26 settembre 2020
Una tecnica di soffiatura occidentale ad altissima velocità viene sviluppata migliorando la cinetica del legame antigene-anticorpo attraverso la tecnologia di drenaggio e rifornimento ciclico (CDR) in combinazione con un agente che migliora l'immunoreazione.
Il Western blotting è un metodo consolidato che rileva gli antigeni su una membrana trasferita ed è comunemente usato nella ricerca biomedica, ma richiede ore o giorni per completare l'intera procedura. Utilizzando la combinazione della tecnologia di potenziamento immunitario con il drenaggio e il rifornimento ciclico, una volta ottenuta una membrana a blocchi, l'intera procedura può essere eseguita in soli 20 minuti senza sacrificare la sensibilità. Poiché il Western blotting è comune a molte aree di ricerca diverse, ha un'ampia applicabilità per accelerare la ricerca.
L'uso efficace di questo protocollo si basa sull'ottimizzazione della diluizione degli anticorpi con l'immunoreazione che migliora il reagente e il tempo di incubazione. Iniziare incubando le membrane in PVDF in appositi tamponi bloccanti per un'ora con agitazione a temperatura ambiente. Mentre le membrane sono in incubazione, preparare una soluzione di agente che migliora l'immunoreazione al 10% o IRE1 con acqua distillata e agitarla bene, quindi diluire l'anticorpo primario con IRE1 al 10%, mescolandolo delicatamente e accuratamente.
Raccogliere la membrana in PVDF con una pinzetta e scolare brevemente la soluzione bloccante. Inserire la membrana in un tubo conico con anticorpo primario, assicurandosi che l'intera membrana aderisca alla parete del tubo e che il lato della membrana che era originariamente a contatto con il gel sia rivolto verso l'interno. Chiudere bene il tubo.
Inserire il tubo in una bottiglia di vetro per il forno di ibridazione e accendere il forno. Incubare la membrana con una rotazione di sei giri/min per almeno cinque minuti. Arrestare la rotazione e rimuovere con cautela la membrana in PVDF dal tubo con una pinzetta.
Metti la membrana in un contenitore con 50 millilitri di PBST e sciacquala, quindi sciacquala in un contenitore con acqua distillata fino a quando non compaiono bolle, che rimuoveranno la maggior parte dell'anticorpo. Trasferire la membrana in una centrifuga per insalata che contenga 250 millilitri di PBST. Posizionare il cestello del filtro nella centrifuga e assicurarsi che il coperchio sia stato inserito saldamente, quindi attivare la centrifuga e farla funzionare per 20-30 secondi.
Scartare la soluzione e sciacquare brevemente l'interno della centrifuga con acqua distillata. Aggiungere 250 millilitri di PBST nello spinner e ripetere la centrifuga, quindi incubare la membrana con gli anticorpi secondari e lavarla nuovamente come descritto nel manoscritto del testo. Posizionare un pezzo di pellicola flessibile semitrasparente su una superficie piana.
Mescolare due componenti del substrato chemiluminescente in una provetta da cinque millilitri e trasferire immediatamente 1,5 millilitri del substrato miscelato sulla pellicola semitrasparente. Posizionare la membrana in PVDF sulla soluzione e trasferire il resto della soluzione di substrato sulla membrana. Incubare la membrana in PVDF con il substrato miscelato per un minuto.
Raccogliere la membrana in PVDF con una pinzetta e scolare brevemente la soluzione del substrato. Inserire la membrana tra un paio di pellicole trasparenti e visualizzarla in modalità chemiluminescente. Di seguito sono riportate le quantità di antigene e di anticorpi rispettivamente necessarie per la rilevazione chemiluminescente del Western blot.
Sia nelle incubazioni statiche che in quelle CDR, l'uso di soluzioni IRE ha aumentato la sensibilità. Allo stesso modo, la concentrazione minima dell'anticorpo anti-6s His tag è stata abbassata da 100 a 50 nanogrammi per millilitro in condizioni statiche e da 100 a 12,5 nanogrammi per millilitro in condizioni di CDR. L'incubazione CDR per 5 o 10 minuti ha abbassato drasticamente il limite di rilevamento rispetto all'incubazione statica.
Inoltre, la combinazione di CDR con IRE ha rivelato una sensibilità superiore al Western blot, anche entro un periodo di incubazione estremamente breve. Qui è dimostrata l'applicazione di successo di questo metodo a un Western blot con rivelazione fluorescente. La rilevazione fluorescente, a differenza della rilevazione chemiluminescente, ha la capacità unica di rilevare più bersagli contemporaneamente sullo stesso blot senza rimuovere e riprovare gli anticorpi.
La fosfatasi alcalina e la beta-actina marcate con His-tagged nei lisati cellulari sono state rilevate simultaneamente utilizzando un fluoroforo a due colori. L'incubazione CDR con IRE non solo ha accelerato il rilevamento, ma ha anche aumentato la sensibilità. Durante l'incubazione, la membrana deve rimanere attaccata alla parete del tubo.
Il tubo deve essere ruotato orizzontalmente in modo che la soluzione lavi continuamente sulla superficie della membrana. Questo protocollo ha accelerato significativamente la produttività della nostra ricerca, che dipende fortemente dalle procedure di Western blotting.
Visualizza la trascrizione completa e accedi a migliaia di video scientifici
In questo articolo viene presentata una tecnica di western blot ad altissima velocità che riduce in modo significativo il tempo necessario per l'esecuzione del procedimento. Utilizzando la tecnologia di drenaggio e rifornimento ciclico (CDR) insieme a un agente che potenzia l'immunoreazione, l'intero processo può essere completato in soli 20 minuti senza compromettere la sensibilità.
Il blotting Western rimane una tecnica fondamentale nella validazione degli target e nell'analisi dei biomarcatori, ma i lunghi periodi di incubazione creano collo di bottiglia nei flussi di lavoro di scoperta ad alto rendimento. Questo metodo ultra-rapido riduce il tempo del saggio da ore a 20 minuti mantenendo la sensibilità, consentendo un'analisi rapida dell'espressione proteica su più campioni. L'approccio favorisce test di ipotesi più veloci e l'identificazione di candidati promettenti grazie al miglioramento del rendimento del saggio, senza compromettere la qualità dei dati.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dallo screening dell'interazione con il bersaglio all'ottimizzazione del composto promettente, in cui la quantificazione rapida delle proteine guida cicli iterativi di progettazione.