-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

IT

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

it_IT

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Preparazione delle sezioni ricrello della retina
Preparazione delle sezioni ricrello della retina
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Preparation of Mouse Retinal Cryo-sections for Immunohistochemistry

Preparazione delle sezioni ricrello della retina

Full Text
30,023 Views
05:25 min
July 1, 2019

DOI: 10.3791/59683-v

Hélène Léger1, Evelyn Santana2, William A Beltran2, Francis C Luca1

1Department of Biomedical Sciences,University of Pennsylvania School of Veterinary Medicine, 2Division Experimental Retinal Therapies, Department of Clinical Sciences and Advanced Medicine,University of Pennsylvania School of Veterinary Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This report details methods for preparing frozen mouse retina sections for immunohistochemistry (IHC), focusing on techniques such as ocular dissection, fixation, and sectioning. The outlined protocol aims to produce high-quality samples suitable for detailed immunostaining of retinal structures.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Histology
  • Immunohistochemistry

Background

  • The retina is crucial for vision, and understanding its cellular structure is important for various research fields.
  • High-quality retinal sections are essential for accurate immunohistochemical analysis.
  • The fragility of the retina necessitates careful dissection and handling to prevent damage.
  • Existing protocols may yield poor quality samples, necessitating improvement.

Purpose of Study

  • To develop efficient and detailed methods for slicing and preparing mouse retina for IHC.
  • To ensure preservation of retinal structures and facilitate accurate immunostaining.
  • To provide clear guidance on common pitfalls in retinal dissection.

Methods Used

  • Methods include dissection of the ocular posterior cup from mouse eyes, followed by fixation in paraformaldehyde.
  • The retina is embedded in OCT media for sectioning, ensuring proper orientation and quality.
  • Key steps include equilibrating eye samples in sucrose solutions and careful cryo-protection before freezing.
  • 10 micrometer thick sections are cut using a cryostat and prepared for immunostaining.

Main Results

  • This protocol generates well-preserved retinal sections, preserving key cellular structures.
  • Immunostaining results show intact photoreceptor markers and properly stratified retinal cell layers.
  • High-quality sections enable in-depth analysis of retinal cells and their functions.
  • Differences in outcomes are highlighted between this method and previously reported techniques.

Conclusions

  • The study provides valuable techniques for producing high-quality frozen retinal sections for IHC, essential for cellular analysis in neuroscience.
  • The detailed protocol enhances understanding of retinal structure and function under various conditions.
  • Improved techniques can lead to better outcomes in retinal research and potential disease models.

Frequently Asked Questions

What advantages does this protocol provide for studying retinal tissue?
This protocol ensures high-quality, preserved retinal sections crucial for accurate immunostaining and analysis of cellular components.
How is the dissection of mouse retina implemented in this study?
The dissection involves delicate methods to extract the retina from the ocular posterior cup while preserving its integrity and orientation.
What specific techniques are used for fixation and embedding?
The retinal samples are fixed in paraformaldehyde and embedded in Optimal Cutting Temperature (OCT) media to optimize structural preservation during sectioning.
What type of analysis can be performed on the prepared sections?
The sections are suitable for immunohistochemical analysis to investigate the expression of various cellular markers relevant to retinal function.
What common pitfalls should researchers be aware of when performing retinal dissection?
Researchers should avoid damaging the retina and ensure proper orientation throughout the dissection process to maintain sample quality.
How can this method be adapted for different experimental needs?
This method can be modified by adjusting fixation time or embedding materials based on specific experimental conditions or markers of interest.

Questo rapporto descrive metodi completi per la preparazione di sezioni della retina del topo congelato per l'immunohistochimica (IHC). I metodi descritti includono la dissezione della coppa posteriore oculare, la fissazione della paraformaldeide, l'incorporamento nei supporti e nell'orientamento dei tessuti della temperatura di taglio ottimale (OCT), il sezionamento e l'immunostaining.

La dissezione retinica del topo è un processo davvero delicato a causa delle dimensioni e della forma degli occhi e della fragilità della sezione della retina. Imperativo da praticare, avere un protocollo dettagliato che fornisca metodi e suggerimenti efficienti è la chiave per la dissezione retinica e la sezione di alta qualità. Forniamo suggerimenti e consigli per aiutare il ricercatore a evitare insidie comuni e ottenere alcune sezioni retiniche di alta qualità adatte all'immunoistochimica.

Segnare la parte temporale dell'occhio di un topo eutanasiato usando un cauterizzatore di coda toccando la cornea molto leggermente e per non più di una frazione di secondo per bruciare leggermente la cornea ed evitare di fare un buco. Subito dopo usava le forcep Dumont 545 curve per enucleare gli occhi del topo. Mettere gli occhi in un criotubo da 1,5 millilitri con un millilitro del 4%PFA e PBS e incubare per 15 minuti sul ghiaccio.

Quindi, trasferire gli occhi fissi utilizzando le forcep Dumont 545 curve in un piatto di dissezione modificato da 35 millimetri riempito con PBS e posto al microscopio sezionato. Utilizzare un microknife per fare una piccola incisione al segno di bruciatura perpendicolare e appena sopra il bordo limbo della cornea. Inserire forbici curve nell'incisione ed eseguire un taglio circonferenziale della cornea seguendo il limbo.

Quindi, usando sottili forcep Dumont 5, rimuovere la cornea, estrarre la lente e sollevarla delicatamente lontano dalla porzione posteriore dell'occhio. Il corpo vitreo verrà fuori con l'obiettivo e la retina sarà visibile come una superficie bianca che copre l'interno della coppa degli occhi posteriore. Lavare le coppe per gli occhi isolate due volte in un millilitro di PBS per 10 minuti a temperatura ambiente.

Per crioprotettare le coppe per gli occhi, equilibratele nel 15% di saccarosio e PBS durante la notte a quattro gradi Celsius fino a quando non affondano. Quindi trasferire le coppe per gli occhi al 30% di saccarosio e PBS per due o tre ore fino a quando non affondano. Posizionare le coppe per gli occhi in OCT in crio-stampi da 10 per 10 millimetri per l'incorporamento.

Al microscopio sezionato, orientare l'occhio nel crio-muffa lungo il suo asse ventrale dorsale ruotando l'occhio fino a quando il segno di bruciatura è in cima. Il nervo ottico è uno a sinistra e la parte ritaglia dello stampo si affaccia a destra. Per congelare il tessuto retinale, immergere il criosta stampo per almeno cinque minuti in un bicchiere metallico contenente isopentane e quindi posizionare il becher in azoto liquido fino a un terzo dell'altezza del becher.

Rimuovere il blocco congelato, avvolgerlo in un foglio di alluminio e conservarlo a meno 80 gradi Celsius. Utilizzare una penna o una sharpie per contrassegnare il blocco bloccato per registrarne l'orientamento. Dopo aver regolato la temperatura del criostato tra meno 20 e meno 25 gradi Celsius, posizionare gli stampi contenenti le coppe oculari incorporate all'interno e consentire loro di equilibrare alla temperatura del criostato per un'ora.

Installare il blocco nel criostato con l'orientamento ventrale dorsale e iniziare a tagliare sezioni seriali spesse 10 micrometri. Posizionare con cura le sezioni retiniche su vetrini al microscopio annotati e numerati e quindi conservare in caselle di scorrimento a meno 20 gradi Celsius o meno 80 gradi Celsius fino a quando non sono pronti per l'immunosottenzione. Immunoistochimica con anticorpi contro la rodopsina, un marcatore fotorecettore, decarbossilasi dell'acido glutammico 65, marcatore cellulare di amacrina, glutammina sintetasi e marcatore cellulare muller, e calbindina, un marcatore cellulare orizzontale è stato eseguito su sezioni retiniche.

I risultati indicano che questo protocollo produce sezioni retiniche di alta qualità e ben conservate a differenza delle sezioni retiniche di scarsa qualità ottenute da un protocollo diverso. I segmenti interni ed esterni ricchi di rodopsina rimangono verticali e intatti con poca o nessuna separazione dall'sovrascrivere l'epitelio pigmentato retinico. Gli internaurioni, come le cellule di amacrina positiva gad65, rimangono adeguatamente stratificati all'interno dello strato nucleare interno e dello strato plexiforme interno.

Inoltre, le cellule di Muller rimangono ben conservate con soma correttamente allineato nei processi citoplasmatici che vanno dallo strato cellulare ganglio allo strato nucleare esterno. Inoltre, cellule orizzontali ben definite sono rilevabili allo strato nucleare interno e al bordo esterno dello strato di plexiforme. È importante contrassegnare la regione topper degli occhi e mantenere l'orientamento durante l'incorporamento.

Preparare sempre la paraformaldeide sotto il cofano con gli opportuni dispositivi di protezione individuale.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Neuroscienze Numero 149 Retina Cryo-section Supporti di temperatura di taglio ottimale OCT Immunohistochimica Enucleation occhio del mouse

Related Videos

Preparazione del tessuto cerebrale del mouse per la microscopia Immunoelectron

08:47

Preparazione del tessuto cerebrale del mouse per la microscopia Immunoelectron

Related Videos

37.8K Views

Tutta Monte immunofluorescenza del mouse Retina neonatale per Indagare Angiogenesi In vivo

08:47

Tutta Monte immunofluorescenza del mouse Retina neonatale per Indagare Angiogenesi In vivo

Related Videos

47K Views

Protocollo ottimizzato per la preparazione dell'intero montaggio retinico per l'imaging e l'immunoistochimica

08:32

Protocollo ottimizzato per la preparazione dell'intero montaggio retinico per l'imaging e l'immunoistochimica

Related Videos

24K Views

Cryo-sezioni della retina, intero-monta e ipotonico Vasculature isolato preparazioni per la visualizzazione di Immunohistochemical dei Pericytes microvascolare

10:46

Cryo-sezioni della retina, intero-monta e ipotonico Vasculature isolato preparazioni per la visualizzazione di Immunohistochemical dei Pericytes microvascolare

Related Videos

10.7K Views

Immunostaining delle retine a montaggio intero con il metodo clarity tissue clearing

09:01

Immunostaining delle retine a montaggio intero con il metodo clarity tissue clearing

Related Videos

8.2K Views

Un protocollo per valutare e quantificare le patologie dell'epitelio pigmentato retinico in modelli murini di degenerazione maculare legata all'età

09:24

Un protocollo per valutare e quantificare le patologie dell'epitelio pigmentato retinico in modelli murini di degenerazione maculare legata all'età

Related Videos

2.3K Views

Una procedura per la criosezione del ganglio della radice dorsale del topo

04:20

Una procedura per la criosezione del ganglio della radice dorsale del topo

Related Videos

8.4K Views

Studio dei circuiti retinici e della localizzazione molecolare mediante microscopia immunoelettronica pre-incorporata

05:15

Studio dei circuiti retinici e della localizzazione molecolare mediante microscopia immunoelettronica pre-incorporata

Related Videos

726 Views

Preparazione di campioni retinici per microscopia elettronica volumetrica

03:48

Preparazione di campioni retinici per microscopia elettronica volumetrica

Related Videos

989 Views

Criosezione e immunocolorazione della retina del topo

06:30

Criosezione e immunocolorazione della retina del topo

Related Videos

1.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code