Name: Imaging perfusione Doppler laser nellhindlimb del mouse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-04-18T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 45 s
Description: Scopri l'imaging a perfusione Doppler laser nell'arto posteriore del mouse per valutare la microcircolazione cutanea e il recupero del flusso sanguigno post-ischemia. Questa tecnica non invasiva supporta la ricerca sulla guarigione delle ferite.

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Questo lavoro è stato svolto con l'utilizzo di strutture e risorse presso il VA Puget Sound Health Care Center. Il lavoro è quello dell'autore e non riflette necessariamente la posizione o la politica del Dipartimento degli Affari dei Veterani o del governo degli Stati Uniti. Il Dott. Tang è attualmente finanziato tramite l'AV (Merit 5 I01 BX004975-02).

Gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti secondo un protocollo approvato dall'Institutional Animal Care and Use Committee dell'Università di Washington.
1. Preparazione dello scanner
<ol><li>Regolare l'altezza dello scanner in modo che la distanza dal soggetto scansionato sia di circa 30 cm.</li>
	<li>Accendere l'imager e avviare il software associato.</li>
	<li>Aprire il programma di misurazione. Se il software comunica correttamente con lo scanner, verrà visualizzato l'avviso di accendemento del laser a infrarossi.</li>
	<li>Calibrare la macchina con gli standard forniti dal produttore (non mostrati nel video e dipenderanno dal modello specifico di macchina utilizzata).</li>
	<li>Regolare le impostazioni dello scanner in modo che siano appropriate per il materiale di sfondo e la configurazione dell'illuminazione nella stanza.<ol>
<li>Impostare i livelli di guadagno DC FLUX e CONC, in base alle istruzioni del produttore (non visualizzate nel video).</li>
		<li>Impostate la soglia di sfondo puntando il raggio laser verso il materiale di sfondo nero e premete Auto BK Set.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. Preparazione della pre-scansione del mouse
<ol><li>Impostare la camera di induzione dell'isoflurane con un'adeguata scavenging del gas di scarico. NOTA: Posizionare la camera di induzione su un tampone riscaldante aiuterà a prevenire la perdita di temperatura del mouse durante l'induzione dell'anestesia.</li>
	<li>Accendere la coperta omeotermica, che viene posizionata nell'area di scansione sotto una superficie non riflettente (in questo caso un tessuto neoprene nero). Impostare la coperta omeotermica per mantenere una temperatura corporea di 37 °C.</li>
	<li>Posizionare la sonda di temperatura per la coperta omeotermica e il lubrificante in modo che siano pronti per l'inserimento.</li>
	<li>Posizionare la maschera di anestesia e il sistema di scavenging nell'area di scansione.</li>
	<li>Anestetizzare il mouse con un vaporizzatore di isoflurane. Impostare la velocità dell'ossigeno su 1 L/min di flusso e regolare l'isoflurane al 4% per l'induzione dell'anestesia. Accendere il flusso alla camera di induzione dell'anestesia e la frequenza di respirazione del mouse rallenterà. Un'anestesia adeguata si ottiene quando il topo perde il riflesso di destro.</li>
	<li>Trasferire il mouse su una maschera anestetica/cono del naso con spazzino di gas di scarico collegato e regolare l'isoflurane all'1,5%. NOTA: Questo livello di anestesia è generalmente adeguato per mantenere il topo relativamente fermo durante la scansione, ma non è destinato a fornire livelli chirurgici di anestesia, quindi la profondità dell'anestesia non viene controllata. La modifica del livello di isoflurane causa cambiamenti nel battito cardiaco, nella respirazione e nella perfusione dermica, quindi una percentuale costante dovrebbe essere utilizzata durante qualsiasi esperimento del corso di tempo e per tutte le materie sperimentali. Possono essere utilizzate anche tecniche anestetiche alternative come l'iniezione IP di chetamina xiazina, ma la stessa tecnica anestetica dovrebbe essere utilizzata durante qualsiasi studio del corso in qualsiasi momento poiché diversi anestetici influenzano la perfusione dermica in modo diverso.</li>
	<li>(Facoltativo a seconda dell'area di scansione) Se la regione di interesse prevista da scansionare è coperta da pelliccia, utilizzare un piccolo trimmer elettrico o crema depilatoria per rimuovere i capelli dalla regione di interesse. NOTA: La crema depilatoria deve essere completamente rimossa e la pelle del mouse asciugata prima della scansione.</li>
	<li>Posizionare il mouse nell'appropriata posizione di scansione sulla superficie nera non riflettente che copre la coperta omeotermica, confermando che entrambi gli arti posteriori rimangono sulla fonte di calore durante l'equilibrazione e la scansione (Figura 1). NOTA: È importante mantenere entrambi i piedi sulla coperta omeotermica per evitare variazioni regionali di temperatura.</li>
	<li>Inserire la sonda di temperatura rettale lubrificata associata alla coperta omeotermica.</li>
	<li>Equilibrare la temperatura del mouse alla temperatura di scansione desiderata (37 °C); circa 5-10 minuti.</li>
	<li>Selezionare Configurazione scanner, a cui è possibile accedere dal menu in alto o dall'icona di configurazione dello scanner. Regolate l'area di scansione modificando le coordinate X-Y per adattarsi alla regione di interesse. La velocità di scansione dipenderà dalla risoluzione della scansione. Una risoluzione più elevata comporterà tempi di scansione più lunghi. Per la scansione ripetuta incentrata sulla perfusione globale, anziché su una risoluzione più elevata incentrata sulla perfusione anatomica, è adeguata una velocità di scansione di 4 ms/pixel. NOTA: Una risoluzione più elevata e una scansione singola dovrebbero essere prese in considerazione se il ricercatore sta tentando di studiare direttamente la circolazione collaterale in via di sviluppo (meglio immagine nella coscia ventrale e nel polpaccio dove è più vicina alla pelle). La scansione ripetuta a una risoluzione/velocità inferiore (ad esempio, 4 ms/pixel) è adeguata quando si valuta la perfusione globale all'organo finale del footpad del mouse. Il software mostrato nel video carica automaticamente il modello utilizzato in precedenza per l'area di scansione, la velocità e la risoluzione al riavvio oppure può essere recuperato da un file memorizzato se vengono utilizzate diverse regioni di interesse per vari esperimenti.</li>
	<li>Se si eseguono scansioni ripetute, selezionare la scheda Ripeti e Scansione linea. Il numero di scansioni può essere modificato (in questo caso 3 scansioni) e l'intervallo di ripetizione. Il tempo minimo per l'intervallo di ripetizione sarebbe il tempo di scansione stimato, che viene visualizzato nell'area disattivata a destra della casella determinata dall'area di scansione e dalla risoluzione di scansione. L'aggiunta di alcuni secondi consente all'utente di mettere in pausa e potenzialmente riposizionare il mouse, se necessario, tra le scansioni.</li>
</ol>3. Scansione
<ol><li>Selezionare la scheda Analisi immagine e selezionare il pulsante Segna. Il laser si muoverà per delineare l'area di scansione. Regolare la posizione del mouse in modo che la destinazione da scansionare si trova all'interno dell'area contrassegnata. NOTA: Per la scansione del pedante o del piede e del polpaccio, il posizionamento incline con gli arti posteriori estesi fornisce una regione di interesse più coerente rispetto al posizionamento supino. L'arteria femorale e l'arteria safenosa e i collaterali sono molto vicini alla superficie ventrale della coscia e del polpaccio, quindi il posizionamento supina è preferito se si utilizzano queste regioni di interesse.</li>
	<li>Iniziare la misurazione ripetuta selezionando l'icona Ripeti scansione e premere il pulsante Riproduci per avviare la scansione.</li>
	<li>Verificare la distanza di scansione nella finestra popup e fare clic su OK per iniziare la scansione.</li>
	<li>Monitorare il mouse durante la scansione per il movimento del mouse; se il mouse si muove in modo sufficiente che le zampe posteriori non si trovano più nell'area di scansione nel mezzo di una scansione, riavviare la scansione. Piccole variazioni nella posizione della penna posteriore del mouse possono essere ospitate nel software di analisi.</li>
	<li>Monitorare la temperatura del mouse durante il processo di scansione in quanto può fluttuare anche con l'uso della coperta omeotermica. Se c'è troppa variazione nella temperatura del mouse, ciò può comportare variazioni significative tra le scansioni. Generalmente, un intervallo di temperatura di 36,8-37,2 °C si tradurrà in dati accettabili.</li>
	<li>Salvare l'analisi acquisita nella finestra Salva con nome con un nome di file che include l'identificatore del mouse e il punto di tempo per facilitare l'analisi dei dati. Immettere i dettagli del mouse e del punto di tempo, se lo si desidera, nella finestra dei dettagli dell'oggetto.</li>
	<li>Spegnere l'isoflurane e rimuovere la sonda di temperatura rettale.</li>
	<li>Disinfettare la sonda a temperatura rettale con il 70% di etanolo in modo che sia pronta per l'uso nel mouse successivo.</li>
	<li>Lasciare che il mouse si riprenda dall'anestesia al punto in cui mostra un riflesso di destro lanciandosi dalla posizione supina alla posizione prona prima di restituirlo alla gabbia. NOTA: Il recupero può essere effettuato su una coperta riscaldante per isoflurane poiché il recupero è molto rapido o in una gabbia di recupero riscaldata per ketamina / xiloazina.</li>
</ol>4. Acquisizione di dati LDPI (Figura 3)
<ol><li>Aprire il programma software di revisione dell'imaging.</li>
	<li>Passare al menu file, aprire e individuare il file salvato.</li>
	<li>Selezionare l'icona ROI dalla barra degli strumenti.</li>
	<li>Selezionare il pulsante Aggiungi poligono.</li>
	<li>Tracciare l'area di interesse (ROI) per l'ostacolo del controllo utilizzando il mouse. La traccia poligonale non deve essere esatta in quanto lo sfondo grigio non verrà incluso nelle medie calcolate.</li>
	<li>Ripetere i passaggi 4.3-4.5 per l'arto posteriore chirurgico.</li>
	<li>Scegliere l'icona Statistiche per aprire la finestra Risultati statistiche ROM immagine (PU).</li>
	<li>Esportare i risultati per Poligono 1 (ostacolo di controllo) e Poligono 2 (ostacolo chirurgico) in un foglio di lavoro di raccolta dati tramite copia/incolla.</li>
</ol>5. Analisi
<ol><li>Acquisire i dati come rapporto chirurgico/controllo per ogni scansione.</li>
	<li>Utilizzare l'intervento/controllo medio per tutte e tre le scansioni per il punto dati per quel particolare mouse in quel punto di tempo. A causa della variabilità biologica nella risposta all'ischemia dell'arto posteriore, in generale sono necessari 8-10 topi per timepoint per ottenere risultati riproducibili con ~ 10% di errore standard. NOTA: Prima di consentire al mouse di riprendersi dall'anestesia, vale la pena eseguire una rapida analisi delle scansioni ripetute per verificare se i dati sono troppo variabili (ad esempio, più di 100-150 unità di perfusione diverse tra le scansioni 1-3). Variazioni elevate tra scansioni ripetute suggeriscono che il mouse non è stato completamente equilibrato durante la scansione (Figura 2) e una scansione ripetuta può essere eseguita senza perdere un punto dati, che si verificherebbe se le immagini non vengono analizzate fino a una data successiva. La modifica della tavolozza dei colori per ottimizzare l'intervallo dinamico di valori di flusso visualizzati potrebbe essere necessaria per visualizzare meglio la variazione della scansione (Figura 2).</li>
</ol>

<ol><li>Varma, P., Stineman, M. G., Dillingham, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology+of+limb+loss%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Medicine+and+Rehabilitation+Clinics+of+North+America%22%5BJournal%5D)">Epidemiology of limb loss.</a> Physical Medicine and Rehabilitation Clinics of North America. 25 (1), 1-8 (2014).</li>
<li>Farber, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+Limb-Threatening+Ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Chronic Limb-Threatening Ischemia.</a> New England Journal of Medicine. 379 (2), 171-180 (2018).</li>
<li>Abularrage, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+microcirculation+in+vascular+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the microcirculation in vascular disease.</a> Journal of Vascular Surgery. 42 (3), 574-581 (2005).</li>
<li>Houben, A., Martens, R. J. H., Stehouwer, C. D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+Microvascular+Function+in+Humans+from+a+Chronic+Disease+Perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+American+Society+of+Nephrology%22%5BJournal%5D)">Assessing Microvascular Function in Humans from a Chronic Disease Perspective.</a> Journal of the American Society of Nephrology. 28 (12), 3461-3472 (2017).</li>
<li>Mahe, G., Humeau-Heurtier, A., Durand, S., Leftheriotis, G., Abraham, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+skin+microvascular+function+and+dysfunction+with+laser+speckle+contrast+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%3A+Cardiovascular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Assessment of skin microvascular function and dysfunction with laser speckle contrast imaging.</a> Circulation: Cardiovascular Imaging. 5 (1), 155-163 (2012).</li>
<li>Murray, A. K., Herrick, A. L., King, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Doppler+imaging%3A+a+developing+technique+for+application+in+the+rheumatic+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Rheumatology+%28Oxford%29%22%5BJournal%5D)">Laser Doppler imaging: a developing technique for application in the rheumatic diseases.</a> Rheumatology (Oxford). 43 (10), 1210-1218 (2004).</li>
<li>Greco, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeatability%2C+reproducibility+and+standardisation+of+a+laser+Doppler+imaging+technique+for+the+evaluation+of+normal+mouse+hindlimb+perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">Repeatability, reproducibility and standardisation of a laser Doppler imaging technique for the evaluation of normal mouse hindlimb perfusion.</a> Sensors (Basel). 13 (1), 500-515 (2012).</li>
<li>Sonmez, T. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+laser-Doppler+flowmetry+assisted+murine+model+of+acute+hindlimb+ischemia-reperfusion+for+free+flap+research%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A novel laser-Doppler flowmetry assisted murine model of acute hindlimb ischemia-reperfusion for free flap research.</a> PLoS One. 8 (6), 66498(2013).</li>
<li>Gargiulo, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+some+anesthetic+agents+on+skin+microcirculation+evaluated+by+laser+Doppler+perfusion+imaging+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Veterinary+Research%22%5BJournal%5D)">Effects of some anesthetic agents on skin microcirculation evaluated by laser Doppler perfusion imaging in mice.</a> BMC Veterinary Research. 9, 255(2013).</li>
<li>Ankri-Eliahoo, G., Weitz, K., Cox, T. C., Tang, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p27%28kip1%29+Knockout+enhances+collateralization+in+response+to+hindlimb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">p27(kip1) Knockout enhances collateralization in response to hindlimb ischemia.</a> Journal of Vascular Surgery. 63 (5), 1351-1359 (2016).</li>
<li>McEnaney, R. M., Shukla, A., Madigan, M. C., Sachdev, U., Tzeng, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((P2Y2+nucleotide+receptor+mediates+arteriogenesis+in+a+murine+model+of+hind+limb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Vascular+Surgery%22%5BJournal%5D)">P2Y2 nucleotide receptor mediates arteriogenesis in a murine model of hind limb ischemia.</a> Journal of Vascular Surgery. 63 (1), 216-225 (2016).</li>
<li>Padgett, M. E., McCord, T. J., McClung, J. M., Kontos, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+Acute+and+Subacute+Murine+Hindlimb+Ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Methods for Acute and Subacute Murine Hindlimb Ischemia.</a> Journal of Visualized Experiments. (112), e54166(2016).</li>
<li>Niiyama, H., Huang, N. F., Rollins, M. D., Cooke, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+model+of+hindlimb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Murine model of hindlimb ischemia.</a> Journal of Visualized Experiments. (23), e1035(2009).</li>
<li>Chalothorn, D., Faber, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain-dependent+variation+in+collateral+circulatory+function+in+mouse+hindlimb%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Genomics%22%5BJournal%5D)">Strain-dependent variation in collateral circulatory function in mouse hindlimb.</a> Physiological Genomics. 42 (3), 469-479 (2010).</li>
<li>Helisch, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Impact+of+mouse+strain+differences+in+innate+hindlimb+collateral+vasculature%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Impact of mouse strain differences in innate hindlimb collateral vasculature.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 26 (3), 520-526 (2006).</li>
<li>Faber, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Aging+causes+collateral+rarefaction+and+increased+severity+of+ischemic+injury+in+multiple+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Arteriosclerosis%2C+Thrombosis%2C+and+Vascular+Biology%22%5BJournal%5D)">Aging causes collateral rarefaction and increased severity of ischemic injury in multiple tissues.</a> Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 31 (8), 1748-1756 (2011).</li>
<li>Forrester, K. R., Stewart, C., Tulip, J., Leonard, C., Bray, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+laser+speckle+and+laser+Doppler+perfusion+imaging%3A+measurement+in+human+skin+and+rabbit+articular+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+%26+Biological+Engineering+%26+Computing%22%5BJournal%5D)">Comparison of laser speckle and laser Doppler perfusion imaging: measurement in human skin and rabbit articular tissue.</a> Medical & Biological Engineering & Computing. 40 (6), 687-697 (2002).</li>
<li>Briers, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Doppler%2C+speckle+and+related+techniques+for+blood+perfusion+mapping+and+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Measurement%22%5BJournal%5D)">Laser Doppler, speckle and related techniques for blood perfusion mapping and imaging.</a> Physiological Measurement. 22 (4), 35-66 (2001).</li>
<li>Heeman, W., Steenbergen, W., van Dam, G., Boerma, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+applications+of+laser+speckle+contrast+imaging%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Clinical applications of laser speckle contrast imaging: a review.</a> Journal of Biomedical Optics. 24 (8), 1-11 (2019).</li>
<li>Nguyen, T., Davidson, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contrast+Enhanced+Ultrasound+Perfusion+Imaging+in+Skeletal+Muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiovascular+Imaging%22%5BJournal%5D)">Contrast Enhanced Ultrasound Perfusion Imaging in Skeletal Muscle.</a> Journal of Cardiovascular Imaging. 27 (3), 163-177 (2019).</li>
<li>Zaccagnini, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Magnetic+Resonance+Imaging+Allows+the+Evaluation+of+Tissue+Damage+and+Regeneration+in+a+Mouse+Model+of+Critical+Limb+Ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Magnetic Resonance Imaging Allows the Evaluation of Tissue Damage and Regeneration in a Mouse Model of Critical Limb Ischemia.</a> PLoS One. 10 (11), 0142111(2015).</li>
<li>Penuelas, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PET+as+a+measurement+of+hindlimb+perfusion+in+a+mouse+model+of+peripheral+artery+occlusive+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Nuclear+Medicine%22%5BJournal%5D)">PET as a measurement of hindlimb perfusion in a mouse model of peripheral artery occlusive disease.</a> Journal of Nuclear Medicine. 48 (13), 1216-1223 (2007).</li>
<li>Jia, Y., Qin, J., Zhi, Z., Wang, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrahigh+sensitive+optical+microangiography+reveals+depth-resolved+microcirculation+and+its+longitudinal+response+to+prolonged+ischemic+event+within+skeletal+muscles+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Optics%22%5BJournal%5D)">Ultrahigh sensitive optical microangiography reveals depth-resolved microcirculation and its longitudinal response to prolonged ischemic event within skeletal muscles in mice.</a> Journal of Biomedical Optics. 16 (8), 086004(2011).</li>
<li>Turaihi, A. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combined+Intravital+Microscopy+and+Contrast-enhanced+Ultrasonography+of+the+Mouse+Hindlimb+to+Study+Insulin-induced+Vasodilation+and+Muscle+Perfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion.</a> Journal of Visualized Experiments. (121), e54912(2017).</li>
<li>Liu, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+autophagy+alleviates+injury+during+hindlimb+ischemia%2Freperfusion+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Therapeutic+Medicine%22%5BJournal%5D)">Enhanced autophagy alleviates injury during hindlimb ischemia/reperfusion in mice.</a> Experimental and Therapeutic Medicine. 18 (3), 1669-1676 (2019).</li>
<li>Liu, D. L., Svanberg, K., Wang, I., Andersson-Engels, S., Svanberg, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Doppler+perfusion+imaging%3A+new+technique+for+determination+of+perfusion+and+reperfusion+of+splanchnic+organs+and+tumor+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+in+Surgery+and+Medicine%22%5BJournal%5D)">Laser Doppler perfusion imaging: new technique for determination of perfusion and reperfusion of splanchnic organs and tumor tissue.</a> Lasers in Surgery and Medicine. 20 (4), 473-479 (1997).</li>
<li>Jing, Y., Bai, F., Chen, H., Dong, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+Laser+Doppler+Imaging+and+Monitoring+to+Analyze+Spinal+Cord+Microcirculation+in+Rat%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Using Laser Doppler Imaging and Monitoring to Analyze Spinal Cord Microcirculation in Rat.</a> Journal of Visualized Experiments. (135), e56243(2018).</li>
<li>Zhang, D., Li, S., Wang, S., Ma, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+evaluation+of+the+effect+of+a+gastric+ischemia-reperfusion+model+with+laser+Doppler+blood+perfusion+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+in+Medical+Science%22%5BJournal%5D)">An evaluation of the effect of a gastric ischemia-reperfusion model with laser Doppler blood perfusion imaging.</a> Lasers in Medical Science. 21 (4), 224-228 (2006).</li>
<li>Fitzal, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulatory+changes+after+prolonged+ischemia+in+the+epigastric+flap%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Reconstructive+Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Circulatory changes after prolonged ischemia in the epigastric flap.</a> Journal of Reconstructive Microsurgery. 17 (7), 535-543 (2001).</li>
</ol>

Il dottor Tang non ha conflitti di interesse da rivelare.

Una tecnica coerente è fondamentale per ottenere risultati affidabili con LDPI. Lo stesso anestetico, le impostazioni di temperatura, la posizione del mouse e l'area di interesse devono essere utilizzati durante l'intero corso del tempo. Diversi agenti anestetici si tradurranno in valori di perfusione più o menoelevati 9. L'anestesia isoflurana è conveniente a causa della sua rapida insorgenza ed emergenza, nonché della sicurezza generale. Una percentuale costante di isoflurane deve essere utilizz...

L'ulcerazione cutanea con una guarigione inadeguata delle ferite è una delle principali cause di amputazioni nei pazienti umani1. Un'adeguata guarigione delle ferite richiede livelli di perfusione arteriosa più elevati di quelli necessari per mantenere intatta la pelle, che è compromessa nei pazienti con malattia arteriosa periferica2,3,4. Molte altre condizioni reumatologiche e diabete possono anche portare a microcircolo cutaneo disturbato e inadeguato per guarire leferite 5,6. Molti pazienti diabetici hanno una concomitante malattia arteriosa periferica, mettendoli a rischio particolarmente elevato di amputazione. L'imaging perfusione Laser Doppler (LDPI) viene utilizzato in situazioni cliniche per valutare il microcircolo cutaneo, nonché in situazioni di ricerca per valutare il flusso sanguigno e il recupero del flusso sanguigno dopo ischemia hindlimb sperimentale, ischemia-riperfusione e lembi microchirurgici7.
Il sistema LDPI proietta un raggio laser a bassa potenza che viene deviato da uno specchio di scansione per muoversi su una regione di interesse. Questo differisce dalla fluidmetria Laser Doppler, che fornisce una misurazione perfusione per la piccola area del tessuto a diretto contatto con la sonda diflussometria 8. Quando il raggio laser interagisce con il sangue in movimento nella microvascolarizzazione, subisce uno spostamento di frequenza Doppler, che viene fotodetratto dallo scanner e convertito in unità di perfusione arbitrarie. Poiché l'LDPI è una tecnica leggera, è limitata in termini di profondità di penetrazione a 0,3-1 mm, il che significa che per la maggior parte la perfusione dermica vienevalutata 7. Il flusso dermico può essere alterato dalla temperatura della pelle e dal sistema nervoso simpatico, che può essere influenzato da vari agenti anestetici9. Le misurazioni dal laser ottico sono influenzate anche dalle condizioni di illuminazione ambientale, dalla pigmentazione della pelle e possono essere bloccate sovrascriendo pelliccia o capelli7.
LDPI è la tecnica di ricerca più comunemente utilizzata per monitorare il recupero della perfusione dopo l'ischemia perché non invasiva, non richiede la somministrazione del contrasto e ha tempi di scansione rapidi che consentono la raccolta dei dati su più animali. Questo lo rende ideale per aiutare a determinare se i trattamenti mirati all'arteriogenesi terapeutica o all'angiogenesi sono efficaci nei piccoli modelli animali. Il recupero del flusso sanguigno dopo l'ischemia dell'arto posteriore misurato dall'LDPI è ben correlato con lo sviluppo collaterale dell'arteria se valutato con altri mezzi come la fusione di Microfil o la micro-TC10,11. L'obiettivo di questo protocollo è dimostrare la valutazione della perfusione dell'ostacolo utilizzando l'LDPI.

<table><tbody><tr>Materiale <td></td><td></td><td>nero non riflettente</td><td>Negozio di tessuti, neoprene nero raccomandato dall'azienda</td></tr><tr><td>F/air cannuster</td><td>A.M. Bickford Inc</td><td>80120</td><td></td></tr><tr><td>Coperta omeotermica con sonda metallica rigida</td><td>Apparato</td><td></td> Harvard <td>Viene fornito anche con sonda flessibile, ma questo è meno durevole</td></tr><tr><td>Macchina per anestesia isoflurano</td><td>Dräger</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Camera di induzione dell'isoflurano</td><td>VetEquip</td><td>941444</td><td>Camera da 2 L</td></tr><tr><td>Imager di perfusione laser Doppler Moor</td><td>Instruments Moor</td><td>MoorLDI2-IR</td><td>Imager ad alta risoluzione (MoorLDI2-HIR)</td></tr><tr><td>Mouse Anesthesia nose cone</td><td></td><td></td><td>Produttori multipli</td></tr><tr><td>Nair</td><td>Nair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bombola</td><td></td><td></td> di ossigeno <td>Produttori vari</td></tr><tr><td>Surgilube</td><td>Distributori</td><td></td><td></td> multipli</tr></tbody></table>

imaging perfusione doppler laser nell'hindlimb del mouse

Laser Doppler Perfusion Imaging in the Mouse Hindlimb

Il recupero del flusso sanguigno è una misura critica del risultato dopo ischemia hindlimb sperimentale o ischemia-riperfusione. L'imaging perfusione Laser Doppler (LDPI) è un metodo comune, non invasivo e ripetibile per valutare il recupero del flusso sanguigno. La tecnica calcola il flusso sanguigno complessivo nel tessuto campionato dallo spostamento doppler della frequenza causato quando un laser colpisce i globuli rossi in movimento. Le misurazioni sono espresse in unità di perfusione arbitrarie, quindi il controfilettale non intervenuto sulla gamba viene solitamente utilizzato per aiutare a controllare le misurazioni. La profondità di misura è dell'intervallo di 0,3-1 mm; per l'ischemia dell'arto posteriore, ciò significa che viene valutata la perfusione dermica. La perfusione dermica dipende da diversi fattori, in particolare la temperatura cutanea e l'agente anestetico, che devono essere attentamente controllati per ottenere letture affidabili. Inoltre, la pigmentazione dei capelli e della pelle può alterare la capacità del laser di raggiungere o penetrare nel derma. In questo articolo viene illustrata la tecnica dell'LDPI nell'hindlimb del mouse.

Il successo dell'LDPI dovrebbe comportare scansioni coerenti ripetute, con non più di 100-150 variazioni dell'unità di perfusione (corrispondenti a circa il 10% della perfusione media abituale per il pedano del mouse) tra le tre scansioni(Figura 2). Come illustrato nella figura 2, le scansioni ripetute aiutano a determinare che il mouse è stato opportunamente equilibrato in modo che il rapporto ischemico/controllo rifletta al meglio il flusso sanguigno sottostan...

Qui presentiamo un protocollo che dimostra la tecnica e i controlli necessari per l'imaging perfusione Laser Doppler per misurare il flusso sanguigno nell'arto posteriore del topo.

Imaging perfusione Doppler laser nell'hindlimb del mouse

Blood flow recovery is a critical outcome measure after experimental hindlimb ischemia or ischemia-reperfusion. Laser Doppler perfusion imaging (LDPI) is ...

L'ulcerazione cutanea con una guarigione inadeguata delle ferite è una delle principali cause di amputazione nei pazienti umani. Un'adeguata guarigione delle ferite richiede livelli più elevati di profusione arteriosa necessari per mantenere intatta la pelle, che è compromessa nei pazienti con malattia arteriosa periferica. Molte altre condizioni reumatologiche e diabete possono anche portare a microcircolo cutaneo disturbato e inadeguato per guarire le ferite.Molti pazienti diabetici hanno una concomitante malattia arteriosa periferica, mettendoli a rischio particolarmente elevato di amputazione. L'imaging perfusione Laser Doppler o LDPI viene utilizzato in situazioni cliniche per valutare il microcircolo cutaneo e in situazioni di ricerca per valutare il flusso sanguigno e il recupero del flusso sanguigno dopo ischemia hindlimb sperimentale, riperfusione di ischemia e lembi microchirurgici. Il sistema LDPI proietta un raggio laser a bassa potenza che viene deviato da uno specchio di scansione per muoversi su una regione di interesse.Questo differisce dalla fluidmetria Doppler laser, che fornisce una misurazione perfusione per la piccola area del tessuto a diretto contatto con la sonda di flussometria. Quando il raggio laser interagisce con il sangue in movimento nella microvascolarizzazione, subisce uno spostamento di frequenza Doppler che viene fotodetratto dallo scanner e convertito in unità di perfusione arbitrarie. Poiché l'LDPI è una tecnica basata sulla luce, è limitata in termini di profondità di penetrazione a 0,3-1 millimetro, il che significa che per la maggior parte viene valutata la perfusione dermica.Il flusso dermico può essere alterato dalla temperatura della pelle e dal sistema nervoso simpatico, che può essere influenzato da vari agenti anestetici. Le misurazioni del laser ottico sono influenzate anche dalle condizioni di illuminazione ambientale, dalla pigmentazione della pelle e possono essere bloccate sovrascriendo pellicce o capelli. LDPI è la tecnica di ricerca più comunemente utilizzata per monitorare il recupero delle profusione dopo l'ischemia perché non invasiva, non richiede la somministrazione del contrasto e ha tempi di scansione rapidi che consentono la raccolta dei dati su più animali.Questo lo rende ideale per aiutare a determinare se i trattamenti mirati all'arteriogenesi terapeutica o all'angiogenesi sono efficaci nei piccoli modelli animali. Il recupero del flusso sanguigno dopo l'ischemia dell'arto posteriore misurato dall'LDPI è ben correlato con lo sviluppo collaterale dell'arteria se valutato con altri mezzi come la fusione di microcompimento o la microTC. L'obiettivo di questo protocollo è dimostrare la valutazione della perfusione dell'ostacolo utilizzando l'LDPI. Regolare l'altezza dello scanner in modo che la distanza dal soggetto della scansione sia di circa 30 centimetri.Accendere l'imager e avviare il software associato. Aprire il programma di misurazione. Se il software comunica correttamente con lo scanner, verrà visualizzato l'avviso di accendersi del laser a infrarossi.Regolare le impostazioni dello scanner in modo che siano appropriate per il materiale di sfondo e la configurazione dell'illuminazione nella stanza. Impostate la soglia di sfondo puntando il raggio laser sul materiale di sfondo nero e premete Auto BK Set. Impostare la camera di induzione dell'isoflurane con un'adeguata scavenging dei gas di scarico.Posizionare la camera di induzione su un tampone riscaldante aiuterà a prevenire la perdita di temperatura del topo durante l'induzione dell'anestesia. Accendere la coperta omeotermica, che viene posizionata nell'area di scansione sotto una superficie non riflettente. In questo caso, un tessuto in neoprene nero.La coperta omeotermica è impostata per mantenere una temperatura corporea di 37 gradi Celsius. Posizionare la sonda di temperatura e i lubrificanti in modo che siano pronti per l'inserimento. Posizionare anche la maschera facciale per anestesia e il sistema di scavenging nell'area di scansione.Anestetizzare il mouse con un vaporizzatore di isoflurane. La velocità dell'ossigeno è impostata su un litro al minuto di flusso. E l'isoflurana viene regolata al 4% per l'induzione dell'anestesia.Il flusso viene acceso alla camera di induzione dell'anestesia e la frequenza di respirazione del topo rallenterà. Un'anestesia adeguata si ottiene quando il topo perde il riflesso di destro. Trasferire il mouse in un cono nasale della maschera anestetica con spazzino di gas di scarico collegato e regolare l'isoflurane all'1,5%Questo livello di anestesia è generalmente adeguato per mantenere il topo relativamente fermo durante la scansione, ma non è destinato a fornire livelli chirurgici di anestesia.Quindi la profondità dell'anestesia non viene controllata. La modifica del livello di isoflurane causa cambiamenti nella frequenza cardiaca, nella respirazione e nella profusione dermica. Quindi una percentuale costante dovrebbe essere utilizzata durante qualsiasi esperimento di corso di tempo e per tutte le materie sperimentali.Possono essere utilizzate anche tecniche anestetiche alternative, come l'iniezione IP di chetamina xiazina, ma la stessa tecnica anestetica dovrebbe essere utilizzata durante qualsiasi studio del corso in qualsiasi momento poiché diversi anestetici influenzano la profusione dermica in modo diverso. Se la regione di interesse del piano da scansionare è coperta da pelliccia, utilizzare un piccolo trimmer elettrico e / o crema depilatoria per rimuovere i capelli dalla regione di interesse. Le creme depilatorie devono essere completamente rimosse e la pelle del mouse asciugata prima della scansione poiché la pelle bagnata può causare riflessi dal laser Inserire la sonda di temperatura rettale lubrificata associata alla coperta omeotermica nel retto del mouse.Equilibrare la temperatura del mouse per desiderare la temperatura di scansione, 37 gradi Celsius. Questo può richiedere fino a cinque-10 minuti. Selezionare Configurazione scanner a cui è possibile accedere dal menu in alto o dall'icona Configurazione scanner.L'area di scansione deve essere regolata modificando le coordinate X, Y per adattarsi alla regione di interesse. La velocità di scansione dipenderà dalla risoluzione della scansione. Una risoluzione più elevata comporterà tempi di scansione più lunghi.Per la scansione ripetuta, concentrandosi sulla profusione globale, anziché su una maggiore risoluzione incentrata sulla perfusione anatomica, la velocità di scansione più elevata di quattro millisecondi per pixel è adeguata. Se si eseguono scansioni ripetute, selezionare la scheda Ripeti e Scansione linea. Il numero di scansioni può essere modificato.In questo caso, tre scansioni e l'intervallo di ripetizione. Il tempo minimo per l'intervallo di ripetizione sarebbero i tempi di scansione stimati visualizzati nell'area disattivata a destra della casella, determinati dall'area di scansione e dalla risoluzione della scansione. L'aggiunta di alcuni secondi consente all'utente di mettere in pausa e potenzialmente riposizionare il mouse, se necessario, tra le scansioni.Il tempo totale di scansione in questo caso è di tre minuti e 21 secondi. Selezionare la scheda Analisi immagine e selezionare il pulsante Segna. Ciò farà sì che il laser condisca l'area di scansione.Regolare la posizione del mouse in modo che la destinazione da scansionare si trova all'interno dell'area contrassegnata. Iniziare la misurazione ripetuta selezionando l'icona Ripeti scansione e premendo il pulsante Riproduci per avviare la scansione. Verrà visualizzata una finestra popup che conferma la distanza di scansione.Fare clic su OK per avviare la scansione. La scansione iniziale di un topo prima dell'induzione dell'ischemia dell'arto posteriore è mostrata in tempo reale. La seconda e la terza scansione ripetuta sono accelerate a una velocità di 16x.La finestra principale mostra i risultati della scansione man mano che viene generata dal software. L'inserto in basso a destra mostra il laser che scansiona i footpad del mouse. Per la scansione del pedante o del piede e del polpaccio dorsale, il posizionamento incline con gli arti posteriori estesi verso la coda fornisce una regione di interesse più coerente nel posizionamento supino.L'arteria femorale, l'arteria safene e i collaterali sono molto vicini alla superficie ventrale della coscia e del polpaccio. Quindi il posizionamento supina è preferito se si utilizzano queste regioni di interesse. Monitorare il mouse durante la scansione per il movimento del mouse.Se il mouse si muove a sufficienza in modo che i footpad non si trovano più nell'area di scansione nel mezzo di una scansione, riavviare la scansione. Piccole variazioni nella posizione del footpad del mouse possono essere ospitate per il software di analisi. Inoltre, monitorare la temperatura del mouse durante il processo di scansione in quanto può fluttuare anche con l'uso della coperta omeotermica.Se c'è troppa variazione nella temperatura del mouse, ciò potrebbe comportare variazioni significative tra le scansioni. Generalmente, un intervallo di temperatura da 36,8 a 37,2 si tradurrà in dati accettabili. Salvare l'analisi acquisita nella finestra Salva con nome con un nome di file che include l'identificatore del mouse e il punto di tempo per un'analisi dei dati più semplice.Immettere i dettagli del mouse e del punto di ora, se lo si desidera, nella finestra Dettagli oggetto. La scansione ventrale dell'arto posteriore con il mouse in posizione supina viene mostrata qui dopo aver regolato l'area di scansione. Si noti che la proposta con la supina del mouse comporta la scansione di una parte variabile del lato del piede.Rimuovere la sonda di temperatura rettale e disinfettarla con il 70% di etanolo in modo che sia pronta per il mouse successivo. Ridurre l'isoflurane allo 0%Il mouse si riprenderà più velocemente se continua a ricevere ossigeno, ma può anche essere recuperato senza ossigeno supplementare. Lasciare che il mouse si riprenda dall'anestesia al punto in cui mostra un riflesso di destro lanciandosi dalla posizione supina alla posizione prona prima di restituirlo alla gabbia.Il recupero può essere effettuato su una coperta riscaldante per isoflurane, poiché il recupero è molto rapido o in una gabbia di recupero calda per la xirazina ketamina. Aprire il programma software di revisione dell'imaging. Si aprirà una nuova finestra per esaminare le scansioni.Passare al menu File, Aprire e individuare il file salvato. Selezionare l'icona ROI dalla barra degli strumenti. Selezionare l'icona Aggiungi poligono.Tracciare un'area intorno all'area di interesse utilizzando il mouse. Al termine, tornare alla barra degli strumenti e selezionare l'icona Statistiche. Verrà visualizzata una finestra che mostra le statistiche della regione di interesse.Durante la revisione dei dati, i valori medi dell'unità di profusione, o PU, non variano da 100 a 150 PC rispetto alle scansioni ripetute per ogni pedino. Questa è una scansione accettabile e indica che il mouse è stato ben equilibrato durante la scansione. Valori medi di PU con variazione maggiore di 100-150 PU, che corrisponde a più del 10% della perfusione media per un pedante del mouse non azionato sulle scansioni ripetute, indicherebbero che il mouse non era ben equilibrato e si suggerisce vivamente una scansione ripetuta.L'esecuzione di un'analisi rapida immediatamente dopo il completamento della scansione consente di eseguire una scansione ripetuta mentre il mouse è ancora anestetizzato ed evitare di perdere un punto dati che potrebbe verificarsi se le scansioni vengono analizzate in un secondo momento e una scansione è ritenuta inaccettabile a causa di una variazione significativa tra le scansioni ripetute. I risultati sono espressi come un rapporto tra la profusione chirurgica dell'arto posteriore sulla perfusione dell'arto posteriore di controllo poiché i topi inizialmente vasodilati e quindi sviluppano i loro collaterali intrinseci, il recupero del flusso sanguigno da parte dell'LDPI dovrebbe essere visto durante un corso di tempo post-operatorio. Il grado di recupero dipende dallo sforzo del mouse e dalla gravità del modello di ischemia dell'arto posteriore.Questa figura mostra un esperimento del corso di tempo completato per 28 giorni in cui l'LDPI è stato utilizzato per misurare il recupero del flusso sanguigno del piede nel tempo dopo la legatura dell'arteria femorale e i topi knockout P27 e selvatici di tipo C57Bl / 6. Entrambi i knockout P27 nei topi di tipo selvatico avevano alterato il recupero del flusso sanguigno quando trattati con doxiciclina orale, un inibitore della metalloproteinasi a matrice generalizzata, suggerendo che l'attività MMP facilita l'arteriogenesi. La configurazione del guadagno e la soglia di sfondo devono essere mantenute costanti per l'intero esperimento del corso di tempo.Se la soglia di sfondo è impostata su un valore troppo basso, la scansione del materiale di sfondo comporterà bassi valori di profusione. Ciò comporterà una media dei valori di profusione in background nella regione di interesse durante la selezione del poligono. Per eliminare questo problema, la soglia di sfondo può essere regolata nella finestra Configurazione scanner nella scheda Generale.In questo caso, l'aumento della soglia di fondo a 118 unità di profusione comporta lo sfondo grigio che non sarà incluso in alcuna analisi. La tavolozza o la scala dei colori per l'immagine di flusso può essere regolata sia nel software di misurazione che nel software di revisione dell'immagine. Tutti i valori di profusione maggiori del valore massimo sulla scala verranno visualizzati come il colore di profusione più alto.In questo caso, rosso. L'aumento dell'intervallo dinamico, ad esempio, la modifica della scala da zero a 1500 renderà la variazione di scansione ripetuta più ovvia per l'occhio poiché le aree che misurano tra 1000 e 1500 unità di profusione verranno ora visualizzate utilizzando il gradiente di colore anziché essere tutte visualizzate come rosse. La scansione qui mostrata è stata ottenuta in un mouse la cui temperatura corporea interna era inizialmente inferiore a 36,8 all'inizio della scansione ripetuta e poi aumentata durante le scansioni ripetute.Si noti che la profusione media del footpad di controllo è stata più effettuata dalla temperatura corporea interna più fredda rispetto al pedante ischemico. Una singola scansione della temperatura corporea più fredda avrebbe comportato la registrazione di un rapporto di profusione più elevato per questo punto dati. La variazione della pigmentazione della pelle del topo, come si può vedere con i topi C57Bl/6, può comportare che l'area di scansione sia al di sotto del valore soglia di fondo, il che renderà difficile l'analisi delle regioni di interesse contenenti aree pigmentate.I pedpad del mouse in generale non hanno iperpigmentazione, rendendo questa l'area più conveniente da scansionare per questo affaticamento del mouse. Se il ricercatore desidera studiare l'arto posteriore ventrale, è necessario selezionare un ceppo di topo bianco. LDPI è un metodo efficace, facilmente eseguibile e ripetibile per misurare la profusione dermica posteriore come riflesso della perfusione arteriosa complessiva.È necessaria una tecnica coerente quando si utilizza LDPI per ottenere dati affidabili.

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La procedura chirurgica per l'induzione di ischemia degli arti posteriori unilaterale è dimostrato, con la conferma di ischemia da imaging laser Doppler perfusione.

Modello murino di ischemia degli arti posteriori

Descriviamo il metodo di cellule staminali programmazione di iperespressione fattori terapeutici per angiogenesi utilizzando nanoparticelle polimeriche biodegradabili. Processi descritti includono sintesi dei polimeri, trasfezione delle cellule staminali derivate da tessuto adiposo in vitro, e convalida l'efficacia delle cellule staminali programmato per promuovere l'angiogenesi in un modello di ischemia degli arti posteriori murino.

Cellule staminali per la programmazione terapeutica angiogenesi Uso biodegradabili polimerico Nanoparticelle

L'induzione chirurgica dell'ischemia degli arti posteriori nel topo è utile per esaminare l'angiogenesi, tuttavia questa è compromessa in alcuni ceppi di topi consanguinei che mostrano una marcata necrosi tissutale indotta da ischemia. Vengono descritti metodi per indurre l'ischemia subacuta degli arti utilizzando costrittori ameroidi per aggirare questo problema attraverso l'induzione di un'occlusione arteriosa graduale.

Metodi di acuta e subacuta murino arti posteriori ischemia

Vasodilatazione indotta da insulina regola perfusione muscolare e aumenta la microvascolare superficie (reclutamento microvascolare) disponibili per lo scambio di soluti tra sangue e tessuti interstizio. Ecografia contrapporre-aumentata e microscopia intravital combinata è presentato per valutare simultaneamente l'azione dell'insulina alle imbarcazioni più grandi e la microcircolazione in vivo.

Combinato di microscopia Intravital e l'ecografia contrapporre-aumentata del Hindlimb Mouse per studiare la perfusione del muscolo e la vasodilatazione indotta da insulina

Isole pancreatiche microvascolare vasomotion regola la distribuzione di sangue dell'isolotto e mantiene la funzione fisiologica delle cellule β dell'isolotto. Questo protocollo descrive l'utilizzo di un monitor Doppler laser per determinare lo stato funzionale di isole pancreatiche vasomotion microvascolare in vivo e a valutare il contributo della microcircolazione di isole pancreatiche per malattie del pancreas.

Laser Doppler: Uno strumento per la misurazione dell'isolotto pancreatico Vasomotion microvascolare In Vivo

Qui presentiamo una combinazione della perfusione Doppler laser imaging (LDPI) e monitoraggio di laser Doppler aspersione (LDPM) per misurare spinale cord flussi sanguigni locali e saturazione dell'ossigeno (SO2), così come una procedura standardizzata per l'introduzione del midollo spinale trauma da ratto.

Utilizzo di Laser Doppler Imaging e monitoraggio per analizzare il microcircolo del midollo spinale nel ratto

Il reclutamento di leucociti e piastrine costituisce una componente essenziale necessaria per l'efficace crescita delle arterie collaterali durante l'arteriogenesi. La microscopia multifotonica è uno strumento efficiente per tracciare la dinamica cellulare con alta risoluzione spazio-temporale in vivo e meno fototossicità per studiare il reclutamento e lo stravaso dei leucociti durante l'arteriogenesi.

Multiphoton Intravital Imaging per il monitoraggio del reclutamento dei leucociti durante l'arteriogenesi in un modello murino di arti posteriori

Il presente protocollo descrive un modello unico e clinicamente rilevante di arteriopatia periferica che combina l'elettrocoagulazione dell'arteria femorale e venosa con la somministrazione di un inibitore dell'ossido nitrico sintasi per indurre la cancrena degli arti posteriori nei topi FVB. La perfusione intracardiaca di DiI viene quindi utilizzata per l'imaging tridimensionale ad alta risoluzione della vascolarizzazione del footpad.

Imaging tridimensionale ad alta risoluzione della vascolarizzazione del footpad in un modello di cancrena posteriore murina

L'ecografia Doppler ultraveloce (UFUS) con elevata risoluzione spaziale (100 μm) e sensibilità rappresenta una modalità di imaging non invasiva adatta per ottenere una panoramica qualitativa completa della vascolarizzazione epatica. L'UFUS facilita anche le misurazioni quantitative della microvascolarizzazione, con l'obiettivo di migliorare la nostra comprensione dei meccanismi delle malattie vascolari.

Imaging e quantificazione della vascolarizzazione epatica dei topi mediante ecografia Doppler ultraveloce

Qui viene mostrata una procedura chirurgica minimamente invasiva, che prevede il posizionamento della sonda laser Doppler sul cranio sopra la regione distale dell'arteria cerebrale media (MCA), una posizione periorbitale adatta a ratti e topi, per valutare il flusso sanguigno durante l'occlusione transitoria MCA.

Posizionamento periorbitale di una sonda laser Doppler per il monitoraggio del flusso sanguigno cerebrale prima dell'occlusione dell'arteria cerebrale media in modelli di roditori

Un sistema laser di contrasto speckle è stato utilizzato per monitorare le variazioni del flusso sanguigno microvascolare renale durante la ischemia-reperfusione unilaterale renale dopo la resezione del rene destro nei topi.

Perfusione microvascolare monitorata tramite imaging laser a contrasto speckle durante lesioni da ischemia-reperfusione renale nei topi

Scopri l'imaging a perfusione Doppler laser nell'arto posteriore del mouse per valutare la microcircolazione cutanea e il recupero del flusso sanguigno post-ischemia. Questa tecnica non invasiva supporta la ricerca sulla guarigione delle ferite.

Imaging perfusione Doppler laser nell'hindlimb del mouse

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