Name: Istituzione e manipolazione genetica degli organoidi epatociti murini (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-12T12:30:00.000+00:00
Duration: 14 min 54 s
Description: Scopri come stabilire e manipolare geneticamente organoidi di epatociti murini utilizzando lentivirus, siRNA e CRISPR-Cas9. Questo metodo consente studi avanzati sulla biologia epatica e applicazioni terapeutiche.

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Ringraziamo il professor Hans Clevers per aver gentilmente fornito le linee cellulari per produrre R-spondin1 ricombinante. Questo lavoro è stato supportato dalle sovvenzioni del National Key R&D Program of China (2019YFA0111400), della National Natural Science Foundation of China (31970779) a H.H. e del Funds for Youth Interdisciplinary and Innovation Research Group della Shandong University (2020QNQT003) a H.H.

Tutti gli esperimenti sui topi sono stati approvati dal Comitato per la cura e l'uso degli animali della School of Basic Medical Sciences dell'Università di Shandong e sono stati effettuati secondo la Licenza secondo le linee guida e i regolamenti del Ministero degli Interni (No. ECSBMSSDU2019-2-079).
NOTA: Questo protocollo viene utilizzato principalmente per la coltura di organoidi 3D da epatociti primari isolati.
1. Istituzione della coltura di epatociti murini
NOTA: La matrice extracellulare come Matrigel o BME viene utilizzata come matrice basale per la coltura di organoidi. Conservare la matrice extracellulare a -20 °C e pre-scongelarla a 4 °C o sul ghiaccio. Mantenere la matrice extracellulare sul ghiaccio durante gli esperimenti. Il mezzo di lavaggio è Advanced DMEM/F12 integrato con GlutaMAX, HEPES e penicillina/streptomicina. Un incubatore standard (37 °C, atmosfera umidificata, 5% di CO2) viene utilizzato per la coltura di organoidi.
<ol><li>Preparazione dei materiali<ol>
<li>Preparare gli strumenti necessari per l'esperimento: il cuscino del mouse, strumenti chirurgici sterili come pinzette, forbici, tubi e una pompa con una portata di 2-10 ml / min.</li>
		<li>Preparare i reagenti compreso il tampone di perfusione, il tampone di digestione e renderli sterili per l'isolamento degli epatociti. Aggiungere collagenasi fresca di tipo IV (0,10 mg/ml) e CaCl2 (0,50 M) e preriscaldare il tampone a 37 °C a bagnomaria.</li>
		<li>Preparare il mezzo condizionale per produrre R-spondin 1 e tutte le scorte chimiche e dei fattori di crescita secondo le istruzioni del produttore. NOTA: Evitare di congelare e scongelare frequentemente il mezzo condizionale e le scorte. Preparare la coltura media fresca e utilizzarla entro un mese. Questo è fondamentale per l'efficienza di formatura degli organoidi.</li>
	</ol></li>
	<li>Isolamento degli epatociti murini mediante perfusione epatica e digestione NOTA: Topi maschi o femmine di età compresa tra 12 settimane e 6 mesi sono stati utilizzati per la coltura di organoidi. Non sono state riscontrate differenze evidenti nell'efficienza di formazione degli organoidi rispetto all'età del topo donatore all'interno di questo intervallo.<ol>
<li>Eutanasia del topo con un metodo eticamente approvato.</li>
		<li>Fissare il mouse sul cuscino del mouse e pulire la pelliccia addominale e la pelle con alcol al 70%. Esporre l'addome e sollevare il fegato sopra il resto del corpo. Fai un'incisione della linea mediana per esporre il fegato.</li>
		<li>Riempire il tubo collegato alla pompa con tampone di perfusione. Fare un'incisione della vena porta (circa 1/3 del diametro della vena) e posizionare con cura un catetere in esso. Sollevare gli organi digestivi per aiutare a inserire la cannula. Una cravatta con la linea chirurgica è opzionale per evitare scivolamenti e rotture.</li>
		<li>Avviare la pompa ed eseguire la perfusione ad una portata di 5-7 ml/min con tampone di perfusione. Se il fegato diventa pallido immediatamente, tagliare la vena cava inferiore per consentire al tampone di perfusione di fluire attraverso tutto il fegato e scacciare il sangue.</li>
		<li>Quando il flusso in uscita diventa pulito, rimuovere la cannula. Ci vogliono circa 5-10 minuti.</li>
		<li>Cambiare il tampone di perfusione con tampone di digestione preriscaldato ad una velocità di 5 ml/min. Non interrompere la pompa fino a quando il fegato diventa morbido e si gonfia. Rimuovere il catetere quando il fegato smette di gonfiarsi. NOTA: È molto importante mantenere un tempo di digestione adeguato per evitare una digestione eccessiva e ottenere singole cellule del fegato.</li>
		<li>Tagliare il fegato e metterlo in una piastra da 100 mm riempita con 15 ml di mezzo di lavaggio a freddo. Tagliare i legamenti con piccole forbici. Strappare il fegato a pezzi con punte di pipetta o pinza.</li>
		<li>Pipettare su e giù delicatamente per rilasciare le cellule fino a quando il tampone è saturo di cellule (12-15 volte). Versare la sospensione cellulare in un tubo da 50 ml attraverso filtri da 70 μm.</li>
		<li>Centrifugare per 1-3 minuti a 50 x g e 4 °C. Decantare il surnatante. Facoltativamente, risospesere le cellule con il mezzo di lavaggio o risospescere direttamente le cellule con il terreno di coltura. Conta le cellule con un emacitometro.</li>
		<li>Distinguere le cellule vive o morte dalla macchina contacellulare dopo la colorazione del colorante cellulare vivo. NOTA: È meglio purificare gli epatociti usando il freddo 40% di Percoll. Dopo questo passaggio, gli epatociti vitali saranno nella parte inferiore dei tubi.</li>
	</ol></li>
	<li>Coltura e passaggio di organoidi<ol>
<li>Rimuovere il surnatante e risospese gli epatociti con una miscela di matrice extracellulare e terreno di coltura in un rapporto di 3:1. NOTA: si consigliano 10.000-20.000 cellule in una miscela da 50-60 μL per pozzetto per una piastra da 24 pozzetti. È importante lavorare rapidamente e mantenere la miscela su ghiaccio durante tutto il processo. A questa concentrazione si potrebbero formare 200-500 organoidi.</li>
		<li>Aggiungere la goccia di cella / miscela sulla piastra con piccole goccioline per evitare che la goccia si colleghi insieme. Incubare la piastra nell'incubatore cellulare a 37 °C, 5% DI CO2 per 5-10 minuti e quindi estrarre la piastra per 20-25 minuti fino a quando la matrice extracellulare diventa solida.</li>
		<li>Aggiungere il terreno di coltura (500 μL per pozzetto per una piastra a 24 pozzetti) nei pozzetti e restituire la piastra all'incubatore per la coltura organoide. Cambia il mezzo ogni 3-4 giorni. Osservare gli organoidi fino a quando non sono abbastanza grandi da essere passati. NOTA: Un diametro con circa 400-500 μm è adatto per il passaggio di organoidi epatocitari.</li>
		<li>Isolare gli organoidi dalla matrice extracellulare con il processo dettagliato di seguito. Tenere una pipetta Pasteur di vetro in una fiamma per restringerne l'apertura (di ~1/2). Pipettare meccanicamente su e giù 5-10 volte per dissociare gli organoidi in organoidi più piccoli durante il passaggio. NOTA: Durante il passaggio, preparare le punte e i tubi in micropipette prelavati con tampone di lavaggio a punta per evitare la perdita di organoidi che si attaccano ai tubi o alle punte.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Manipolazione genetica degli organoidi epatociti murini
<ol><li>Cellule singole da organoidi epatociti<ol>
<li>Aggiungere 500 μL di soluzione di recupero a freddo medio/cellulare a ciascun pozzetto. Pipettare su e giù per distruggere la miscela di matrice cellulare / extracellulare con una micropipetta e quindi trasferire la sospensione organoide in un tubo centrifugo da 15 ml su ghiaccio. Facoltativamente, ruotare il tubo su e giù di tanto in tanto per scongelare accuratamente la miscela.</li>
		<li>Centrifugare per 5 minuti a 500-800 x g e 4 °C ed eliminare il surnatante. Aggiungere 1 mL di soluzione di tripsina al pellet e pipettarlo per mescolare. Incubare a 37 °C per 5-10 minuti e quindi interrompere la digestione aggiungendo un volume 2x di mezzo di lavaggio.</li>
		<li>Centrifugare per 5 minuti a 800 x g e 4 °C ed eliminare il surnatante. Risospesciare il pellet con terreno di coltura e contare le cellule usando un emacitometro.</li>
	</ol>
</li>
	<li>trasfezione di siRNA o plasmidi NOTA: gli organoidi più piccoli con un diametro inferiore a 50 μm o le singole cellule di organoidi epatocitari vengono trasfettati con siRNA usando lipofectamine o plasmidi usando reagente di trasfezione secondo le istruzioni del produttore.<ol>
<li>Mescolare siRNA o plasmidi con reagente di trasfezione. Aggiungere singole cellule da organoidi e la miscela Lipofectamine-RNA/Lipo-plasmide (ad esempio, RNAiMAX) in 1-2 pozzetti nella piastra a 24 pozzetti e centrifugare per 1 ora a 500 x g e 32 °C. Dopo la centrifugazione, incubare la piastra nell'incubatore per 4-5 ore a 37 °C.</li>
		<li>Raccogliere le cellule e il seme in matrice extracellulare con terreno di coltura ad una concentrazione di 10.000 cellule per pozzetto. Cambiare il mezzo nella condizione di selezione due giorni dopo la trasfezione. Valutare l'efficienza di formazione degli organoidi dopo 10 giorni.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Infezione lentivirale NOTA: piccoli organoidi con un diametro inferiore a 50 μm o singole cellule di organoidi epatociti sono infettati da lentivirus utilizzando reagenti di infezione secondo le istruzioni del produttore.<ol>
<li>Mescolare 250 μL della sospensione unicellulare dall'organoide e 250 μL di particelle virali in un tubo da 1,5 mL.</li>
		<li>Impiattare la miscela e centrifugare per 1 ora a 500 x g e 32 °C. Incubare per 4-5 ore a 37 °C.</li>
		<li>Raccogliere le cellule e il seme in matrice extracellulare con terreno di coltura. Cambiare il mezzo nella condizione di selezione due giorni dopo la trasfezione. Valutare l'efficienza di formazione degli organoidi dopo 10 giorni.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Ingegneria genetica di CRISPR/Cas9 NOTA: Forniamo video per questa performance nei materiali supplementari. Singole cellule di organoidi sono state infettate da lentivirus o trasfettate da plasmidi portatori di sgRNA e Cas9.<ol>
<li>Digerire singole cellule da organoidi epatociti coltivati e passaggio secondo il metodo di cui sopra.</li>
		<li>Infettare singole cellule con sgRNA utilizzando il mezzo Opti-MEM e reagenti di infezione secondo le istruzioni del produttore.</li>
		<li>Mescolare 250 μL di una sospensione unicellulare e 250 μL di particelle virali insieme in un tubo da 1,5 mL.</li>
		<li>Centrifugare la miscela da 500 μL per 1 ora a 500 x g e 32 °C e quindi incubare per 4-5 ore a 37 °C.</li>
		<li>Raccogliere la sospensione cellulare e il seme in matrice extracellulare. Valutare l'efficienza di formazione degli organoidi dopo 10 giorni.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol><li>Lancaster, M. A., Knoblich, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organogenesis+in+a+dish%3A+modeling+development+and+disease+using+organoid+technologies%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Organogenesis in a dish: modeling development and disease using organoid technologies.</a> Science. 345 (6194), 124-125 (2014).</li>
<li>Sasai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Next-generation+regenerative+medicine%3A+organogenesis+from+stem+cells+in+3D+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Next-generation regenerative medicine: organogenesis from stem cells in 3D culture.</a> Cell Stem Cell. 12 (5), 520-530 (2013).</li>
<li>Sato, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+Lgr5+stem+cells+build+crypt-villus+structures+in+vitro+without+a+mesenchymal+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche.</a> Nature. 459 (7244), 262-265 (2009).</li>
<li>Paola, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Individual+brain+organoids+reproducibly+form+cell+diversity+of+the+human+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Individual brain organoids reproducibly form cell diversity of the human cerebral cortex.</a> Nature. 570, 523-527 (2019).</li>
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<li>Wang, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-Term+Expansion+of+Pancreatic+Islet+Organoids+from+Resident+Procr+%2B+Progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Long-Term Expansion of Pancreatic Islet Organoids from Resident Procr + Progenitors.</a> Cell. 180 (6), 1198-1211 (2020).</li>
<li>Jarno, D., Hans, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organoids+in+cancer+research%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Cancer%22%5BJournal%5D)">Organoids in cancer research.</a> Nature Reviews Cancer. 18, 407-418 (2018).</li>
<li>Hans, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+Development+and+Disease+with+Organoids%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Modeling Development and Disease with Organoids.</a> Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).</li>
<li>Forbes, S. J., Newsome, P. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liver+regeneration-mechanisms+and+models+to+clinical+application%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Gastroenterol+Hepatol%22%5BJournal%5D)">Liver regeneration-mechanisms and models to clinical application.</a> Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 13 (8), 473-485 (2016).</li>
<li>Zhang, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Vitro+Expansion+of+Primary+Human+Hepatocytes+with+Efficient+Liver+Repopulation+Capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">In Vitro Expansion of Primary Human Hepatocytes with Efficient Liver Repopulation Capacity.</a> Cell Stem Cell. 23 (6), 806-819 (2018).</li>
<li>Katsuda, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conversion+of+Terminally+Committed+Hepatocytes+to+Culturable+Bipotent+Progenitor+Cells+with+Regenerative+Capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Conversion of Terminally Committed Hepatocytes to Culturable Bipotent Progenitor Cells with Regenerative Capacity.</a> Cell Stem Cell. 20 (1), 41-55 (2017).</li>
<li>Hu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-Term+Expansion+of+Functional+Mouse+and+Human+Hepatocytes+as+3D+Organoids%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Long-Term Expansion of Functional Mouse and Human Hepatocytes as 3D Organoids.</a> Cell. 175 (6), 1591-1606 (2018).</li>
<li>Peng, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inflammatory+Cytokine+TNFalpha+Promotes+the+Long-Term+Expansion+of+Primary+Hepatocytes+in+3D+Culture%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Inflammatory Cytokine TNFalpha Promotes the Long-Term Expansion of Primary Hepatocytes in 3D Culture.</a> Cell. 175 (6), 1607-1619 (2018).</li>
<li>Xiang, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+functional+maintenance+of+primary+human+hepatocytes+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Long-term functional maintenance of primary human hepatocytes in vitro.</a> Science. 364 (6438), 399-402 (2019).</li>
<li>Huch, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+culture+of+genome-stable+bipotent+stem+cells+from+adult+human+liver%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Long-term culture of genome-stable bipotent stem cells from adult human liver.</a> Cell. 160 (1-2), 299-312 (2015).</li>
<li>Broutier, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+and+establishment+of+self-renewing+human+and+mouse+adult+liver+and+pancreas+3D+organoids+and+their+genetic+manipulation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocol%22%5BJournal%5D)">Culture and establishment of self-renewing human and mouse adult liver and pancreas 3D organoids and their genetic manipulation.</a> Nature Protocol. 11 (9), 1724-1743 (2016).</li>
</ol>

Gli autori non rivelano conflitti.

La capacità di coltivare epatociti maturi per lunghi periodi è fondamentale nello studio della scienza di base del fegato, della tossicologia dei farmaci e delle infezioni epatotropiche di microbiologia dell'ospite come la malaria e i virus dell'epatite. Con una nicchia ben definita, il protocollo qui imposta un sistema di coltura per gli epatociti. Questo protocollo spinge gli epatociti maturi ad espandersi in coltura 3D con un'eterogeneità che ricapitola l'interazione cellula-cellula, la maggior parte delle funzioni ep...

Gli organoidi sono cluster in vitro auto-organizzati, tridimensionali (3D) che includono cellule staminali auto-rinnovanti e cellule differenziate multi-linea1,2. Gli organoidi di molti organi sono stati stabiliti da cellule staminali pluripotenti o adulte da fattori di nicchia ben definiti tra cui l'intestino, il cervello, il colon, il rene, il fegato, il pancreas, la tiroide, lo stomaco, la pelle e il polmone3,4,5,6,7 . Gli organoidi ricapitolano le funzioni fisiche delle cellule imitando lo sviluppo (originato da cellule staminali pluripotenti embrionali o indotte, PSC) o la progressione dell'omeostasi/rigenerazione (originata da cellule staminali adulte, ASC), che apre nuove strade nella ricerca e nella terapia delle malattie8,9.
Essendo il più grande organo dei mammiferi, il fegato è principalmente responsabile della conservazione, del metabolismo e della disintossicazione. Due tipi di cellule epiteliali, epatociti e colangiociti, costruiscono l'unità di base di un lobulo epatico. Gli epatociti sono responsabili del 70-80% della funzionalità epatica10. Sebbene il fegato abbia una notevole capacità di rigenerazione, la rapida perdita delle caratteristiche degli epatociti si verifica durante la tradizionale coltura monostrato mediante polarizzazione cellulare disregolata e dedifferenziazione, il che aumenta la necessità di ricercatori e medici di costruire modelli epatici "gap-bridging" in un piatto. Tuttavia, fino a poco tempo fa i modelli di espansione ex vivo degli epatociti primari non erano stati ben stabiliti11,12,13,14,15. Gli organoidi epatici possono essere stabiliti da cellule staminali pluripotenti embrionali / indotte, conversione dei fibroblasti in cellule simili agli epatociti e cellule derivate dai tessuti. Lo sviluppo di organoidi epatici stimola l'applicazione di un modello in vitro per screening farmacologici e saggi di tossicità epatica16,17.
Qui, descriviamo un protocollo dettagliato per stabilire organoidi epatici da epatociti primari murini. Utilizzando questo protocollo, abbiamo creato un sistema di coltura in vitro di organoidi epatocitari con due perfusioni di collagenasi. Questi organoidi possono essere passati per un'espansione a lungo termine per mesi. La loro funzione fisiologica è altamente coerente con gli epatociti. Inoltre, forniamo anche una descrizione dettagliata di come eseguire la manipolazione genetica, come l'infezione da lentivirus, la trasduzione del siRNA e l'ingegneria CRISPR-Cas9 utilizzando organoidi. La propagazione degli organoidi epatocitari fa luce sulla possibilità di utilizzare gli organoidi per comprendere la biologia epatica e sviluppare approcci di medicina personalizzati e traslazionali.

<table><tbody><tr><td>Perfusion Buffer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>EGTA</td><td>Sangon Bitech</td><td>A600077-0100</td><td>3,50 g/L</td></tr><tr><td>Glucosio</td><td>Sangon Bitech</td><td>A100188-0500</td><td>9,00 g/L</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sangon Bitech</td><td>A100395-0500</td><td>4,00 g/L</td></tr><tr><td>Na2HPO4&middot; 12H2O</td><td>Sangon Bitech</td><td>A501727-0500</td><td>1.51 g/L</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sangon Bitech</td><td>A501218-0001</td><td>80.0 g/L</td></tr><tr><td>NaH2PO4&middot; 2H2O</td><td>Sangon Bitech</td><td>A610404-0500</td><td>0,78 g/L</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sangon Bitech</td><td>A500873-0500</td><td>3,50 g/L</td></tr><tr><td>Fenolo Rosso</td><td>Sangon Bitech</td><td>A100882-0025</td><td>0,06 g/L</td></tr><tr><td><forte>Tampone per digestione</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</sotto></td><td>Sangon Bitech</td><td>A501330-0005</td><td>0,50 M</td></tr><tr><td>Collagenasi IV</td><td>Sigma</td><td>C1639</td><td>0,10 mg/mL</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sangon Bitech</td><td>C621110-0010</td><td>23,80 g/L</td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sangon Bitech</td><td>A100395-0500</td><td>4,00 g/L</td></tr><tr><td>Na2HPO4&middot; 12H2O</td><td>Sangon Bitech</td><td>A501727-0500</td><td>1.51 g/L</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sangon Bitech</td><td>A501218-0001</td><td>80.0 g/L</td></tr><tr><td>NaH2PO4&middot; 2H2O</td><td>Sangon Bitech</td><td>A610404-0500</td><td>0,78 g/L</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sangon Bitech</td><td>A500873-0500</td><td>3,50 g/L</td></tr><tr><td>Tip-wash Buffer</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Gibco</td><td>10091148</td><td>conservato a 4 gradi; C</td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Gibco</td><td>C14190500BT0</td><td>memorizzato a 4 gradi C</td></tr><tr><td>Wash Medium</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Advanced DMEM/F12</td><td>Invitrogen</td><td>12634-010</td><td>conservato a 4 gradi; C</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td>100 X</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Gibco</td><td>15630-080</td><td>100 X</td></tr><tr><td>Penicillina/streptomicina</td><td>Sangon Bitech</td><td>&nbsp; A600135-0025</td><td>100 X</td></tr><tr><td>Culture Medium</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>A83-01</td><td>Tocris</td><td>2939</td><td>Concentrazione di stock 500 &; M, concentrazione finale 2 &micro; M</td></tr><tr><td>Advanced DMEM/F12</td><td>Invitrogen</td><td>12634-010</td><td>memorizzato a 4 gradi C</td></tr><tr><td>B-27 integratore 50x, meno vitamina A</td><td>Gibco</td><td>1704-044</td><td>50 x</td></tr><tr><td>Chir 99021</td><td>Tocris</td><td>4423</td><td>Concentrazione stock 30 mM, concentrazione finale 3 &; M</td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Gibco</td><td>11330032</td><td>conservato a 4 gradi; C</td></tr><tr><td>Gastrin I</td><td>Tocris</td><td>3006</td><td>Concentrazione madre 100 mM, concentrazione finale 10 nM</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td>100 X</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Gibco</td><td>15630-080</td><td>100 X</td></tr><tr><td>Matrigel martix</td><td>BD</td><td>356231</td><td>conservato a -20 gradi C</td></tr><tr><td>N-acetilcisteina</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A9165</td><td>Concentrazione madre 500 mM, concentrazione finale 1 mM</td></tr><tr><td>Nictinamide</td><td>Sigma Aldrich</td><td>N0636</td><td>Concentrazione madre 1 M, concentrazione finale 3 mM</td></tr><tr><td>Penicillina/streptomicina</td><td>Sangon Bitech</td><td>&nbsp; A600135-0025</td><td>100 X</td></tr><tr><td>EGF umano ricombinante</td><td>Peprotech</td><td>AF-100-15</td><td>Concentrazione di riserva 100 &; g/ml, concentrazione finale 50 ng/ml</td></tr><tr><td>FGF10 umano ricombinante</td><td>Peprotech</td><td>100-26</td><td>Concentrazione madre 100 &micro; g/ml, concentrazione finale 100 ng/ml</td></tr><tr><td>HGF umano ricombinante</td><td>Peprotech</td><td>100-39</td><td>Concentrazione madre 100 &micro; g/ml, concentrazione finale 25 ng/ml</td></tr><tr><td>TGF umano ricombinante-&alfa;</td><td>Peprotech</td><td>100-16A</td><td>Concentrazione di stock 100 &micro; g/ml, concentrazione finale 100 ng/ml</td></tr><tr><td>TNF umano ricombinante-&alfa;</td><td>Origene</td><td>TP750007-1000</td><td>Concentrazione stock 100 & micro; g/ml, concentrazione finale 100 ng/ml</td></tr><tr><td>Inibitore della Rho chinasi Y-27632</td><td>Abmole Bioscience</td><td>Y-27632 dicloridrato</td><td>Concentrazione madre 10 mM, concentrazione finale 10 &micro; </td></tr><tr><td>M Rspondina-1 terreno</td><td></td><td></td> condizionato <td>Linea cellulare stabile generata nel laboratorio Hu. Concentrazione finale 15%.</td></tr><tr><td><forte>Altri</forte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,22 &micro; m filtro</td><td>Millipore</td><td>SCGPT01RE</td><td></td></tr><tr><td>16 # tubo in silicone</td><td>LangerPump</td><td></td><td></td></tr><tr><td>24 pozzetti, sospensione</td><td>Greiner bio-one</td><td>GN662102-100EA</td><td></td></tr><tr><td>37 &deg; C Bagnomaria</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>70 &; m filtro</td><td>BD</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>staminale</td><td>AT-104</td><td>conservato a 4 gradi; C</td></tr><tr><td>Anti-CTNNB1</td><td>BD</td><td>610154</td><td>Topo</td></tr><tr><td>Anti-GAPDH</td><td>CST</td><td>5174S</td><td>Coniglio</td></tr><tr><td>Anti-HDAC7</td><td>Abcam</td><td>ab50212</td><td>Topo</td></tr><tr><td>Anti-KI67</td><td>Abcam</td><td>ab15580</td><td></td></tr><tr><td>Coniglio Cabina di sicurezza biologica</td><td>ESCO</td><td>CCL-170B-8</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di recupero cellulare</td><td>Corning</td><td>354253</td><td>conservato a 4 &deg; C</td></tr><tr><td>Centrifuge 5430</td><td>eppendorf</td><td>542700097</td><td></td></tr><tr><td>CO2 incubatore</td><td>ESCO</td><td>AC2-4S1</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sangon Bitech</td><td>&nbsp; A100231</td><td>conservati presso RT</td></tr><tr><td>EVOS FL Color Imaging Systems</td><td>Invitrogen</td><td>AME4300</td><td></td></tr><tr><td>Hdac3 siRNA</td><td>Guangzhou RiboBio Co., Ltd.</td><td>siG2003180909192555</td><td>immagazzinato a -20 &deg; C</td></tr><tr><td>Hdac7 lentivirus</td><td>ShanghaiGenePharmaCo.,Ltd</td><td>LV2020-2364</td><td>conservato a -80 &deg; C</td></tr><tr><td>Hitrans G A</td><td>Shanghai Genechem Co., Ltd.</td><td>REVG004</td><td>Aumento dell'efficienza dell'infezione virale</td></tr><tr><td>Software Image Pro Plus</td><td>Media Cybernetics, Bethesda, MD, USA</td><td>versione 6.0</td><td></td></tr><tr><td>Reagente di trasfezione Lipofectamin RNAiMAX</td><td>Invitrogen</td><td>13778150</td><td>Aumento dell'efficienza dell'infezione virale</td></tr><tr><td>Colorante per cellule vive</td><td>Luna</td><td>F23001</td><td>conservato a 4 gradi; C</td></tr><tr><td>Centrifuga da tavolo a bassa velocità</td><td></td><td>TD5A-WS/TD5AWS</td><td></td></tr><tr><td>Nucleofactor-&alpha; 2b Dispositivo</td><td>Lonza</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Opti-MEM</td><td>Gibco</td><td>31985070</td><td>conservato a 4 gradi; C</td></tr><tr><td>Pipetta Pasteur</td><td>Sangon Bitech</td><td>F621006-0001</td><td></td></tr><tr><td>Pompa peristaltica</td><td>LangerPump</td><td>BT100-2J</td><td></td></tr><tr><td>Membrana PVDF</td><td>Millipore</td><td>IPVH00010</td><td>Attiva con metanolo</td></tr><tr><td>PX458</td><td>Addgene</td><td>48138</td><td>conservato a -80 &deg; C</td></tr><tr><td>Centrifuga refrigerata</td><td>Thermo Scientific Heraeus</td><td>Labofuge 400</td><td></td></tr><tr><td>RSL3</td><td>MCE</td><td>HY-100218A</td><td>Concentrazione stock 10 mM, concentrazione finale 4 &; M</td></tr><tr><td>Tripsina/EDTA</td><td>Gibico</td><td>25200072</td><td>conservato a 4 gradi; C</td></tr><tr><td>Wee1 siRNA</td><td>Guangzhou RiboBio Co., Ltd.</td><td>siG2003180909205971</td><td>immagazzinato a -20 gradi E</td></tr></tbody></table>

istituzione e manipolazione genetica degli organoidi epatociti murini

Establishment and Genetic Manipulation of Murine Hepatocyte Organoids

Il fegato è l'organo più grande nei mammiferi. Svolge un ruolo importante nella conservazione del glucosio, nella secrezione proteica, nel metabolismo e nella disintossicazione. Come esecutore per la maggior parte delle funzioni epatiche, gli epatociti primari hanno una capacità proliferante limitata. Ciò richiede l'istituzione di modelli di espansione epatocitaria ex vivo per la ricerca fisiologica e patologica epatica. Qui, abbiamo isolato gli epatociti murini mediante due fasi di perfusione di collagenasi e stabilito una coltura organoide 3D come "mini-fegato" per ricapitolare le interazioni cellula-cellula e le funzioni fisiche. Gli organoidi sono costituiti da popolazioni cellulari eterogenee tra cui progenitori ed epatociti maturi. Introduciamo il processo in dettaglio per isolare e coltivare gli epatociti murini o gli epatociti fetali per formare organoidi entro 2-3 settimane e mostriamo come passarli con il pipettaggio meccanico su e giù. Inoltre, introdurremo anche come digerire gli organoidi in singole cellule per l'infezione da lentivirus di costruzione shRNA / ectopica, trasfezione di siRNA e ingegneria CRISPR-Cas9. Gli organoidi possono essere utilizzati per schermi farmacologici, modelli di malattie e ricerca epatica di base modellando la biologia epatica e la patobiologia.

Gli organoidi epatociti della femmina Alb-Cre; Il topo Rosa26-GFP (8 settimane) è stato osservato cinque giorni dopo la semina (Figura 1A). Gli organoidi proliferano con la colorazione positiva Ki67 (Figura 1B). L'espressione interferente di geni rappresentativi negli organoidi epatocitari mediante trasfezione di siRNA o infezione da lentivirus è stata esaminata mediante qRT-PCR e western blot. I risultati sono mostrati nelle Figure 2A</stro...

Un sistema di coltura organoide 3D ex vitro a lungo termine è stato stabilito da epatociti di topo. Questi organoidi possono essere passati e manipolati geneticamente dall'infezione da lentivirus di costruzione shRNA/ectopica, trasfezione di siRNA e ingegneria CRISPR-Cas9.

Istituzione e manipolazione genetica degli organoidi epatociti murini

The liver is the largest organ in mammals. It plays an important role in glucose storage, protein secretion, metabolism and detoxification. As the ...

Il fegato è l'organo più grande nei mammiferi. Svolge un ruolo molto importante nel metabolismo e nella disintossicazione. Sebbene il fegato abbia una notevole capacità di rigenerazione in vitro, è ancora una grande sfida a lungo termine coltivare epatociti in vitro.Qui, stabiliamo gli organoidi degli epatociti dagli epatociti maturi. Mantiene le caratteristiche principali degli epatociti nella morfologia e nella funzione. In questo video, introdurremo come coltivare e passare questi organoidi e come eseguire la modificazione genetica di questi organoidi in dettaglio.In primo luogo, perfusione epatica e digestione. Preparare tutte le regioni e gli strumenti e renderli sterili. Lavare il mouse e aprire l'epidermico e la pelle, quindi cercare di trovare il forno a sacchetto del fegato.Inietta gli aghi in esso, quindi cattura questo. Fai la perfusione alla velocità di cinque millilitri al minuto, fino a quando il fegato diventa pallido. Cambiali nel tampone di perfusione, posizionali con attenzione, osserva il fegato, fino a quando non diventa morbido.Di solito ci vogliono dai tre ai cinque minuti, poi tagliare il fegato e metterli nei piatti, e tagliarli a pezzetti con le forbici. Pe

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JoVE Journal

Biology

Biologia

Questo protocollo descrive la produzione di un sistema di 3-dimensionale organoid del mouse dei dotti biliari extrahepatic. Questi organoids biliare può essere mantenute in coltura per studiare biologia dei colangiociti. Organoids biliare esprimono marcatori di cellule progenitrici e cellule biliari e sono composte da cellule epiteliali polarizzate.

Generazione dei Organoids da dotti biliari Extrahepatic Mouse

Questo protocollo offre istruzioni dettagliate per stabilire organoidi murini dell'intestino tenue, isolare le cellule linfoidi innate di tipo 1 dalla lamina propria dell'intestino tenue murino e stabilire co-colture tridimensionali (3D) tra entrambi i tipi di cellule per studiare le interazioni bidirezionali tra le cellule epiteliali intestinali e le cellule linfoidi innate di tipo 1.

Co-coltura di organoidi epiteliali murini dell'intestino tenue con cellule linfoidi innate

Questo protocollo descrive la generazione di organoidi epatici endodermici (eHEPO) veloci e riproducibili. Con questo protocollo, gli eHEPO possono essere prodotti entro 2 settimane e ampliati a lungo termine (più di 1 anno) senza perdere la loro differenziazione e funzionalità.

Generazione di organoidi epatici endodermici funzionali

Questo protocollo descrive come stabilire, mantenere, modificare geneticamente, differenziare, caratterizzare funzionalmente e trapiantare organoidi della ghiandola lacrimale derivati da topi primari e tessuti umani.

Istituzione, mantenimento, differenziazione, manipolazione genetica e trapianto di organoidi di topo e ghiandola lacrimale umana

Gli organoidi rivoluzionano la modellazione tissutale personalizzata per lo sviluppo di organi, la scoperta di farmaci e la ricerca sulle malattie. L'ingegneria degli organoidi avanza nella creazione di tessuti sintetici intricati. L'obiettivo è quello di integrare la morfogenesi, la tecnologia assembloide e le biomatrici per far progredire l'ingegneria tissutale. Questo protocollo aiuta a modellare l'organogenesi epatica e a stabilire linee guida per la costruzione di tessuti sintetici.

Tecniche di coltivazione in vitro per la modellazione dell'organogenesi epatica, la costruzione di assembloidi e la progettazione di tessuti sintetici utilizzando linee cellulari umane

Gli organoidi generati dai tumori dei pazienti vengono iniettati ortotopicamente nel fegato del topo. La resezione del tessuto epatico non tumorale porta a un ambiente rigenerativo nel tessuto epatico in cui si trova il tumore.

Un modello di xenotrapianto di organoidi derivato da pazienti con carcinoma epatocellulare per studiare l'impatto della rigenerazione epatica sulla crescita del tumore

Questo protocollo presenta una tecnica ottimizzata di perfusione epatica della collagenasi in due fasi in un modello di ratto e mostra l'uso di epatociti isolati per la coltura in vitro a lungo termine di organoidi 3D.

Perfusione epatica di ratto e isolamento degli epatociti primari: una vecchia procedura cruciale per la coltura di organoidi 3D all'avanguardia

Descriviamo pipeline di imaging confocale e tracciamento applicati a due strategie di reporter: organoidi mosaici per risolvere il comportamento delle singole cellule e organoidi fate reporter per il monitoraggio delle transizioni cellulari in organoidi intestinali umani e murini.

Imaging a cellule vive e tracciamento a singola cellula per monitorare la dinamica clonale e le transizioni del destino negli organoidi intestinali umani e murini

Questo video dimostra nuova cultura, un metodo con cui sono coltivati ​​embrioni di pollo al di fuori l'uovo per un massimo di 24 ore. Questo metodo permette di studiare lo sviluppo precoce (stria primitiva a 14 som.), Un periodo corrispondente a E7-9 nel topo. Le applicazioni di questa tecnica sono elettroporazione, ibridazione in situ e immunoistochimica.

Metodo per la Cultura di Chick primi embrioni ex vivo (Nuova Cultura)

Questo video dimostra a 2 colori montare tutto ibridazione in situ, un metodo con cui il modello di espressione spaziale e temporale dei 2 geni differenti possono essere visualizzati in embrioni di pollo giovani. Questo metodo è stato originariamente introdotto da David Wilkinson, Domingos Henrique, Phil Ingham e David Ish-Horowicz.

Doppia Monte intero ibridazione in situ di embrioni di pollo primi

Scopri come stabilire e manipolare geneticamente organoidi di epatociti murini utilizzando lentivirus, siRNA e CRISPR-Cas9. Questo metodo consente studi avanzati sulla biologia epatica e applicazioni terapeutiche.

Istituzione e manipolazione genetica degli organoidi epatociti murini

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