Name: Modello Murine della Stenosi Venoso Centrale utilizzando Aortocaval Fistula con una stenosi di flusso (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 17 s
Description: Scopri il modello murino di stenosi venosa centrale mediante fistola aortocavale con stenosi del flusso. Questa tecnica chirurgica riproduce la patologia umana per studiare i fallimenti di maturazione dell'AVF.

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Questo lavoro è stato sostenuto dal NATIONAL Institute of Health (NIH) degli Stati Uniti Grant R01-HL128406; il Dipartimento dei Veterani Affari Biomedico Laboratorio di ricerca e sviluppo Programma merito Review Award I01-BX002336; nonché con le risorse e l'uso di strutture presso il VA Connecticut Healthcare System, West Haven, CT.

Tutti gli esperimenti sono stati effettuati con l'approvazione del Comitato istituzionale di cura e uso degli animali dell'Università di Yale (IACUC).
1. Anestesia e procedure pre-operative
<ol><li>Sterilizzare tutti gli strumenti chirurgici e materiali automatizzando l'autoclaving. Accendere il dispositivo di supporto termico per essere certi che sia caldo (40-42 gradi centigradi).</li>
	<li>Mettere un topo C57BL/6 di 9-11 settimane in una camera di induzione acrilica e anestesizzarlo con 2,5% di isoflurane vaporizzato e 0,8 ossigeno L/min. L'induzione dell'anestesia dura circa 3 min.</li>
	<li>Togliere il mouse dalla camera. Confermare un piano profondo di anestesia da un pizzico di punta, un pizzico per le orecchie e un pizzico di coda. Posizionare il mouse in posizione supina sull'area chirurgica e fornire il 2,5% di isoflurane utilizzando la maschera di silicone. Fornire buprenorfine a 0,1 mg/kg analgesico e applicare unguento oftalmico agli occhi.</li>
	<li>Rimuovere la pelliccia dal lato ventrale del collo all'addome inferiore utilizzando Nair, un'inrimozione dei capelli.</li>
	<li>Pulire e disinfettare il sito chirurgico utilizzando uno scrub a due passaggi con 10% povidone-iodio e 70% isopropanolo. Applicare un drappo chirurgico.</li>
</ol>2. Procedure operative
<ol><li>
Esposizione dei siti di morsetto e foratura
	<ol>
<li>Preparare strumenti sterili e indossare guanti sterili per mantenere la sterilità durante l'intervento chirurgico.</li>
		<li>Fare un'incisione addominale midline profonda della pelle con un bisturi dal livello del bordo inferiore del fegato a appena sopra il pube. Tagliare la muscolatura con le forbici per aprire la cavità addominale.</li>
		<li>Inserire un retrattore nell'addome e tirare fuori le viscere sul lato destro. Tenerli umidi avvolgendo in una garza imbevuta di salina. Recupera la vescica e le vesciche seminali (nei topi maschi) e le tira verso il lato caudale. Dissezionare la mesenteria tra il retto e il retroperitoneo con un supporto micro-aghi per ottenere una visione completa dell'aorta e dell'IVC.</li>
		<li>Disseziona l'aorta infra-renale e l'IVC en bloc dai tessuti retroperitoneici laterali e dorsali circostanti con un supporto micro-aghi per bloccarli insieme.</li>
		<li>Sezionare i tessuti circostanti per esporre il sito di puntura aortica a circa tre quarti della distanza dalla vena renale sinistra alla biforcazione aortica.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Dissezione iVC
	<ol>
<li>Il disseta tra l'IVC infrarosso e l'aorta distale immediatamente nella vena renale sinistra. Estendere il dissezione a metà strada tra la vena renale sinistra e la biforcazione aortica, in modo che l'IVC a infrarossi, sia a monte che a valle, possa essere osservato postoperatorio. NOTA: La dissezione smussata tra l'IVC e l'aorta deve essere eseguita immediatamente dalla distale immediatamente alla vena renale sinistra dove il tessuto connettivo tra l'IVC e l'aorta è relativamente allentato.</li>
		<li>Fare una finestra per separare l'IVC dall'aorta a quel livello e sezionare l'IVC dal tessuto circostante. Posizionare un 8-0 sutura monofilamento in poliammide prima sotto l'IVC e l'aorta (Figura 1A), quindi posizionare la sutura sotto solo l'IVC (Figura 1B) tirando l'estremità della sutura attraverso la finestra. NOTA: Poiché l'IVC è fragile, sezionare lungo l'avventizia è utile per fare una finestra per evitare che l'IVC così come piccoli rami IVC o aortic venga danneggiati. Se si verifica un sanguinamento, è probabile che sia incontrollabile. Se l'IVC ha rami laterali distinti, posizionare un sutura distally ai rami.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Creazione AVF
	<ol>
<li>Piega un ago da 25 G ad un angolo di 45-60 gradi, in un punto di 4 mm dalla punta dell'ago.</li>
		<li>Bloccare l'aorta afra-renale e IVC applicando una clip microchirurgica.</li>
		<li>Ruotare l'aorta medialmente e caudalmente afferrando il tessuto connettivo che circonda la biforcazione per esporre il sito di puntura dell'aorta allungato leggermente al lato ventrale.</li>
		<li>Tenendo l'aorta in una posizione adatta, forare l'aorta nell'IVC utilizzando l'ago da 25 G preparato (Figura 1C).</li>
		<li>Rilasciare l'aorta e coprire il sito di foratura con il tessuto circostante che si sta acalzando dal lato sinistro dell'aorta. Estrarre l'ago e premere delicatamente il sito di puntura utilizzando un tampone con punta di cotone per l'emostasi.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Creazione della stenosi IVC
	<ol>
<li>Posizionare una punta di un catetere da 22 G IV (vedere la Tabella deiMateriali) sull'IVC longitudinalmente. Ligate il catetere IV e IVC insieme a un sutura (Figura 1D), quindi rimuovere il catetere IV.</li>
		<li>Confermare l'emostasi primaria (Figura1E) e quindi sblocco l'aorta e IVC. Coprire il sito di foratura 1 min in più per garantire l'emostasi. NOTA: Non bloccare troppo a lungo in modo da evitare la distesità trombosi IVC alla stenosi.</li>
		<li>Riportare gli organi nelle loro posizioni originali e chiudere l'addome con 6-0 suture.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Procedure post-operatorie
<ol><li>Dopo la chiusura della ferita addominale, interrompere l'inalazione dell'isoflurane. Mettere il mouse in una gabbia individuale senza biancheria da letto e posizionare la gabbia su un dispositivo di supporto termico per prevenire l'ipotermia. NOTA: Il mouse viene osservato fino a quando non raggiungono e mantengono la recumbency sternale. Applicare cure post-operatorie tra cui analgesia e cura delle ferite in conformità con le raccomandazioni dell'IACUC locale. Per l'analgesia usiamo buprenorfina a 0,1 mg/kg per via intrasmuscolare ogni 12 h per 48 h seguendo le procedure chirurgiche e successivamente, se necessario.</li>
	<li>Confermare la papotenza AVF postoperatoria utilizzando l'ecografia Doppler (vedere la Tabella dei Materiali). Inoltre, misurare altre caratteristiche del vaso e del flusso in base alle esigenze.</li>
</ol>

<ol><li>Dember, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+clopidogrel+on+early+failure+of+arteriovenous+fistulas+for+hemodialysis%3A+a+randomized+controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Effect of clopidogrel on early failure of arteriovenous fistulas for hemodialysis: a randomized controlled trial.</a> JAMA. 299 (18), 2164-2171 (2008).</li>
<li>Dixon, B. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Why+don%27t+fistulas+mature%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+International%22%5BJournal%5D)">Why don't fistulas mature?</a> Kidney International. 70 (8), 1413-1422 (2006).</li>
<li>Wilmink, T., Hollingworth, L., Powers, S., Allen, C., Dasgupta, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+History+of+Common+Autologous+Arteriovenous+Fistulae%3A+Consequences+for+Planning+of+Dialysis%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Vascular+and+Endovascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Natural History of Common Autologous Arteriovenous Fistulae: Consequences for Planning of Dialysis.</a> European Journal of Vascular and Endovascular Surgery. 51 (1), 134-140 (2016).</li>
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<li>Yamamoto, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disturbed+shear+stress+reduces+Klf2+expression+in+arterial-venous+fistulae+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+reports%22%5BJournal%5D)">Disturbed shear stress reduces Klf2 expression in arterial-venous fistulae in vivo.</a> Physiological reports. 3, (2015).</li>
<li>Remuzzi, A., Ene-Iordache, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+paradigms+for+dialysis+vascular+access%3A+upstream+hemodynamics+and+vascular+remodeling+in+dialysis+access+stenosis%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Journal+of+the+American+Society+of+Nephrology%22%5BJournal%5D)">Novel paradigms for dialysis vascular access: upstream hemodynamics and vascular remodeling in dialysis access stenosis.</a> Clinical Journal of the American Society of Nephrology. 8 (12), 2186-2193 (2013).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Il modello murine AVF è stato utilizzato per studiare i meccanismi di base e gli eventi molecolari che portano alla maturazione AVF13,14. In questo studio, abbiamo modificato un modello AVF murine stabilito per creare un nuovo modello di fistola murina aortocaval con una stenosi IVC nel tratto di deflusso della fistola. Il nostro modello di legatura è simile a diversi modelli murini descritti in precedenza che utilizzano la legatura vascolare. Un modello murino d...

Le fistole arteriovenose (AVF) sono gli accessi più comuni per l'emodialisi, con una patenza superiore e un'infezione ridotta rispetto ad altri accessi come innesti o cateteri venosi centrali. Tuttavia, fino al 60% di AVF non riesce a maturare1,2,3; una recente revisione sistematica ha riferito che i tassi di patenza primaria a 1 anno erano solo il 60%4. La stenosi lungo il deflusso venoso provoca prevalentemente il fallimento della maturazione AVF5,6. Ci sono alcuni luoghi caratteristici inclini alla stenosi prossima alla fistola: il segmento a oscillazione accostato per la fistola radiocefalica, la regione arcicefalica per la fistola brachiocefalica e la vena centrale per la fistola con precedente Catetere di vena subclaviale ipsilaterale o giugulare interno7,8.
La stenosi venosa centrale è spesso asintomatica in pazienti senza AVF, ma può causare edema ipsilaterale all'estremità da ipertensione venosa e fallimento della maturazione della fistola quando viene sfidata dal flusso di fistola9. La fisiofisiologia della stenosi venosa centrale è probabilmente correlata all'infiammazione e alla cascata di coagulazione attivata dopo il posizionamento del dispositivo. Inoltre, il movimento costante della punta del catetere e l'aumento del flusso dalla fistola possono alterare lo stress da taglio, con conseguente deposizione di piastrine e ispessimento venoso della parete10. Per comprendere i meccanismi di base alla base del fallimento di AVF causato dalla stenosi venosa centrale, è necessario un modello animale che imita la stenosi venosa centrale con un AVF.
Abbiamo stabilito un modello di fistola murina aortocaval che è facile da eseguire e padroneggiare e ricapitola il corso clinico di AVF umano. 11 Abbiamo applicato i concetti e la tecnica di diversi modelli murini precedentemente stabiliti per creare un nuovo modello murine AVF con stenosi venosa. Introduciamo un modello di fistola murinaa-cavalla con una stenosi IVC nella fistola di deflusso che può essere utilizzata per lo studio della stenosi venosa centrale.

<table><tbody><tr><td>testina di scansione 20-60 Mhz</td><td>VisualSonics Inc.</td><td>RMV-704</td><td></td></tr><tr><td>8-0 Micro sutura sterile, 6 mm (140 &5;), 3/8 cerchio, punto TAP Ago</td><td>AROSuture</td><td>T06A08N14-13</td><td>monofilamento di poliammide Suture</td></tr><tr><td>Camera di induzione, 2 litri 3,75 "L x 9,00" P x 3,75 "H</td><td>VetEquip</td><td>941444</td><td></td></tr><tr><td>Isoflo, liquido di isoflurano</td><td>Zoetis</td><td>26675-46-7</td><td></td></tr><tr><td>Topi, C57BL / 6J</td><td>Il Jackson Laboratorio</td><td>664</td><td></td></tr><tr><td>Pet Bed Pad riscaldante a microonde</td><td>Snuggle Safe</td><td>6250</td><td></td></tr><tr><td>Ago PrecisionGlide 25G</td><td>BD</td><td>305122</td><td></td></tr><tr><td>Catetere Surflo I.V. 22G</td><td>Terumo</td><td>SR-OX2225CA</td><td>diametro esterno 0,85 mm</td></tr><tr><td>Morsetto vascolare Strumento</td><td>chirurgico Roboz</td><td>RS-5424</td><td></td></tr><tr><td>Vevo770 Sistema</td> <td>di imaging ad alta risoluzioneVisualSonics Inc.</td><td>770</td><td></td></tr></tbody></table>

modello murine della stenosi venoso centrale utilizzando aortocaval fistula con una stenosi di flusso

Murine Model of Central Venous Stenosis using Aortocaval Fistula with an Outflow Stenosis

La stenosi venosa centrale è un'entità importante che contribuisce al fallimento della fistola arteriovenosa (AVF). Un modello MURine AVF è stato modificato per creare una legatura parziale della vena cava inferiore (IVC) nel deflusso della fistola, imitando la stenosi venosa centrale. Vengono introdotti aspetti tecnici di questo modello. L'aorta e l'IVC sono esposti, a seguito di un'incisione addominale. L'aorta infra-renale e l'IVC sono sezionati per il bloccaggio prossimale, e l'aorta distale è esposta per la puntura. L'IVC nel punto medio tra la vena renale sinistra e la biforcazione aortica viene attentamente sezionato per posizionare un sutura sotto l'IVC. Dopo aver bloccato l'aorta e IVC, viene creato un AVF forando l'aorta afra-renale attraverso entrambe le pareti nell'IVC con un ago da 25 G, seguito dalla legatura di un catetere intrave (IV) da 22 G e IVC insieme. Il catetere viene quindi rimosso, creando una stenosi venosa riproducibile senza occlusione. L'aorta e l'IVC sono sbloccati dopo aver confermato l'emostasi primaria. Questo nuovo modello di stenosi venosa centrale è facile da eseguire, riproducibile e faciliterà gli studi sul fallimento dell'AVF.

Topi maschi hanno subito l'operazione di cui sopra per creare sia un AVF e una stenosi IVC. I topi di controllo sono stati sottoposti solo alla laparotomia e alla dissezione dei tessuti che circondano l'IVC, ad esempio, una procedura fittizia, o solo la creazione di una stenosi IVC senza la creazione simultanea di un AVF.
L'IVC è stato osservato con ultrasuoni Doppler il giorno 7 dopo la procedura chirurgica (<strong class="xfig...

Una fistola aortocaval è stata creata perforando l'aorta infra-renale murina attraverso entrambe le pareti nella vena cava inferiore ed è stata seguita dalla creazione di una stenosi nel suo deflusso attraverso la legatura parziale della vena cava inferiore. Questo modello riproducibile può essere utilizzato per studiare la stenosi venosa centrale.

Modello Murine della Stenosi Venoso Centrale utilizzando Aortocaval Fistula con una stenosi di flusso

Central venous stenosis is an important entity contributing to arteriovenous fistula (AVF) failure. A murine AVF model was modified to create a partial ...

La stenosi venosa centrale può causare sia fistola aortocavale, sia AVF, insufficienza primaria di maturazione, così come un successivo fallimento in una fistola funzionante. Questa tecnica utilizza una versione modificata di un modello AVF murino stabilito che riassume il decorso clinico dell'AVF umano ed è facilmente padroneggiabile attraverso diversi passaggi critici. Prima di iniziare la procedura, confermare la mancanza di risposta al dito del dito in un topo C57-Black/6 di nove-11 settimane e posizionare il mouse nella posizione supina nell'area chirurgica.Applicare un unguento agli occhi dell'animale e rimuovere la pelliccia dal lato ventrale del collo all'addome inferiore. Quindi pulire e disinfettare il sito chirurgico con tre scrub sequenziali 10%povidone-iodio e 70% isopropanolo e posizionare un drappo chirurgico sull'animale. Per l'esposizione al sito di morsetto e puntura, posizionare il mouse sotto un microscopio sezionante e, utilizzando una tecnica sterile e un bisturi, fare un'incisione addominale profonda, mediana e della pelle dal bordo inferiore del fegato a appena sopra il pube.Tagliare la muscolatura con le forbici per aprire la cavità addominale e inserire un retrattile nell'addome. Spostare le viscere sul lato destro e avvolgerle in una garza imbevuta di salina. Spostare la vescica e le vescicole seminali sul lato caudale dell'animale e utilizzare un supporto per microneedle per sezionare il mesenterio tra il retto e il retroperitoneo per garantire una visione completa dell'aorta e della vena cava inferiore, o IVC.Quindi utilizzare il supporto del microneedle per sezionare l'aorta infrarenale e l'IVC in blocco dai tessuti retroperitoneali circostanti lateralmente e dorsali per incrociare i tessuti e sezionare i tessuti circostanti per esporre il sito di puntura aortica a circa tre quarti della distanza dalla vena renale sinistra alla biforcazione aortica. Per l'isolamento dell'IVC, sezionare tra l'IVC infrarenale e l'aorta immediatamente distale alla vena renale sinistra ed estendere la dissezione distally a metà strada tra la vena renale sinistra e la biforcazione aortica per l'osservazione IVC infrarenale post-operatoria. Creare una finestra per separare l'IVC dall'aorta e sezionare l'IVC dal tessuto circostante.Quindi posizionare con cura un 8-0 sutura monofilamento di poliammide sotto l'IVC e l'aorta prima di tirare l'estremità della sutura attraverso la finestra per posizionare la sutura solo sotto l'IVC. Per creare l'AVF, piega prima un ago calibro 25 con un angolo da 45 a 60 gradi a quattro millimetri dalla punta dell'ago e blocca l'aorta infrarenale e l'IVC con una clip microchirurgica. Afferrando il tessuto connettivo che circonda la biforcazione, ruotare l'aorta medialmente e caudally per esporre il sito di puntura dell'aorta leggermente allungato al lato ventrale e utilizzare l'ago calibro 25 per forare attraverso l'aorta nell'IVC.Quando il tessuto è stato perforato, rilasciare l'aorta e tirare su dal lato sinistro dell'aorta per coprire il sito di puntura con il tessuto circostante. Quindi rimuovere l'ago e premere delicatamente il sito di puntura con un tampone con punta di cotone per l'emostasi. Per la creazione di stenosi IVC, posizionare longitudinalmente la punta di un catetere endovenoso calibro 22 sull'IVC e ligare il catetere all'IVC con un Sutura.Una volta posizionata la sutura, rimuovere il catetere e confermare l'emostasi primaria prima di rimuovere l'aorta e l'IVC. Coprire il sito di puntura per un altro minuto per assicurarsi l'emostasi e riportare gli organi nella loro cavità addominale prima di chiudere l'addome con 6-0 suture. Quindi posizionare il mouse in una gabbia individuale senza letti su un dispositivo di supporto termico con monitoraggio fino al pieno recupero e utilizzare l'ecografia Doppler per confermare la pervietà della fistola.Il settimo giorno dopo la procedura chirurgica, le aree della fistola e della stenosi dell'IVC sono facilmente rilevabili nella vista longitudinale. Nei topi che portano una stenosi senza AVF, il segmento della stenosi mostra una forma d'onda venosa con un allargamento più spettrale rispetto ai topi a farsa ma senza molta pulsatilità. Nei topi con AVF e stenosi, il segmento della stenosi mostra una forma d'onda pulsatile oltre all'allargamento spettrale e la velocità massima media nel tempo del flusso alla stenosi nei topi che hanno una fecondazione in vitro con stenosi è significativamente più alta che nei topi con stenosi da soli.Il diametro medio IVC alla stenosi nei topi con stenosi da solo è simile a quello osservato nei topi con AVF e stenosi. Inoltre, utilizzando il segmento a monte o a valle come riferimento, la stenosi percentuale è significativamente maggiore nei topi con AVF oltre a una stenosi. Quando si legano insieme il catetere IV e l'IVC, è importante legarli strettamente per creare una stenosi riproducibile.L'applicazione di questa procedura al modello di impianto di innesto venoso murino potrebbe rispondere a come superare l'occlusione della stenosi dell'innesto venoso.

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L'obiettivo è di produrre una fistola artero che è semplice e riproducibile. Questo metodo non fa uso di suture o adesivi colla. Pertanto i campioni possono essere utilizzati con la minor quantità di materiali estranei per l'analisi.

Aspetti tecnici della fistola aorto-cavale mouse

Noi descriviamo un metodo per creare un modello affidabile di ipertensione venosa cerebrale nel topo adulto. Questo modello è stato ampiamente descritto ed testati nel ratto. Questo nuovo omologo nei topi apre la possibilità di utilizzare animali geneticamente modificate e amplia così le applicazioni del modello.

Topo adulto venosa Ipertensione Modello: carotide comune di External Vena giugulare anastomosi.

Modificazioni istologiche e biochimiche dopo aneurisma endograft esclusione sono ancora poco chiari. Descriviamo un nuovo modello di impianto endograft su un aneurisma murino. Attraverso l'analisi trombo con e senza persistente circolazione interfaccia flusso sanguigno, e nuova valutazione biomateriali endovascolare, questo modello vi aiuterà a comprendere meglio endovascolare dell'aneurisma esclusione patobiologia.

Un nuovo modello murino di endovascolare aneurisma dell&#39;aorta riparazione

Qui presentiamo un modello murino di insufficienza della fistola arterovenosa (AVF) in cui è incorporata una configurazione anastomotica clinicamente rilevante. Questo modello può essere utilizzato per studiare la fisiopatologia e per testare possibili interventi terapeutici.

A Novel Modello murino di fistola artero-venosa Fallimento: la procedura chirurgica in dettaglio

Descriviamo qui stenosi nella vena cava inferiore come un modello murino di trombosi profonda della vena. Questo modello racchiude in sintesi restrizione di flusso di sangue, uno dei principali fattori scatenanti di trombosi venosa in esseri umani.

Stenosi della Vena Cava inferiore: un modello murino di trombosi venosa profonda

Il presente protocollo mira a creare sperimentalmente iperplasia intima venosa sottoponendo le vene alla pressione arteriosa per lo sviluppo di strategie per attenuare l'iperplasia intimave venosa a seguito di chirurgia di rivascolazione utilizzando innesti vena.

Un modello di interposizione venosa di coniglio che imita la chirurgia di rivascolarizzazione usando grafts di venina per valutare l'iperplasia intima sotto la pressione sanguigna arteriosa

Questo protocollo descrive in dettaglio le fasi chirurgiche della creazione della fistola artero-venosa iliaca comune murina. Abbiamo sviluppato questo modello per studiare la fisiopatologia degli arti correlata all'emodialisi.

Un modello murino di disfunzione della mano correlata all'accesso all'emodialisi

Il presente protocollo propone la creazione di una fistola artero-venosa nei conigli utilizzando una tecnica no-touch modificata. La tecnica prevede l'anastomosi laterale dell'arteria carotide comune e della vena giugulare esterna senza la dissezione dei tessuti perivenosi o il taglio dell'arteria.

Una tecnica modificata per la costruzione della fistola artero-venosa nei conigli

Questo protocollo presenta la creazione e la conferma di un modello postnatale di sovraccarico del volume ventricolare destro (VO) in topi con fistola arterovenosa addominale (AVF), che può essere applicato per studiare come il VO contribuisce allo sviluppo cardiaco postnatale.

Istituzione e conferma di un modello murino postnatale di sovraccarico del volume ventricolare destro

Qui presentiamo un modello murino per l'anastomosi dell'arteria femorale, offrendo ai ricercatori un prezioso modello animale per studiare e simulare la stenosi anastomotica vascolare. Questo sviluppo è fondamentale per far progredire la nostra comprensione della fisiopatologia alla base di questa condizione e facilitare una ricerca più accurata ed efficace sulle malattie vascolari.

Sviluppo di un modello murino per la stenosi anastomotica dell'arteria femorale

Scopri il modello murino di stenosi venosa centrale mediante fistola aortocavale con stenosi del flusso. Questa tecnica chirurgica riproduce la patologia umana per studiare i fallimenti di maturazione dell'AVF.

Modello Murine della Stenosi Venoso Centrale utilizzando Aortocaval Fistula con una stenosi di flusso

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