14 maggio 2020
Qui viene presentato un protocollo per la chiarificazione primaria della coltura cellulare CHO utilizzando un separatore acustico. Questo protocollo può essere utilizzato per la chiarificazione primaria di colture di pallone shake o raccolti di bioreattori e ha la potenziale applicazione per la chiarificazione continua del materiale di spurgo cellulare durante le operazioni del bioreattore di perfusione.
Il nostro protocollo dimostra come utilizzare un separatore di onde acustiche su scala di banco per la separazione primaria delle cellule CHO dal fluido di coltura raccolto contenente un modello di anticorpo monoclonale. La separazione con onde acustiche offre alcuni vantaggi rispetto ai tradizionali metodi di chiarificazione primaria, come la centrifugazione e la filtrazione, come l'ingombro ridotto, il basso rischio di contaminazione e la riduzione del rischio di incrostazioni dei filtri. Poiché la separazione ad onde acustiche fornisce un flusso continuo di materiale privo di cellule per i successivi processi di filtrazione e cromatografia, esiste il potenziale per la sua applicazione nel bioprocesso continuo.
Per preparare il separatore di onde acustiche, collegare i cavi di torbidità alle rispettive porte e collegare i cavi BNC di alimentazione della camera al retro del sistema di separazione delle onde acustiche. Inserire le sonde di torbidità nel torbidiometro e nell'alloggiamento del termometro e serrare le viti. Collegare il tubo di alimentazione all'ingresso della porta di torbidità di alimentazione tramite la pompa di alimentazione.
E collegare il tubo a Y dall'uscita della porta di torbidità di alimentazione alla porta di ingresso della camera acustoforetica. Collegare il tubo della fase 1 dalla porta di scarico della camera acustoforetica a un recipiente di raccolta delle cellule tramite la pompa della fase 1 e collegare il tubo dalla porta del permeato della camera acustoforetica all'ingresso della porta di torbidità della sonda 1. Quindi, collegare il tubo di raccolta dalla porta di torbidità della sonda 1 a un recipiente di raccolta del prodotto.
Per adescare il sistema con il fluido di coltura cellulare raccolto, attivare il separatore di onde acustiche e aprire il programma software associato. Nel pannello Letture, fare clic su Avvia test per avviare la registrazione dei dati. E collegare l'estremità del tubo di alimentazione al recipiente del fluido per colture cellulari raccolte che viene agitato.
Per avviare la pompa di alimentazione, immettere la velocità della pompa e premere Invio. Verificare che la freccia di direzione della pompa sia orientata correttamente per garantire che il fluido della cella venga pompato dal recipiente nella camera acustoforetica e fare clic sull'icona del triangolo per iniziare. Monitorare le misure di torbidità in alimentazione nel pannello di riduzione percentuale durante il riempimento della camera acustoforetica.
Se il fluido di coltura cellulare raccolto viene miscelato a sufficienza all'interno del recipiente del fluido cellulare, i valori di torbidità saranno coerenti durante il caricamento della camera. Una volta che il liquido si trova sopra il trasduttore piezoelettrico sul retro della camera acustoforetica, fare clic su Spegni per arrestare la pompa. E collegare l'altra estremità del cavo di alimentazione BNC alla camera acustoforetica.
Una volta riempita e accesa la camera acustoforetica, modificare la velocità della pompa di alimentazione alla velocità operativa desiderata. Per attivare l'alimentazione piezoelettrica di fase 1, far scorrere la barra nel modulo di alimentazione a 10 watt e fare clic su Accendi.Una volta che le celle iniziano a depositarsi sul fondo della camera acustoforetica, avviare la pompa di fase 1 con una velocità appropriata in base alla densità delle celle e alla velocità della pompa di alimentazione, osservando attentamente le camere di separazione delle onde acustiche e regolando le velocità della pompa secondo necessità. Per calcolare la massa della cella impaccata, tarare una bilancia con una provetta vuota da 15 millilitri e riempire la provetta con materiale di alimentazione.
Dopo aver registrato il peso totale della provetta con l'alimentazione, centrifugare la provetta e travasare il surnatante in un nuovo contenitore. Misurare il peso del tubo con il pellet della cella. Quindi, monitorare il profilo di torbidità della torbidità dello stadio 1 quando il trabocco dalla camera acustoforetica entra nella sonda di torbidità 1.
Al termine della corsa, arrestare l'alimentazione e la fase 1 delle pompe e spegnere la camera. Scollegare il cavo di alimentazione BNC e raccogliere il materiale di raccolta del prodotto per l'analisi a valle. Per drenare il fluido rimanente dalla camera acustoforetica, posizionare il tubo di scarico in un recipiente vuoto.
Scollegare il tubo dall'ingresso della camera acustoforetica e dalle porte di permeazione e rilasciare il tubo di scarico dalla testa della pompa. Quando la camera è vuota, ricollegare il tubo, riposizionare il tubo di scarico nella testa della pompa e utilizzare una velocità di alimentazione e di stadio 1 di 60 millilitri al minuto per lavare l'acqua deionizzata dall'estremità del tubo di alimentazione per 15-20 minuti. Al termine del risciacquo con acqua, pompare alcol isopropilico al 70% attraverso il tubo e la camera per 15-20 minuti, seguito da un ulteriore risciacquo con acqua deionizzata da 15 a 20 minuti.
In questa analisi rappresentativa, quando il fluido cellulare raccolto è entrato nella camera del separatore di onde acustiche, le misurazioni della torbidità dalla sonda di torbidità di alimentazione sono rimaste costanti, da circa 1000 a 1100 NTU. E le misurazioni della sonda 1 della torbidità sono rimaste intorno a 40-50 NTU. Mantenere il fluido cellulare raccolto all'interno della camera per periodi di tempo più lunghi provoca aumenti di temperatura, come in questo esempio di una differenza di temperatura superiore a sei gradi Celsius del fluido cellulare raccolto prima di entrare nella camera acustoforetica e dopo la separazione acustica.
Un'altra considerazione importante quando si eseguono raccolte ad alta densità di celle è la saturazione delle sonde di torbidità, poiché le misurazioni della torbidità per la sonda di torbidità di alimentazione diventano sature oltre 4600 NTU, con conseguente probabile sottostima nel calcolo dell'efficienza di rimozione delle celle. Inoltre, l'efficienza di rimozione delle celle diminuisce significativamente da circa il 100% al 57% all'aumentare della velocità della pompa di alimentazione, con una velocità della pompa di alimentazione più lenta in genere direttamente correlata a una migliore chiarificazione delle celle. Man mano che i produttori di prodotti biotecnologici si spostano verso la produzione continua, l'uso della tecnologia delle onde acustiche può avere ulteriori applicazioni per il bioprocesso continuo e le operazioni di bioreattore a profusione.
Questo protocollo descrive l'uso di un separatore a onde acustiche per la chiarificazione primaria di colture cellulari CHO. Vengono evidenziati i vantaggi di questo metodo rispetto alle tecniche tradizionali, inclusa la sua potenzialità per la biotransformazione continua.
La chiarificazione primaria rappresenta un collo di bottiglia critico nella bioraffinazione, dove metodi tradizionali come la centrifugazione e la filtrazione introducono rischi di contaminazione, richiedono ampi spazi e ostacolano l'elaborazione continua. La separazione mediante onde acustiche offre un'alternativa compatta e a basso rischio di contaminazione, che permette un flusso continuo del fluido chiarificato, facilitando l'integrazione in flussi di lavoro di bioraffinazione continua. Questo approccio aumenta l'affidabilità predittiva nelle fasi iniziali di purificazione fornendo una rimozione riproducibile delle cellule, riducendo al contempo la complessità operativa e i rischi di intasamento dei filtri.
La separazione mediante onde acustiche si inserisce nel primo tratto del processo di purificazione, posizionandosi dopo il raccolto e prima della filtrazione in profondità o della cromatografia, consentendo un'integrazione senza interruzioni nelle linee di produzione continua.