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Raccolta del sangue modificate dalle vene di coda dei topi Non anestetizzati con un sistema di ra...
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JoVE Journal Behavior
Modified Blood Collection from Tail Veins of Non-anesthetized Mice with a Vacuum Blood Collection System and Eyeglass Magnifier

Raccolta del sangue modificate dalle vene di coda dei topi Non anestetizzati con un sistema di raccolta di sangue sotto vuoto e la lente di ingrandimento per occhiali

Full Text
20,040 Views
07:42 min
February 2, 2019

DOI: 10.3791/59136-v

Xiaoyan Liu*1, Huanhuan Li*1, Jie Wu1, Yijun Yu1, Mingjing Zhang1, Wusong Zou1, Ye Gu1

1Heart Center, Wuhan Fourth Hospital, Puai Hospital Affiliated to Tongji Medical College,Huazhong University of Science and Technology

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study reports a method for blood sampling from the tail vein of mice using a vacuum extraction tube system and eyeglass magnifier. The technique is designed to be easy to practice and allows for repeat blood sampling with minimal injury to the mice.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Animal Physiology
  • Blood Sampling Techniques

Background

  • The tail vein is a preferred site for blood sampling in mice.
  • Traditional methods can be challenging due to the thinness of the tail vein.
  • Minimizing injury and stress during blood collection is crucial for ethical research.
  • Improving the success rate of blood collection is important for experimental consistency.

Purpose of Study

  • To investigate a new blood sampling method using a vacuum system and magnification.
  • To compare the efficacy of this method with conventional blood sampling techniques.
  • To assess the impact of the new method on blood volume collection and sampling duration.

Methods Used

  • Mice were placed in a plastic restraining holder for stabilization.
  • The tail was cleaned with warm water and 70% ethanol to dilate the vein.
  • A butterfly needle was inserted into the tail vein to collect blood into vacuum tubes.
  • Blood collection was performed while minimizing stress and injury to the mice.

Main Results

  • The new method allowed for higher blood volumes to be collected compared to traditional methods.
  • Beginners showed improved success rates with the new technique.
  • Minimal injury was reported, aligning with ethical standards for animal research.
  • Repeated blood sampling was feasible without significant complications.

Conclusions

  • The vacuum extraction tube system combined with eyeglass magnification is effective for blood sampling in mice.
  • This method is easy to master and reduces the number of failed punctures.
  • It provides a reliable alternative to conventional blood sampling techniques.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using the vacuum extraction system?
The vacuum extraction system allows for easier blood collection and minimizes injury to the mice.
How does the eyeglass magnifier improve the procedure?
The eyeglass magnifier enhances visibility, making it easier to locate and puncture the tail vein.
Is this method suitable for repeated blood sampling?
Yes, the method is designed for repeat blood sampling with minimal stress on the animals.
What precautions should be taken during blood collection?
Ensure the tail is extended and clean, and monitor for blood flow to avoid complications.
What is the maximum blood volume that can be safely collected?
Up to 10% of the total blood volume can be safely removed at two-week intervals.
How should blood samples be stored after collection?
Samples can be stored at under -80 degrees Celsius for up to one year.

Questo studio segnala il prelievo di sangue dalla vena caudale nei topi utilizzando un sistema di tubo di aspirazione con lente di ingrandimento per occhiali. Il nostro metodo è facile da praticare e poteva essere utilizzato per il campionamento di anima di ripetizione nei topi.

Questo studio riporta il prelievo di sangue dalla vena di coda nei topi utilizzando un sistema di tubi di estrazione sottovuoto con lente d'ingrandimento degli occhiali. Il nostro metodo è facile da praticare e potrebbe essere utilizzato per ripetere il prelievo del sangue nei topi. All'inizio un topo viene posto nel supporto di contenimento della plastica.

La coda viene pulita e pulita con il 70% di etanolo. Quindi l'operatore indossa la lente d'ingrandimento per migliorare la visualizzazione della coda del mouse. Una punta dell'ago farfalla viene quindi inserita in una delle vene della coda laterale dilatate e il sangue viene raccolto nel tubo di raccolta del vuoto attraverso l'estremità in gomma dell'ago della farfalla.

Infine l'ago viene rimosso e il processo di raccolta del sangue è terminato. La vena di coda è una posizione preferita per il prelievo del sangue. Questo metodo di prelievo del sangue è correlato a lesioni minime ai topi, tuttavia la vena di coda dei topi è molto sottile, quindi a volte è difficile da forare, qui descriviamo un semplice metodo di prelievo del sangue delle vene della coda nei topi di prova di laboratorio utilizzando un sistema di tubi di estrazione sottovuoto.

Questo metodo è semplice ed efficiente e può essere utilizzato per ottenere ripetutamente il sangue richiesto nei topi. La procedura sarà dimostrata da due membri del nostro laboratorio, Xiaoyan Liu e Wusong Zou Per iniziare, posizionare un supporto di contenimento della plastica, tubi a vuoto con tappo di gomma e un ago a doppia punta e lente d'ingrandimento degli occhiali su una superficie sterile. Quindi, posizionare un mouse nel supporto di contenimento della plastica.

Le zampe anteriori e posteriori del mouse dovrebbero essere in una posizione comoda. Per ottenere il campione di sangue, lavare la coda con acqua tiepida da 20 a 30 gradi Celsius, pulire la coda con 70% di etanolo satura di batuffoli di cotone per espandere la vena. Selezionare la vena della coda destra o sinistra per il prelievo del sangue.

Afferrare delicatamente la parte inferiore della coda e mantenere la coda dritta durante la raccolta del campione di sangue. Indossare la lente d'ingrandimento degli occhiali per migliorare la visualizzazione per facilitare la puntura della vena della coda. Inserire la punta dell'ago farfalla calibro 22 in una delle vene posteriori laterale circa una metà distatale dalla punta della coda con un angolo di circa 10 gradi, spostandosi verso la base della coda per più campioni.

Raccogliere il sangue nel tubo di raccolta del vuoto inserendo l'estremità in gomma dell'ago farfalla nel tubo di raccolta del sangue sottovuoto. La coda dei topi può essere utilizzata per diverse raccolte di sangue, tutte le volte che è necessario, secondo il protocollo approvato. Non è sempre facile ottenere abbastanza volume di sangue dalla vena di coda sottile e bassa del flusso sanguigno dei topi con il metodo tradizionale.

Il nostro metodo è semplice ed efficiente e può essere utilizzato per ottenere ripetutamente un volume di sangue adeguato nei topi. È stato riferito che fino al 10% del volume totale del sangue può essere tranquillamente rimosso da un animale sano a intervalli di due settimane, quindi circa 175 microlitri campione di sangue di topi sono stati raccolti ogni volta in conformità con i principi etici. In secondo luogo, è fondamentale estendere la coda per evitare il suo movimento nel processo di prelievo del sangue.

Per evitare la coagulazione del sangue nell'ago, è necessario selezionare un'altra posizione di puntura se il sangue smette di scorrere per 15 secondi. Una raccolta del sangue riuscita è stata definita come l'ottenimento di 175 microlitri di sangue ogni volta. I tempi massimi di puntura sono stati fissati a tre prove.

Se il volume totale del sangue era inferiore a quello di 175 microlitri dopo la terza puntura, è stato definito come una raccolta del sangue fallita. Quando è stato raccolto un volume adeguato del campione, ritirare l'ago dalla vena e applicare brevemente la pressione sul sito di inserimento per fermare il sanguinamento. Per raccogliere il plasma, utilizzare tubi contenenti EDTA, un anticoagulante, invertire delicatamente il tubo più volte per mescolare l'anticoagulante con il sangue e posizionare i campioni sul ghiaccio verticalmente.

Girare i tubi di raccolta dei campioni di sangue intero nella centrifuga refrigerata per 10 minuti. Estrarre il plasma, facendo attenzione a non disturbare gli strati di globuli rossi e bianchi. Per raccogliere la serina, utilizzare tubi senza anticoagulante.

Entrambi i tipi di campioni possono essere utilizzati immediatamente o conservati a meno di 80 gradi Celsius per un massimo di un anno. Questo studio mirava a studiare la superiorità della raccolta ripetuta di campioni di sangue dalla vena di coda dei topi attraverso il sistema di raccolta del sangue sottovuoto e la lente d'ingrandimento degli occhiali. Gruppo sperimentale rispetto al metodo convenzionale di prelievo del sangue.

Il gruppo convenzionale, rispettivamente da principianti ed esperti, ha raccolto il volume del sangue e la durata del campionamento era simile tra due gruppi per esperti, tuttavia, l'aumento del volume del sangue raccolto e la durata del campionamento più breve sono stati osservati in gruppo sperimentale rispetto al gruppo convenzionale per principianti. Un tasso di successo più elevato è stato visto anche nel gruppo sperimentale rispetto al gruppo convenzionale per principianti. Questo metodo di prelievo del sangue è facile da padroneggiare e ha un alto tasso di successo.

Il numero di for once non riuscite potrebbe essere ridotto a un confronto con quello dell'utilizzo del metodo tradizionale. Inoltre questa procedura causa solo lesioni minime ai topi, è solo il nastro di coda dei topi senza la necessità di anestetici, che l'influenza della risposta allo stress negli anestetici sul campione di sangue potrebbe essere evitata.

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Topi di comportamento 144 del problema vena caudale anestetizzati sanguigno raccolta del campione sistema di raccolta di sangue sotto vuoto lente di ingrandimento per occhiali

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