16 luglio 2020
In questo lavoro, forniamo un protocollo per biofunzionalizzare nanomateriali magnetici con anticorpi per il targeting cellulare specifico. Ad esempio, utilizziamo nanofili di ferro per colpire le cellule tumorali.
La caratteristica chiave di questo protocollo, può essere applicato su un'ampia gamma di nanomateriali di ossido di ferro-ferro. Inoltre, può essere applicato su nanomateriali multisegmentati, come i nanofili ferro-oro. Questo protocollo può essere eseguito in sicurezza in qualsiasi laboratorio biologico standard.
I principali vantaggi di questa tecnica di biofunzionalizzazione sono la capacità di produrre un nanomateriale specificamente mirato basato su un forte legame covalente tra il nanofilo e gli anticorpi. Iniziate tagliando i dischi di alluminio in piccoli pezzi con una lama a un taglio e un piccolo martello. Metti i pezzi tagliati in un tubo da due millilitri e riempilo con un millilitro di idrossido di sodio monomolare, assicurandoti che tutti i pezzi di alluminio siano coperti.
Lasciare il tubo a temperatura ambiente in una cappa chimica per 30 minuti. Dopo l'incubazione, rimuovere i pezzi di alluminio con una pinzetta e mantenere i nanofili rilasciati in idrossido di sodio per altri 30 minuti. Posizionare la provetta in una griglia magnetica a secco, attendere due minuti e sostituire la soluzione con idrossido di sodio fresco.
Sonicare il tubo da due millilitri con i nanofili per 30 secondi e lasciarlo per un'ora all'interno di una cappa chimica. Ripeti questo passaggio almeno quattro volte. Al termine, posizionare la provetta da due millilitri nella rastrelliera magnetica, scartare l'idrossido di sodio e sostituirlo con un millilitro di etanolo assoluto.
Sonicare i nanofili per 30 secondi, posizionare il tubo nella rastrelliera magnetica e sostituire l'etanolo. Ripetere il lavaggio con etanolo almeno quattro volte. Dopo aver lavato i nanofili, trasferirli in una provetta di vetro da cinque millilitri con una pipetta da un millilitro.
Aggiungere 100 microlitri di APTES alla soluzione di nanofili e far vorticare il tubo di vetro per 20 secondi. Immergere il tubo in un bagno ad ultrasuoni e farlo sonicare per un'ora. Quindi estrarre il tubo dalla vasca e aggiungere 400 microlitri di acqua deionizzata e 20 microlitri di idrossido di sodio monomolare.
Ripetere la sonicazione di un'ora. Dopo aver tolto il tubo di vetro dal bagno a ultrasuoni, posizionarlo accanto a un magnete per raccogliere i nanofili. Sostituire il surnatante con un millilitro di etanolo assoluto fresco e sonicare il tubo per 10 secondi.
Ripetere il lavaggio con etanolo e la sonicazione due volte. Sciogliere 0,4 milligrammi di EDC e 1,1 milligrammi di Sulfo-NHS e un millilitro di MES in una provetta da due millilitri. In un altro tubo da due millilitri, aggiungi 960 microlitri di PBS 0,1 molare e aggiungi 30 microlitri di anticorpo anti-CD44.
Quindi, aggiungere 10 microlitri della miscela EDC/Sulfo-NHS precedentemente preparata a questo tubo. Mettere il tubo di anticorpi in uno shaker e agitarlo a 10 volte G per 15 minuti a temperatura ambiente. Nel frattempo, posiziona un magnete accanto al tubo con i nanofili rivestiti di APTES per due minuti, scarta l'etanolo e sostituiscilo con PBS.
Sonicare i nanofili per 10 secondi. Dopo l'ultimo lavaggio con PBS, raccogliere i nanofili e trasferire la soluzione di anticorpi attivati nel tubo dei nanofili. Quindi sonicalo per 10 secondi.
Sostituire il tubo nel rotatore durante la notte a quattro gradi Celsius. Il giorno successivo, raccogli i nanofili con il magnete e scarta il surnatante. Aggiungere un millilitro di BSA al 2% e incubare la provetta per un'ora a quattro gradi Celsius per bloccare la reazione.
La spettroscopia di perdita di energia elettronica o le mappe EELS possono essere utilizzate per visualizzare gli atomi di silicio sulla superficie del nanofilo e confermare la presenza del rivestimento APTES. Sui nanofili non rivestiti, gli atomi di ferro appaiono blu scuro e gli atomi misti di ferro e ossigeno sono blu chiaro. La corrispondente mappatura EELS di nanofili non rivestiti mostra una maggiore intensità di ferro rispetto all'ossigeno al centro rispetto alla superficie, indicando una struttura di ossido ferro-ferro.
La mappatura ha dimostrato che lo strato di ossido di ferro è costituito da più ossido di ferro (II, III) che di ossido di ferro (III). L'antigenicità degli anticorpi attaccati è stata confermata utilizzando i saggi di immunoprecipitazione e western blot. Il test BCA è stato utilizzato per quantificare il numero di anticorpi sui nanofili.
La misurazione del potenziale zeta è stata utilizzata per chiarire la funzionalizzazione della superficie. Il gruppo amminico terminale su APTES ha ridotto la carica negativa rispetto ai nanofili non rivestiti. La funzionalizzazione degli anticorpi ha ulteriormente ridotto la carica.
Il targeting cellulare specifico dei nanofili funzionalizzati con anticorpi è stato confermato utilizzando la microscopia confocale. Le figure A e B rappresentano le immagini al microscopio in campo chiaro rispettivamente del campione C e D. Il colore rosso corrisponde alla rappresentazione della membrana cellulare, il blu rappresenta il nucleo e i cluster verdi rappresentano la presenza di nanofili CD44 attaccati e mirati.
Inoltre, il test di vitalità cellulare è stato utilizzato per verificare che i nanofili non rivestiti, rivestiti di APTES e rivestiti di anticorpi fossero biocompatibili. Nel rivestimento di processo APTES, è molto importante aggiungere l'acqua deionizzata prima della soluzione di idrossido di sodio per migliorare il legame tra la molecola APTES e i nanofili. Inoltre, durante il processo di biofunzionalizzazione, è necessario lavare il nanofilo con tampone PBS un paio di volte per migliorare il legame covalente tra l'anticorpo e i nanofili.
Questo studio presenta un protocollo per la bionanofunzionalizzazione di nanomateriali magnetici con anticorpi al fine di ottenere un indirizzamento cellulare specifico, in particolare utilizzando nanofili di ferro per colpire cellule tumorali.
Questo protocollo consente la produzione di nanomateriali magnetici specificamente mirati mediante l'ancoraggio covalente di anticorpi, supportando lo sviluppo di terapie e diagnostica di precisione. Migliorando la specificità del bersaglio e permettendo un controllo magnetico a distanza, il metodo contribuisce alla riduzione dei rischi meccanicistici nei programmi oncologici in fase iniziale. L'approccio aumenta l'affidabilità predittiva degli interventi basati su nanomateriali, validando sia l'efficienza del targeting che la biocompatibilità.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione del bersaglio all'identificazione del composto promettente, consentendo una valutazione affidabile dei composti mediante nanomateriali quantificabili e sensibili al campo magnetico.