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Neuroscience
In Vivo Targeting di cellule progenitrici neurali in Ferret Neocortex di In Utero Electroporation
In Vivo Targeting di cellule progenitrici neurali in Ferret Neocortex di In Utero Electroporation
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JoVE Journal Neuroscience
In Vivo Targeting of Neural Progenitor Cells in Ferret Neocortex by In Utero Electroporation

In Vivo Targeting di cellule progenitrici neurali in Ferret Neocortex di In Utero Electroporation

Full Text
6,407 Views
07:03 min
May 6, 2020

DOI: 10.3791/61171-v

Nereo Kalebic1,2, Barbara Langen1,3, Jussi Helppi1, Hiroshi Kawasaki4, Wieland B. Huttner1

1Max Planck Institute of Molecular Cell Biology and Genetics, 2Human Technopole, 3Landesdirektion Sachsen, 4Department of Medical Neuroscience, Graduate School of Medical Sciences,Kanazawa University

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for genetic manipulation in the embryonic ferret brain using in utero electroporation. The method focuses on targeting neural progenitor cells in vivo within the developing neocortex, providing insights into brain development mechanisms.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Developmental Biology
  • Genetic Manipulation

Background

  • In utero electroporation allows precision targeting of neural stem cells.
  • The ferret is a key model for studying neocortex expansion and folding.
  • This method enhances understanding of the developmental processes in the brain.
  • Previous studies have explored evolutionary gene functions using this approach.

Purpose of Study

  • To develop a reliable method for genetic manipulation in the embryonic ferret brain.
  • To investigate the roles of specific genes in neocortical development.
  • To understand the expansion and folding mechanisms of the neocortex.

Methods Used

  • In vivo electroporation is performed on embryonic ferrets.
  • DNA solution is injected into the cerebral ventricles of 33-day-old embryos.
  • Five electrical pulses are applied to facilitate gene expression at targeted sites.
  • Key steps include anesthesia, incision, and careful administration of the DNA solution.
  • Following electroporation, various molecular markers are used to analyze targeted cells.

Main Results

  • Postnatal analysis shows targeted cells differentiate into neurons and glia.
  • Gene expression in progenitor cells can be tracked using transcription factor markers.
  • Significant findings include the identification of key genes related to neocortex expansion.

Conclusions

  • This method opens avenues for studying gene functions in brain development.
  • Findings have implications for understanding evolution of the human neocortex.
  • The electroporation technique enables targeted manipulation of gene expression during critical developmental phases.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using ferrets in this study?
Ferrets provide a valuable model for studying neocortex development due to their similar developmental progression to humans.
How is the genetic manipulation implemented?
Performing in utero electroporation allows for DNA delivery specifically to neural progenitor cells, enhancing targeted studies.
What types of outcomes are obtained from this method?
The method yields vital insights into cell differentiation, gene expression, and the structural development of the neocortex.
Can this technique be adapted for other species?
Yes, while this study focuses on ferrets, in utero electroporation can be adapted for other developing mammals.
What are the key limitations of this protocol?
The procedure requires precise execution and careful monitoring of the embryos to ensure successful outcomes and minimize risks.
How can the results of this study contribute to understanding brain disorders?
By manipulating specific genes, researchers can identify pathways involved in developmental disorders and potential therapies.
What is the timeline for observing effects after electroporation?
Effects can be analyzed within days of electroporation, with significant observations noted from postnatal day zero to day 16.

Presentato qui è un protocollo per eseguire la manipolazione genetica nel cervello furetto embrionale utilizzando in utero elettroporazione. Questo metodo consente di indirizzare le cellule progenitrici neurali nella neocorteccia in vivo.

Questo protocollo ci permette di eseguire una manipolazione genetica in vivo in un modello animale chiave che ci permette di studiare l'espansione e la piegatura di una neocorteccia in via di sviluppo. Il principale vantaggio di questo metodo è nell'utilizzare un'elevata specificità spaziale e temporale nel colpire quelle cellule staminali neurali che sono il tipo di cellula chiave per lo sviluppo cerebrale. Prima di iniziare la procedura, tirare i capillari in vetro su un estrattore a micro pipetta e utilizzare le forcep per tagliare la parte distale del capillare per regolare il diametro della punta capillare.

Il giorno 33 embrionale, aggiungere l'appropriata concentrazione di DNA in PBS, integrata con 0,1%Fast Green con miscelazione delicata, e posizionare un furetto femminile incinta a 3 ore, anestetizzato, su un tavolo operativo con un riscaldatore. Confermare il livello appropriato di sedazione toccando la pelle perioculare e pizzicando la pelle tra la seconda e la terza o la terza e la quarta dita dei piedi di entrambi gli arti posteriori. L'isoflurane può causare effetti avversi, tra cui nausea e vertigini.

Quando si maneggia l'isoflurane in forma liquida, utilizzare l'attrezzatura di protezione. Durante l'intervento chirurgico, utilizzare contenitori appropriati per catturare il gas. Iniettare l'animale per via sottocutanea con analgesico, antibiotico e glucosio e posizionare un unguento sugli occhi dell'animale.

Utilizzare i tosaerba per radere l'addome e pulire la pelle esposta con una soluzione di acqua, sapone e iodio. Quindi, asciugare la pelle con tamponi di garza e disinfettare con alcool e scrub allo iodio. Per l'elettroporazione in utero, posizionare un drappo sterile sull'animale e utilizzare un bisturi per fare un'incisione cutanea di circa 5 centimetri alla linea alba.

Usa le forbici per tagliare lo strato muscolare e posizionare tamponi di garza intorno al sito di incisione. Bagnare la garza con PBS e posizionare l'utero sui tamponi. Utilizzando una pipetta con una punta lunga, caricare uno dei capillari di vetro tirato con 5 microlitri di soluzione di DNA per embrione da iniettare.

Attaccare il capillare caricato a un supporto e collegare l'altro lato del supporto a un tubo e a un boccaglio. Individuare la testa del primo embrione e posizionare una sorgente luminosa in fibra ottica accanto alla testa. Utilizzando l'iride pigmentata come punto di riferimento, penetrare nella pelle, nel cranio e nel tessuto cerebrale con la punta del capillare di vetro e utilizzare la pipettazione della bocca per facilitare la consegna di 3-5 microlitri della soluzione di iniezione nel ventricolo di uno degli emisferi cerebrali.

Poiché la soluzione iniettata contiene lo 0,1% di Verde veloce, un'iniezione riuscita comporterà una colorazione verde scuro del ventricolo iniettato, che ora sarà visibile come struttura a forma di rene. Dopo l'iniezione, posizionare gli elettrodi di pinzetta sull'utero sopra la testa dell'embrione con il polo positivo sopra l'area da prendere di mira e il polo negativo sotto l'area iniettata. Impostare la lunghezza dell'impulso dell'elettroporate su 50 millisecondi, la tensione dell'impulso su 100 volt, l'intervallo di impulsi su un secondo e il numero di impulsi su cinque.

Una volta impostati tutti i parametri, premere Pulse" e far cadere rapidamente diverse gocce di PBS caldo sull'embrione elettroporato. Quando tutti gli embrioni sono stati elettroporati, riportare l'utero alla cavità peritoneale e utilizzare una sutura 4-0 per chiudere lo strato muscolare con il peritoneo. Chiudere la pelle in modo simile e coprire la ferita con spray all'alluminio.

Quindi riportare l'animale nella sua gabbia con una fonte di calore e monitorare fino alla piena recumbency. Quattro giorni dopo l'elettroporazione al giorno 37 embrionale, la maggior parte delle cellule mirate e la loro progenie si trovano ancora nelle zone germinali e le cellule sono raramente osservate ulteriormente basalmente all'interno della piastra corticale. L'identità del progenitore può essere esaminata per immunofluorescenza per marcatori di cellule cicliche, come il PCNA, mentre un sottoinsieme di progenitori sottoposti a mitosi può essere mostrato da marcatori come fosfo-istone 3.

Al giorno zero postnatale, otto giorni dopo l'elettroporazione, la progenie delle cellule mirate si diffuse in tutti gli strati istologici. Usando una combinazione di marcatori del fattore di trascrizione, possono essere rivelate diverse popolazioni di progenitori basali. Ad esempio, Sox2 è un marcatore di cellule progenitrici prolifeative, incluso il glia radiale basale.

E la proteina cerebrale T-box 2 è un marcatore dei progenitori basali neurogenici, che sono principalmente progenitori intermedi. Entro il giorno 16 postnatale, la maggior parte delle cellule mirate smette di dividersi e differenziarsi in neuroni e glia, con la neocorteccia del giorno postnatale del furetto 16 che mostra il caratteristico schema pieghevole. L'elettroporazione in utero degli embrioni di furetto è un metodo estremamente potente per studiare la funzione dei geni.

Ci ha permesso di studiare i geni che sono stati implicati nell'espansione della neocorteccia nell'evoluzione, compresi i geni specifici dell'uomo. E usando questo potente metodo, siamo stati davvero in grado di scoprire le caratteristiche chiave di come funzionava probabilmente l'espansione evolutiva della neocorteccia umana.

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Neuroscienze Numero 159 in utero elettroporazione furetti sviluppo neocorteccia cellule progenitrici neurali manipolazione genetica in vivo

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