14 dicembre 2020
Le alterazioni indotte da antimicrobici dell'architettura del biofilm di Pseudomonas aeruginosa differiscono tra gli isolati clinici coltivati da pazienti con fibrosi cistica e infezione polmonare cronica. Dopo la microscopia confocale, il software COMSTAT può essere utilizzato per quantificare le variazioni nell'architettura del biofilm (ad esempio, area superficiale, spessore, biomassa) per i singoli isolati per valutare l'efficacia degli agenti anti-infettivi.
L'importanza di questo protocollo è che offre un quadro semplice e riproducibile per quantificare le strutture del biofilm in vitro in condizioni antimicrobiche variabili. Il vantaggio principale di questa tecnica è che aiuta a eliminare le variazioni soggettive associate al funzionamento manuale di COMSTAT, il che in ultima analisi facilita la standardizzazione e la trasparenza degli esperimenti tra i centri di ricerca. Per visualizzare le colture di Pseudomonas aeruginosa, posizionare la piastra sul tavolino di un microscopio confocale, dotato delle lunghezze d'onda di eccitazione laser e dei set di filtri appropriati.
Inoltre, utilizza una lente a immersione in acqua da 20 a 25x per acquisire almeno sei immagini z-stack stratificate dal substrato alla parte superiore di ciascun segmento di biofilm con incrementi di 0,3 micrometri. Quindi salva le immagini come OME-TIFF per l'analisi COMSTAT. Una volta acquisite tutte le immagini, aprire il pacchetto COMSTAT2 in ImageJ e creare una cartella di origine sul desktop.
Aggiungere un singolo OME-TIFF alla cartella e aprire OME-TIFF dalla cartella di origine. Elimina tutti gli strati vuoti che non contengono biomassa. Selezionate File, Importa e Sequenza immagini per importare il file in ImageJ.
Individua ed evidenzia la cartella di origine senza aprirla e fai clic su Seleziona. Apparirà una finestra di opzioni di sequenza, fare clic su OK. Seleziona Immagine, Trasforma e Capovolgi Z per capovolgere l'orientamento del biofilm in modo che il substrato si trovi nella parte superiore della pila. Per definire le proprietà dell'immagine, selezionare Immagine e Proprietà, apparirà una finestra sorgente.
Specificare l'unità di lunghezza in micron, definire la profondità del voxel in 0,3 e fare clic su OK. Selezionare Immagine, Regola e Soglia. Per regolare la soglia dell'immagine nella finestra della soglia, posizionare il cursore inferiore all'estrema destra per impostare manualmente il valore di soglia massimo e utilizzare il cursore superiore per impostare la soglia minima. Quindi utilizzare il cursore nella finestra dell'immagine per scorrere ogni livello per assicurarsi che il rumore di fondo venga rimosso a sufficienza in tutta la pila e selezionare Imposta per fissare il valore di soglia inferiore.
Nella finestra Imposta livelli di soglia, selezionare OK e impostare e fissare il valore di soglia massimo in modo analogo. Selezionare Applica, fare clic su OK nella finestra Converti stack in binario visualizzata e uscire dalla finestra di soglia. Selezionate Plugin, Bio-Formats e Bio-Formats Exporter per salvare il file con un nuovo nome nella cartella di origine.
Apparirà una finestra di file multipli di Bio-Formats Exporter, selezionare OK. Apparirà una finestra delle opzioni dell'esportatore di formati biologici, seleziona di nuovo OK. Per eseguire COMSTAT, selezionare i plug-in e COMSTAT2, apparirà una finestra di informazioni, selezionare OK.In finestra Directory osservate, selezionare Aggiungi, individuare ed evidenziare la cartella di origine, evidenziare e fare clic su Scegli. Apparirà una finestra Immagini nelle directory che elenca gli OME-TIFF da analizzare.
Nella finestra COMSTAT2.1, deselezionare Metodo di soglia automatica Otsu e Filtro volume connesso per assicurarsi che il software utilizzi valori di soglia preimpostati per i singoli OME-TIFF. Nella finestra COMSTAT2.1, selezionare Biomassa, Distribuzione spessore e Area superficiale, quindi fare clic su Vai per eseguire il programma. I dati di output verranno visualizzati nella finestra del registro.
Le misurazioni verranno salvate automaticamente come file TXT nella cartella di origine. In questa analisi rappresentativa, un isolato di Pseudomonas aeruginosa, coltivato da un paziente infetto con fibrosi cistica, è stato utilizzato per dimostrare i punti di forza di questo approccio, quantificando in modo impreciso i cambiamenti indotti da antimicrobici nell'architettura del biofilm in vitro. L'imaging di cellule vive può anche visualizzare i cambiamenti nella struttura del biofilm di Pseudomonas aeruginosa prima e dopo il trattamento monoclonale e tobramicina specifici per biofilm.
L'analisi dei dati COMSTAT ha rivelato differenze significative tra le strutture del biofilm trattate rispetto alle colture di controllo. Nelle colture trattate con tobramicina è stata osservata una netta riduzione dello spessore medio e della biomassa. Tuttavia, in presenza di anticorpi, il biofilm di P.aeruginosa era resistente a questi cambiamenti strutturali indotti dalla tobramicina.
Esaminando il rapporto tra superficie e biovolume, è stata osservata una riduzione significativa della presenza di anticorpi sia nei biofilm esposti alla tobramicina che in quelli non esposti, indicando la formazione di aggregati nelle colture trattate con anticorpi. Questa procedura può essere eseguita per valutare quantitativamente o confrontare gli effetti di diversi antimicrobici utilizzati per distruggere le matrici di biofilm. Utilizzando questa tecnica come quadro generale, i ricercatori possono esplorare diversi modi per perfezionare il protocollo per includere nuovi modelli matematici e plug-in algoritmici in ImageJ per rappresentare meglio l'eterogeneità del biofilm.
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Questo studio presenta un framework riproducibile per la quantificazione delle strutture del biofilm di Pseudomonas aeruginosa in diverse condizioni antimicrobiche. Il protocollo mira a standardizzare la valutazione dell'architettura del biofilm, migliorando la trasparenza tra i diversi centri di ricerca.
La quantificazione standardizzata degli effetti antimicrobici sull'architettura del biofilm supporta la validazione degli obiettivi nello sviluppo di agenti anti-infettivi. Metriche oggettive del biofilm permettono una riduzione del rischio meccanicistica dei candidati terapeutici, collegando l'esposizione al composto agli esiti strutturali. Questo approccio migliora l'affidabilità predittiva della selezione preclinica riducendo la variabilità nella valutazione del fenotipo del biofilm tra diversi laboratori.
Il metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dalla validazione del bersaglio all'ottimizzazione del composto leader, fornendo un fenotipaggio quantitativo dei biofilm per informare le relazioni struttura-attività.