Name: Un modello preclinico di colpo di calore da sforzo nei topi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-07-01T14:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 22 s
Description: Scopri un modello preclinico di colpo di calore da sforzo nei topi che elimina stimoli esterni avversi e riproduce fedelmente la fisiopatologia umana. Questo metodo consente studi meccanistici, preventivi e terapeutici sull'EHS.

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Questo lavoro è stato finanziato dal Dipartimento della Difesa W81XWH-15-2-0038 (TLC) e BA180078 (TLC) e dal BK and Betty Stevens Endowment (TLC). JMA è stata sostenuta da aiuti finanziari del Regno dell'Arabia Saudita. Michelle King era con l'Università della Florida al momento in cui è stato condotto questo studio. Attualmente è impiegata presso il Gatorade Sports Science Institute, una divisione di PepsiCo R&D.

Tutte le procedure sono state riviste e approvate dalla IACUC dell'Università della Florida. Per lo studio vengono utilizzati topi maschi o femmine C57BL / 6J, di età compresa tra ~ 4 mesi, di peso compreso tra 27-34 g e 20-25 g, rispettivamente.
1. Impianto chirurgico del sistema di monitoraggio telemetrico della temperatura
<ol><li>All'arrivo dal venditore, consentire agli animali di riposare nel vivaio per almeno 1 settimana prima dell'intervento chirurgico per ridurre al minimo lo stress del trasporto.</li>
	<li>Il gruppo ospita i topi (massimo 5 per gabbia secondo le linee guida locali IACUC) fino al giorno dell'intervento chirurgico per l'impianto del dispositivo telemetrico a temperatura. Ospitali in gabbie standard da 7,25 " (L) x 11,75 " (L) x 5 " (H) contenenti lettiera di pannocchia di mais. Mantenere il ciclo di luce su un ciclo di luce 12 x 12 (acceso: 7 AM; spento: 7 PM). Mantenere la temperatura dell'alloggiamento a 20-22 °C e l'umidità relativa (RH) al 30%-60%. Fornire la dieta standard chow e acqua ad libitum fino al protocollo EHS. NOTA: Il razionale per l'alloggiamento individuale è quello di evitare frequenti lesioni da combattimento nei topi maschi C57bl / 6J e di fornire ampie opportunità per la corsa spontanea della ruota per ciascun topo.</li>
	<li>Per il posizionamento dei dispositivi di telemetria, anestetizzare il mouse con isoflurano (4%, 0,4-0,6 L/min di flusso O2) in una camera di induzione. Quindi, posizionare il mouse in anestesia continua tramite un cono nasale (1,5%, 0,6 L / min).</li>
	<li>Utilizzare lubrificante per gli occhi, come un unguento veterinario, per proteggere gli occhi dell'animale da danni o lesioni durante l'intervento chirurgico.</li>
	<li>Per preparare il sito chirurgico, radersi l'addome inferiore con piccoli tagliacapelli per animali o utilizzare un dispositivo di rimozione dei capelli disponibile in commercio. Somministrare la prima dose di buprenorfina sottocutanea (0,1 mg/kg) durante questo periodo.</li>
	<li>Strofinare l'area con tre lavaggi di povidone-iodio (o scrub germicida simile) seguiti da risciacquo con alcool isopropilico al 70% (o soluzione salina sterile a seconda delle esigenze veterinarie locali). Quindi, trasferire il mouse nell'area chirurgica.</li>
	<li>Utilizzare un telo adesivo per isolare il sito chirurgico sul mouse. Utilizzando strumenti sterili e tecnica asettica, fare un'incisione di ~ 1 cm sulla linea mediana lungo la linea alba, a circa 0,5 cm dal margine costale. Quindi, separare la pelle dallo strato muscolare e fare un'incisione leggermente più piccola sulla linea alba, facendo attenzione a non danneggiare l'intestino o gli organi interni.</li>
	<li>Una volta aperto lo strato muscolare, posizionare il telemetro sterile (dispositivo di radiotelemetria riutilizzabile in miniatura senza batteria; 16,5 x 6,5 mm) nella cavità intraperitoneale di fronte alle arterie caudali e alle vene e dorsale agli organi digestivi per consentirgli di fluttuare liberamente. NOTA: Tutti i telemetri vengono puliti con acqua e sapone, accuratamente risciacquati e sterilizzati a gas con ossido di etilene tra un utilizzo e l'altro. Se la sterilizzazione a gas non è disponibile, l'immersione in soluzioni di sterilizzazione (seguendo la raccomandazione del produttore per il tempo di diluizione e immersione) è accettata per disinfettare e sterilizzare i telemetri.</li>
	<li>Chiudere l'apertura addominale con una sutura riassorbibile sterile 5-0 e chiudere la pelle usando un semplice punto interrotto con sutura di prolina 5-0. NOTA: Consentire al telemetro di galleggiare nel compartimento addominale senza legarlo alla parete addominale (un metodo raccomandato dal produttore) ha dimostrato di avere successo e preferito dagli autori per eliminare l'eccesso di tensione nella parete addominale durante la guarigione. Inoltre, ciò non ha alcun impatto sulla capacità del ricevitore di ottenere il segnale dall'emettitore.</li>
	<li>Posizionare il mouse nella sua gabbia pulita con una piastra riscaldante portatile sotto la gabbia. Monitorare il mouse ogni 15 minuti durante la prima ora di recupero dall'anestesia e quindi tornare alla struttura di stabulazione degli animali.</li>
	<li>Fornire ai topi iniezioni sottocutanee di buprenorfina ogni 12 ore per 48 ore durante il recupero e continuare a monitorare i segni di sofferenza. Se disponibile, somministrare buprenorfina a lento rilascio per via sottocutanea ogni 24 ore (1 mg/kg) per 48 ore. Lasciare che i topi si riprendano per ~ 2 settimane dopo l'intervento chirurgico prima di introdurre una ruota volontaria in esecuzione.</li>
</ol>2. Familiarizzazione: corsa volontaria e forzata della ruota
<ol><li>Dopo il recupero dall'intervento chirurgico, posizionare le ruote da corsa volontarie nella gabbia per il libero accesso alla ruota. Altre selezioni di ruote da corsa possono essere ugualmente efficaci, ma assicurarsi che si adatti alle limitate dimensioni della gabbia disponibili. NOTA: le ruote di scorrimento dovevano essere leggermente ridotte di dimensioni per adattarsi a una gabbia standard.</li>
	<li>Acclimatare il mouse alla ruota volontaria nella gabbia per 2 settimane. Una volta acclimatato, il mouse è pronto per l'allenamento con le procedure di familiarizzazione per le ruote da corsa forzate.</li>
	<li>Eseguire le quattro sessioni di allenamento (una/giorno) nella camera ambientale a temperatura ambiente (~25 °C, 30% di umidità relativa). NOTA: Sebbene questo sia l'ideale, i topi sono stati anche addestrati con successo in identiche ruote a corsa forzata al di fuori della camera. Diversi topi possono quindi essere addestrati contemporaneamente senza interferire con l'uso della camera.</li>
	<li>Per iniziare la prima sessione di allenamento, consentire al mouse di liberare la rotella nella ruota di corsa modificata per 15 minuti rimuovendo o allentando la cinghia di trasmissione del motore per consentire al mouse di determinare la velocità della ruota e acclimatarsi ad essa in modo non stressante. NOTA: i protocolli possono essere eseguiti con software e hardware forniti dal produttore della ruota dentata o possono essere sostituiti da un alimentatore programmabile esterno collegato direttamente al motore della ruota, che consente l'automazione del protocollo di esercizio incrementale.</li>
	<li>Calibrare il sistema per ogni ruota di scorrimento per determinare la relazione tra la tensione di alimentazione e i metri/minuto (m/min) di ciascuna ruota. NOTA: Anche le ruote di scorrimento forzate sono state modificate per elevare il motore di 15 cm, invertire e spostare la puleggia che guida la ruota fino a 5 cm sopra la piattaforma del ricevitore di telemetria. Ciò ha garantito che la piattaforma del ricevitore ottenesse dati di telemetria accurati durante il protocollo in esecuzione senza interferenze da parte del motore.</li>
	<li>Dopo un breve periodo di riposo (<5 min), avviare il protocollo della ruota di corsa forzata. Avviare la ruota a 2,5 m/min e aumentare di 0,3 m/min ogni 10 minuti per un totale di 1 ora per imitare la prima ora della prova EHS effettiva, ma a temperatura ambiente. Riportare il mouse nella sua gabbia di casa e consentire il recupero 24 ore su 24. Condurre le successive tre sessioni di corsa forzata nello stesso modo in giorni consecutivi. Dopo il giorno 1, la porzione di acclimatazione a ruota libera non è necessaria.</li>
	<li>Consentire al mouse 2-3 giorni di wash-out o recupero dallo stress della pratica della ruota di corsa forzata, ma consentire al mouse libero accesso alla ruota volontaria della gabbia domestica. Il mouse è ora pronto per sottoporsi al protocollo EHS.</li>
</ol>3. Protocollo EHS
<ol><li>La notte prima del protocollo EHS, posizionare il mouse nella camera ambientale a temperatura ambiente (~ 25 ° C, ≈30% di umidità relativa) per acclimatarsi alla camera.</li>
	<li>Utilizzare un sistema di acquisizione dati per raccogliere Tc continuo, in media su intervalli di 30 s durante la notte.</li>
	<li>La mattina del protocollo EHS, assicurarsi che il mouse sia pari o inferiore a un intervallo normale di temperatura diurna prima di aumentare la temperatura della camera (ad esempio, 36-37,5 °C). Ciò garantisce che il mouse non abbia la febbre e non abbia sperimentato uno stress eccessivo durante questo periodo.</li>
	<li>Una volta che il mouse è stabile e all'interno di un intervallo di normale temperatura interna a riposo, rimuovere il cibo e l'acqua e pesare l'animale. Chiudere la porta della camera e aumentare la temperatura della camera a un obiettivo di 37,5 °C e 40%-50% di umidità relativa, o la temperatura e l'umidità ambientale desiderate19. Verificare la temperatura e l'umidità della camera con un monitor di temperatura e umidità calibrato.</li>
	<li>Circonda la camera con una tenda oscurante per mantenere la luce e i disturbi minimi durante il protocollo. Monitorare continuamente il mouse durante il protocollo tramite telecamere ir illuminate da remoto. Focalizzare una seconda telecamera sul monitor di temperatura e umidità, posizionato vicino alla ruota di marcia. Effettuare eventuali regolazioni al controller per il set-point della camera ambientale per garantire letture accurate della temperatura vicino all'animale.</li>
	<li>Una volta che la camera ha raggiunto la temperatura target misurata dalla seconda telecamera sul monitor della temperatura (questo può richiedere ~ 30 minuti), aprire rapidamente lo sportello della camera e posizionare il mouse nella rotella di corsa forzata.</li>
	<li>Avviare il protocollo della ruota di corsa forzata a una velocità di 2,5 m/min e aumentare la velocità di 0,3 m/min ogni 10 minuti fino a quando il mouse raggiunge un Tc di 41 °C. Una volta che il mouse ha raggiunto questa temperatura interna, lasciare che la velocità rimanga costante fino alla limitazione dei sintomi, caratterizzata da un'apparente perdita di coscienza, una caduta all'indietro o uno svenimento e l'incapacità di continuare a correre o aggrapparsi alla ruota. Confermare questo punto temporale quando il mouse ha tre rotazioni all'indietro sulla rotellina senza segni di una risposta fisica. In alternativa, identificare un endpoint umano seguendo le regole IACUC locali per determinare quando interrompere il protocollo (ad esempio, quando Tc ~ 43 °C). Questo endpoint è leggermente superiore alla limitazione dei sintomi essenzialmente in tutti i topi.</li>
	<li>Per eseguire il protocollo Rapid Cooling (R), una volta che il mouse raggiunge la limitazione dei sintomi, arrestare la rotellina e rimuoverla immediatamente dalla rotella di corsa forzata. Pesare il mouse e rimetterlo nella sua gabbia di casa per recuperare a temperatura ambiente. Durante questo periodo, lasciare la porta della camera aperta e riportare il set point dell'incubatore a temperatura ambiente per consentire alla camera di raffreddarsi rapidamente. Questa procedura si traduce in >99% di sopravvivenza a lungo termine.</li>
	<li>Per eseguire un'esposizione EHS più grave (S), mantenere la gabbia domestica dell'animale all'interno della camera a 37,5 °C durante il protocollo EHS. Quando l'animale raggiunge la limitazione dei sintomi, permettigli di rimanere nella ruota di corsa fino a quando non ritorna alla coscienza come osservato dalla telecamera remota (~ 5-9 minuti).</li>
	<li>Quindi rimuovere rapidamente il mouse dalla rotella di corsa e riportarlo direttamente alla sua gabbia preriscaldata per ottenere un profilo di raffreddamento molto più lento(Figura 1A,linea tratteggiata rossa), eliminando essenzialmente la fase ipotermica EHS. Rimuovere la parte superiore del filtro dalla gabbia durante questo periodo per migliorare l'equilibrio con la camera.</li>
	<li>Utilizzare una gabbia di recupero preraffreddata a temperatura ambiente per eseguire una procedura alternativa meno severa per provocare una fase ipotermica soppressa ma con un tasso di sopravvivenza del 100%20.</li>
	<li>Per il protocollo S, monitorare attentamente il mouse durante il ripristino e verificare continuamente la presenza di endpoint umani. Sebbene sia difficile testare a distanza endpoint umani comunemente usati (ad esempio, riflesso di raddrizzamento), osservare i topi da remoto per movimenti normali durante il recupero come toelettatura, respirazione normale, leccare, ecc. Monitorare il Tc durante questo periodo.</li>
	<li>È improbabile che i topi si riprendano se la loro temperatura interna inverte la direzione durante la fase di recupero, superando infine i 40 °C; in questo momento, terminare l'esperimento e valutare il mouse per endpoint umani standard.</li>
</ol>

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</ol>

Gli autori non hanno conflitti di interesse da divulgare. Tutto il lavoro svolto e tutto il supporto per questo progetto sono stati generati presso l'Università della Florida.

Questa revisione tecnica mira a fornire linee guida per le prestazioni di un modello preclinico di EHS nei topi. Vengono forniti passaggi dettagliati e materiali necessari per l'esecuzione di un episodio EHS riproducibile di gravità variabile. È importante sottolineare che il modello imita in gran parte i segni, i sintomi e la disfunzione multiorgano osservati nelle vittime umane di EHS11,19. Inoltre, questo modello consente di esaminare il meccanismo alla base d...

Il colpo di calore è caratterizzato da disfunzione del sistema nervoso centrale e successivo danno d'organo in soggetti ipertermici1. Ci sono due manifestazioni di colpo di calore. Il colpo di calore classico (CHS) colpisce soprattutto le popolazioni anziane durante le ondate di calore o i bambini lasciati in veicoli esposti al sole durante le calde giornateestive 1. Il colpo di calore da sforzo (EHS) si verifica quando vi è un'incapacità di termoregolarsi adeguatamente durante lo sforzo fisico, tipicamente, ma non sempre, a temperature ambiente elevate con conseguenti sintomi neurologici, ipertermia e successiva disfunzione e danno multiorgano2. L'EHS si verifica negli atleti ricreativi e d'élite, nonché nel personale militare e nei lavoratori con e senza disidratazione concomitante3,4. Infatti, l'EHS è la terza causa di mortalità negli atleti durante l'attività fisica5. È estremamente difficile studiare l'EHS negli esseri umani in quanto l'episodio può essere letale o portare a esiti negativi sulla salute a lungo termine6,7. Pertanto, un modello preclinico affidabile di EHS potrebbe servire come strumento prezioso per superare i limiti delle osservazioni cliniche retrospettive e associative nelle vittime di EHS umane. I modelli preclinici di CHS in roditori e suini sono stati ben caratterizzati8,9,10. Tuttavia, i modelli preclinici di CHS non si traducono direttamente in fisiopatologia EHS a causa degli effetti unici dell'esercizio fisico sul profilo termoregolatore e sulla risposta immunitaria innata11. Inoltre, i precedenti tentativi di sviluppare modelli EHS preclinici nei roditori hanno posto restrizioni significative, tra cui stimoli di stress sovrapposti indotti da scosse elettriche, inserimento di una sonda rettale e temperature corporee interne massime predefinite con alti tassi di mortalità12,13,14,15,16 che non corrispondono ai dati epidemiologici attuali. Questi rappresentano limitazioni significative che possono confondere l'interpretazione dei dati e fornire indici di biomarcatori inaffidabili. Pertanto, il protocollo mira a caratterizzare e descrivere i passaggi di un modello preclinico standardizzato, altamente ripetibile e traducibile di EHS nei topi che è in gran parte privo delle limitazioni sopra menzionate. Vengono descritti gli aggiustamenti al modello che possono portare a esiti fisiologici graduali da colpo di calore moderato a fatale. Per quanto a conoscenza degli autori, questo è l'unico modello preclinico di EHS con tali caratteristiche, che consente di perseguire la ricerca EHS pertinente in modo basato su ipotesi11,17,18.

<table><tbody><tr><td>&nbsp; 1080P HD 4 telecamere di sicurezza Sistema di telecamere di videosorveglianza domestica 4CH con HDD da 1 TB 2MP Telecamere per la visione notturna Kit di sorveglianza</td><td>CCTV LaView</td><td></td><td></td></tr><tr><td>5-0 Rivestito Vicryl Violet Intrecciato</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>5-0 Sutura in nylon Ethilon Monofilamento nero</td><td>Ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adesivo Telo chirurgico con Povidone 12x18</td><td>Jorgensen Labset al.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alimentatori CC programmabili multi-gamma di precisione BK Modello 9201</td><td>Strumenti DR di precisione</td><td></td><td></td>BK</tr><tr><td>&nbsp; Kit completo di dissezione anatomica per studenti di medicina</td><td>&nbsp; DR Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alimentatore Energizzatore</td><td>Starr Life Sciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>G2 Emitteret al.</td><td>Starr Life Sciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Layfayette Ruota motorizzata Modello #80840B</td><td>Layfayette</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Patterson Veterinary Isoflurane</td><td>Patterson Veterinary</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Platform receiveret al.</td>Camera Ambientale Scientifica <td>Starr Life Sciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Modello 3911</td><td>Ruote da allenamento ThermoForma</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>&nbsp; Columbus Inst.</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

un modello preclinico di colpo di calore da sforzo nei topi

A Preclinical Model of Exertional Heat Stroke in Mice

Il colpo di calore è la manifestazione più grave delle malattie legate al calore. Il colpo di calore classico (CHS), noto anche come colpo di calore passivo, si verifica a riposo, mentre il colpo di calore da sforzo (EHS) si verifica durante l'attività fisica. L'EHS differisce dalla CHS in eziologia, presentazione clinica e sequele di disfunzione multiorgano. Fino a poco tempo fa, solo i modelli di CHS sono stati ben consolidati. Questo protocollo mira a fornire linee guida per un raffinato modello murino preclinico di EHS che sia privo di importanti fattori limitanti come l'uso di anestesia, contenimento, sonde rettali o scosse elettriche. In questo modello sono stati utilizzati topi C57Bl/6 maschi e femmine, strumentati con sonde telemetriche di temperatura interna (Tc). Per familiarizzare con la modalità di corsa, i topi si sottopongono a 3 settimane di allenamento utilizzando ruote da corsa sia volontarie che forzate. Successivamente, i topi corrono su una ruota forzata all'interno di una camera climatica impostata a 37,5 °C e 40%-50% di umidità relativa (RH) fino a mostrare una limitazione dei sintomi (ad esempio, perdita di coscienza) a Tc di 42,1-42,5 °C, sebbene si possano ottenere risultati adeguati a temperature della camera comprese tra 34,5-39,5 °C e umidità tra il 30% e il 90%. A seconda della gravità desiderata, i topi vengono rimossi immediatamente dalla camera per il recupero a temperatura ambiente o rimangono nella camera riscaldata per una durata più lunga, inducendo un'esposizione più grave e una maggiore incidenza di mortalità. I risultati vengono confrontati con controlli di esercizio fittizi (EXC) e /o controlli ingenui (NC). Il modello rispecchia molti dei risultati fisiopatologici osservati nell'EHS umano, tra cui perdita di coscienza, grave ipertermia, danno multiorgano e rilascio di citochine infiammatorie e risposte di fase acuta del sistema immunitario. Questo modello è ideale per la ricerca basata su ipotesi per testare strategie preventive e terapeutiche che possono ritardare l'insorgenza di EHS o ridurre il danno multi-organo che caratterizza questa manifestazione.

I tipici profili termoregolatori durante l'intero protocollo EHS e il recupero precoce di un topo sono illustrati nella Figura 1A. Questo profilo comprende quattro fasi distinte che possono essere definite come la fase di riscaldamento della camera, la fase di esercizio incrementale, la fase di esercizio allo stato stazionario e una fase di recupero mediante un metodo di raffreddamento rapido (R) o severo (S)17. I principali risultati termoregolatori includono il mass...

Il protocollo descrive lo sviluppo di un modello standardizzato, ripetibile, preclinico di colpo di calore da sforzo (EHS) in topi privi di stimoli esterni avversi come scosse elettriche. Il modello fornisce una piattaforma per studi meccanicistici, preventivi e terapeutici.

Un modello preclinico di colpo di calore da sforzo nei topi

Heat stroke is the most severe manifestation of heat-related illnesses. Classic heat stroke (CHS), also known as passive heat stroke, occurs at rest, ...

In precedenza, solo i modelli passivi di colpo di calore sono stati ben consolidati. Questo modello di colpo di calore da sforzo è privo di grandi limitazioni e imita più da vicino la fisiopatologia umana. Non è possibile studiare efficacemente il colpo di calore negli esseri umani perché è una condizione pericolosa per la vita.Questo modello preclinico mantiene le caratteristiche cliniche del colpo di calore da sforzo umano. Questa tecnica aiuta a testare gli effetti della velocità di raffreddamento sul recupero dal colpo di calore da sforzo, le comorbidità dall'ingestione di farmaci e le conseguenze a lungo termine dell'esposizione al colpo di calore. A dimostrare la procedura sarà Jamal Alzahrani, uno studente di dottorato senior del laboratorio del Dr.Clanton.Dopo aver anestetizzato il topo, utilizzare lubrificante per gli occhi come l'unguento veterinario per proteggere gli occhi dell'animale da danni o lesioni durante l'intervento chirurgico. Per preparare il sito chirurgico, radersi l'addome inferiore con piccoli tagliacapelli per animali o un dispositivo di rimozione dei capelli disponibile in commercio. Somministrare la prima dose di buprenorfina sottocutanea 0,1 milligram

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JoVE Journal

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Medicina

Un modello potente per perioperatoria e critica lesioni legate ai reni per acuti è presentato. Utilizzando tutto il corpo ipoperfusione indotta da arresto cardiaco è possibile replicare quasi alterazioni istologiche e funzionali del clinico AKI.

Normotermico arresto cardiaco e rianimazione cardiopolmonare: un modello murino di ischemia-riperfusione

Il presente documento descrive un protocollo per ipertermia tutto il corpo nei topi che possono stimolare la febbre come condizioni fino a 12-24 ore.

Protocollo per lungo Ipertermia Corpo intera durata in Mouse

In questo video, descriviamo una procedura chirurgica per impiantare un dispositivo telemetrico della temperatura in un modello murino per misurare continuamente la sua temperatura corporea interna.

Impianto chirurgico del sistema di monitoraggio telemetrico della temperatura nel modello murino: una procedura chirurgica per impiantare il dispositivo telemetrico della temperatura per misurare la temperatura corporea del nucleo del topo

In questo video descriviamo un protocollo passo-passo per studiare il colpo di calore da sforzo (EHS) in un modello murino.

Modello murino di colpo di calore da sforzo: un protocollo per studiare i meccanismi alla base del colpo di calore da sforzo

Questo video mostra la procedura per indurre convulsioni indotte dal calore in un topo transgenico con mutazioni genetiche correlate all'epilessia aumentando gradualmente la temperatura corporea in una camera controllata. Questo protocollo viene utilizzato per studiare i meccanismi convulsivi e le potenziali terapie per l'epilessia.

Attivazione e monitoraggio delle convulsioni indotte dal calore in un modello murino transgenico

Viene dimostrato un metodo per valutare la resistenza all'esercizio nei topi di laboratorio senza l'uso di una griglia d'urto. Questo metodo è un perfezionamento umano che può ridurre gli effetti confondenti dello stress sui parametri sperimentali.

Valutazione della murini esercizio di resistenza senza l&#39;uso di una griglia Shock: Un&#39;alternativa alla Esercizio forzato

Allenamento di alta intensità nell'ipossia è un protocollo che è stato dimostrato per indurre gli adattamenti vascolari potenzialmente utili in alcuni pazienti e migliorare degli atleti ripetuto capacità di sprint. Qui, verifichiamo la fattibilità dei topi di formazione utilizzando che il protocollo e identificare tali adeguamenti vascolare utilizzando ex vivo valutazione di funzione vascolare.

Sopramassimale intensità di esercizio Hypoxic e valutazione di funzione vascolare in topi

L'obiettivo del metodo è quello di schermare l'ipertermia o le convulsioni indotte dal calore nei modelli murini. Il protocollo descrive l'uso di una camera costruita su misura con monitoraggio continuo della temperatura corporea per determinare se la temperatura corporea elevata porta a convulsioni.

Uno schermo comportamentale per le convulsioni indotte dal calore in modelli murini di epilessia

Questo modello murino combina un insulto settico con il disuso dei muscoli degli arti posteriori per ricapitolare la caratteristica costretta a letto del tipico paziente settico. Il modello rappresenta un allontanamento significativo dai modelli precedenti per studiare la disfunzione muscolare nella sepsi ed è un approccio riproducibile per affrontare le strategie terapeutiche per trattare questa condizione.

Un modello preclinico di miopatia indotta da sepsi con disuso nei topi

Occlusione filamentosa dell'arteria cerebrale media è un modello comune per lo studio di ictus ischemico nei topi.

Corsa di modellazione in Mouse - Medio occlusione dell&#39;arteria cerebrale con il Modello Filament

Scopri un modello preclinico di colpo di calore da sforzo nei topi che elimina stimoli esterni avversi e riproduce fedelmente la fisiopatologia umana. Questo metodo consente studi meccanistici, preventivi e terapeutici sull'EHS.

Un modello preclinico di colpo di calore da sforzo nei topi

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