5), 841-849 (2011).</li>
<li>Zhu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyacrylate%2Fnanosilica+causes+pleural+and+pericardial+effusion%2C+and+pulmonary+fibrosis+and+granuloma+in+rats+similar+to+those+observed+in+exposed+workers%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Nanomedicine%22%5BJournal%5D)">Polyacrylate/nanosilica causes pleural and pericardial effusion, and pulmonary fibrosis and granuloma in rats similar to those observed in exposed workers.</a> International Journal of Nanomedicine. 11, 1593-1605 (2016).</li>
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<li>Jha, A., Ullah, E., Gupta, P., Gupta, G., Saud, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sonography+of+multifocal+hydatidosis+involving+lung+and+liver+in+a+female+child%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Medical+Ultrasound%22%5BJournal%5D)">Sonography of multifocal hydatidosis involving lung and liver in a female child.</a> Journal of Medical Ultrasound. 40 (4), 471-474 (2013).</li>
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<li>Liu, T. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+and+repeated+dose+toxicity+of+mesoporous+hollow+silica+nanoparticles+in+intravenously+exposed+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Single and repeated dose toxicity of mesoporous hollow silica nanoparticles in intravenously exposed mice.</a> Biomaterials. 32, 1657-1668 (2011).</li>
<li>Ding, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diseases+caused+by+silica%3A+Mechanisms+of+injury+and+disease+development%5BTitle%5D)+AND+%22International+Immunopharmacology%22%5BJournal%5D)">Diseases caused by silica: Mechanisms of injury and disease development.</a> International Immunopharmacology. 2, 173-182 (2002).</li>
<li>Shen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dosage-toxicity-efficacy+relationship+of+kansui+and+licorice+in+malignant+pleural+effusion+rats+based+on+factor+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Ethnopharmacology%22%5BJournal%5D)">The dosage-toxicity-efficacy relationship of kansui and licorice in malignant pleural effusion rats based on factor analysis.</a> Journal of Ethnopharmacology. 186, 251-256 (2016).</li>
<li>Ji, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Twenty-eight-day+inhalation+toxicity+study+of+silver+nanoparticles+in+Sprague-Dawley+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Inhalation+Toxicology%22%5BJournal%5D)">Twenty-eight-day inhalation toxicity study of silver nanoparticles in Sprague-Dawley rats.</a> Inhalation Toxicology. 19 (10), 857-871 (2007).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

L'ecografia è lo strumento più conveniente per la determinazione di malattie polmonari, dovuto la relativa sensibilità eccellente per il liquido libero nella cavità pleurica11. Ecco perché l'ecografia è in grado di rilevare immediatamente il contrasto di impedenza acustica dell'aria e fluidi nei polmoni12. Inoltre, l'ecografia è più flessibile nel modello di un piccolo animale CT. Tuttavia, l'aria nel polmone riflette l'onda sonora e impedito di osservare le modifiche intra...

L'effusione pleurica è una manifestazione clinica molto comune delle malattie polmonari con una varietà di cause. Avere un modello utile animale effusione pleurica è molto importante per studiare queste malattie polmonari, i ruoli di due strati di membrana pleurica, i meccanismi di effusione pleurica ed il relativo trattamento. Tuttavia, alcuni segnalati modelli di effusione pleurica si concentrano principalmente sull'effusione pleurica maligna o fattori biologici piuttosto che le nanoparticelle in ambiente1,2. Qui, presentiamo un nuovo modello di versamento pleurico che è semplice, sicuro ed efficace.
Con lo sviluppo delle nanotecnologie e l'uso estensivo di nanoprodotti, c'è una preoccupazione circa i rischi potenziali dei nanomateriali per l'ambiente e la salute umana3,4. Nanomateriali introducono fattori di rischio e potenzialmente portano a nuovi pericoli sul posto di lavoro o tramite contaminazione ambientale. Gli studi in vitro e in vivo indicano che i nanomateriali possono causare danni multiorgano a polmoni, cuore, fegato, rene e il sistema nervoso, nonché del sistema riproduttivo e sistema immunitarios5,6. Inoltre, alcuni studi ha riferito che la tossicità specifica dei nanomateriali è stato a causa di loro proprietà fisico-chimiche uniche3,4,7.
Abbiamo riferito che un gruppo di lavoratori con esposizione professionale ai nanomateriali ha presentato clinicamente con effusione pleurica e pericardica, fibrosi polmonare e granuloma8,9. Nanoparticelle di silice sono state isolate in questi patients' effusione pleurica9. Al fine di riprodurre e verificare l'effusione pleurica indotta da nanoparticelle inalate in essere umano, abbiamo condotto l'esperimento infondendo il poliacrilato/nanosilice (PA/NPSi) tramite le vie respiratorie nei ratti, che ha imitato la respirazione umana in un vero e proprio ambiente e abbiamo trovato quel intratracheale instillazione di PA/NPSi potrebbe comportare l'effusione pleurica in ratti. Qui, vi presentiamo come fare versamento pleurico in ratti mediante instillazione intratracheale di PA/NPSi e come isolare le nanoparticelle nell'effusione pleurica. Questo modello può essere utile per l'ulteriore studio di nanotossicologia e malattie di effusione pleurica.

<table><tbody><tr><td>Ecografo Color Doppler Acuson S2000</td><td>Siemens Medical Solutions, Mountain View, CA&</td><td></td><td></td></tr><tr><td>nbsp; Poliacrilato / nanosilice</td><td>Fudan University, Shanghai, Cina</td><td></td><td>realizzato su ordinazione con nanosilice (20&plusmn; 5) nm</td></tr><tr><td>10% cloralio idrato</td> Beijing <td>Chemical Works</td><td>302-17-0</td><td></td></tr><tr><td>Tomografia computerizzata a spirale 16 velocità della luce</td><td>GE Healthcare, Stati Uniti</td><td></td><td></td></tr><tr>Centro per animali<td>Wistar privo di agenti patogeni specifici</td><td>di Lianhelihua (Pechino, Cina)</td><td></td> <td>ratti Wistar</td></tr></tbody></table>

un modello di effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice

A Pleural Effusion Model in Rats by Intratracheal Instillation of Polyacrylate/Nanosilica

L'effusione pleurica è un'individuazione clinica prevalente di molte malattie polmonari. Avere un modello utile animale effusione pleurica è molto importante per lo studio di queste malattie polmonari. Modelli precedenti di effusione pleurica pagato più attenzione a fattori biologici, piuttosto che le nanoparticelle nell'ambiente. Qui, presentiamo un modello per rendere l'effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice e un metodo di isolamento di nanoparticelle nell'effusione pleurica. Mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice con concentrazioni di 3.125, 6.25 e 12,5 mg/kg∙mL, l'effusione pleurica in ratti ha presentato il giorno 3, ha raggiunto la posizione di giorni 7-10 a 6.25 e 12,5 mg/kg∙mL gruppi, poi lentamente diminuito e scomparso il giorno 14. Quando la concentrazione di poliacrilato/nanosilice aumentata, l'effusione pleurica è più prodotto e più veloce. Questo liquido pleurico è stato rilevato dall'ecografia o cassa CT scansione e confermato tramite la dissezione dei ratti. Nanoparticelle di silice sono state osservate nell'effusione pleurica dei ratti da microscopio elettronico a trasmissione. Questi risultati hanno mostrato che l'esposizione a poliacrilato/nanosilice conduce all'induzione di effusione pleurica, che era costante con la nostra precedente relazione in esseri umani. Inoltre, questo modello è utile per l'ulteriore studio di nanotossicologia e le malattie di effusione pleurica.

Non usando un'ecografia toracica, abbiamo trovato nessun effusioni pleuriche il giorno 1 in tutti i gruppi. Tuttavia, il giorno 3, l'effusione pleurica è comparso nei gruppi 6.25 e 12,5 mg/kg∙mL. L'effusione era principalmente nell'angolo di destra costa frenico, mentre l'effusione pericardica presentato solo in 12,5 mg/kg∙mL gruppo. Inoltre, il giorno 7, effusione pleurica (Video 1) sia l'effusione pericardica (Video 2) sono stati rilevati nel gruppo di ...

Qui, presentiamo un protocollo per costruire un modello di effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice.

Un modello di effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice

Pleural effusion is a prevalent clinical finding of many pulmonary diseases. Having a useful animal pleural effusion model is very important to study ...

Questo metodo può fornire informazioni sulla tossicità dei nanomateriali e può essere applicato per lo studio della tossicità polmonare. Questa tecnica è stata derivata per studiare gli effetti dell'effusione pleurica indotta da poliacrilato/nanosilica. Prima di iniziare l'instillazione, sonicare una sospensione fresca da 10 millilitri, poliacrilato/ nanosilica in soluzione salina normale per 20-30 minuti, seguita da 10 minuti di vortici, prima di diluire la sospensione a 3,125, 6,25 e 12,5 milligrammi per concentrazioni di millilitro.Successivamente, confermare una mancanza di risposta al dito del dito in un ratto anestetizzato e fissare i denti anteriori dell'animale alla tavola con un pezzo di corda di nylon. Usando le forcep e un'innesenza frontale, aprire delicatamente la bocca per visualizzare la fessura della glottide e inserire un tubo fine nel bronco bilaterale. Quindi, infondere 0,5 millilitri delle particelle di poliacrilato / nanosilica attraverso il tubo nei polmoni e posizionare il topo in posizione supina con monitoraggio fino al pieno recupero.Nei primi giorni uno, tre, sette e 14 dopo l'instillazione, utilizzare un rasoio elettrico per rimuovere i capelli dal petto e dall'addome superiore di ogni ratto anestetizzato e posizionare il topo sulla piastra di montaggio di un sistema ad ultrasuoni con un trasduttore array lineare in posizione supina. Applicare il gel ecografico sulla pelle esposta e posizionare il trasduttore sullo spazio intercostale e sull'area sottocostale per rilevare il fluido pleurico. Per rilevare accuratamente l'effusione, selezionare le posizioni laterale sinistra e destra per eseguire un esame ecografico.Il settimo giorno, sia l'effusione pleurica che l'effusione pericardica vengono rilevate nel gruppo instillato di 6,25 milligrammi per chilogrammo per millilitro. Il settimo e il 14° giorno, le scansioni toracica CT dei 12,5 milligrammi per chilogrammo per millilitro negli animali instillati sono anomale all'angolo costofrenico posteriore smussato, suggerendo una piccola quantità di effusione pleurica. La microscopia elettronica a trasmissione di campioni di effusione pleurica rivela nanoparticelle di nanosilica individualmente e in ammassi con una morfologia coerente con quella osservata per le nanoparticelle all'interno della sospensione preparata.La cosa più importante è ricordare di visualizzare la fessura della glottide e di inserire un tubo sottile nel bronco bilaterale. Le nanoparticelle possono anche essere instillate per inalazione o iniezione endovenosa, poiché entrambi i metodi sono stati eseguiti in studi precedenti. Questa tecnica è utile per studiare lo sviluppo dell'effusione pleurica.

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Instillazioni intratracheale soluti consegnare direttamente nei polmoni. Questa procedura obiettivi la consegna del instillate nelle regioni distali del polmone, ed è quindi spesso incorporati in studi volti a studiare alveoli. Forniamo un protocollo dettagliato di sopravvivenza per l'esecuzione di instillazioni intratracheale nei topi.

Diretta instillazione tracheale di soluti in polmone mouse

Questo video dimostra l'instaurazione di un'infezione polmonare in un modello di roditore immunocompetente tramite intubazione e installazione di sospensioni batteriche nei lobi polmonari. Questo modello consente studi di efficacia antibatterica in animali immunocompetenti.

Instillazione intrabronchiale di Streptococcus pneumoniae in modelli di roditori immunocompetenti

L'instillazione selettiva dell'acido intrapchiale al polmone sinistro nei topi provoca lesioni polmonari acute unilaterali e autolimitate che modella la sindrome da distress respiratorio acuto umano (ARDS) indotta dall'aspirazione dell'acido gastrico.

Un modello di lesione polmonare acuta autolimitata dall'instillazione unilaterale dell'acido intra-bronchiale

Descritto è il metodo di coltura cellulare e di esposizione di un modello bronchiale in vitro per un'esposizione realistica e ripetuta all'inalazione alle particelle per le prove di tossicità.

Un modello epiteliale bronchiale interfaccia aria-liquido per un'esposizione realistica e ripetuta all'inalazione alle particelle trasportate dall'aria per i test di tossicità

Questa tecnica di instillare farmaci direttamente nella trachea dei roditori neonatali è importante per studiare l'impatto di farmaci o biologici somministrati localmente sulle malattie polmonari neonatali. Inoltre, questo metodo può essere utilizzato anche per indurre lesioni polmonari in modelli animali.

Un metodo minimamente invasivo per l'instillazione intratracheale di farmaci nei roditori neonatali per il trattamento delle malattie polmonari

Vari modelli animali di fibrosi polmonare sono stati stabiliti utilizzando la bleomicina per chiarire la patogenesi della fibrosi polmonare e trovare nuovi bersagli farmacologici. Tuttavia, la maggior parte dei modelli di fibrosi polmonare mirati al tessuto polmonare hanno una somministrazione irregolare del farmaco. Qui, proponiamo un modello di fibrosi polmonare uniforme indotta dalla nebulizzazione nasale di bleomicina.

Un modello murino di fibrosi polmonare indotta dalla nebulizzazione nasale di bleomicina

Questo studio descrive una tecnica per stabilire un modello di ratto di silicosi con l'inalazione di silice attraverso tutto il corpo in una camera di inalazione. I ratti con silicosi potrebbero imitare da vicino il processo patologico della silicosi umana in modo semplice, economico e con una buona ripetibilità.

Creazione di un modello di ratto silicosi attraverso l'esposizione di tutto il corpo alla silice respirabile

Questo protocollo descrive un metodo per stabilire un modello murino di silicosi attraverso l'esposizione ripetuta a sospensioni di silice tramite una flebo nasale. Questo modello può imitare in modo efficiente, conveniente e flessibile il processo patologico della silicosi umana con elevata ripetibilità ed economia.

Un modello murino di silicosi stabilito dall'inalazione ripetuta di polvere di silice cristallina

Questo protocollo dimostra la tecnica di aspirazione orofaringea per l'uso nel modello murino di bleomicina di fibrosi polmonare.

Somministrazione orofaringea di bleomicina nel modello murino di fibrosi polmonare

Qui presentiamo un protocollo per modellare la fibrosi polmonare nei topi utilizzando bleomicina aerosolizzata somministrata tramite la trachea. Questo metodo ottimizzato consente una consegna uniforme, quantitativa e precisa senza incisioni chirurgiche, migliorando la riproducibilità e l'affidabilità della fibrosi indotta dalla bleomicina.

Un metodo raffinato di somministrazione intratracheale di bleomicina a base di aerosol per modelli murini riproducibili e minimamente invasivi di fibrosi polmonare

Scopri come creare un modello di effusione pleurica nei ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilica. Questo metodo consente di studiare la tossicità polmonare dei nanomateriali in vivo.

Un modello di effusione pleurica in ratti mediante instillazione intratracheale di poliacrilato/nanosilice

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