Name: Quantificazione assoluta di inositolo pirofosfati mediante elettroforesi capillare Elettrospray ionizzazione spettrometria di massa (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-08-13T13:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 22 s
Description: Scopri la quantificazione assoluta di inositolo pirofosfati mediante elettroforesi capillare ESI-MS in estratti cellulari mammiferi. Questo metodo rapido e sensibile permette di analizzare il metabolismo dei fosfati di inositolo con elevata ripetibilità.

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Questo progetto ha ricevuto finanziamenti dal Consiglio europeo della ricerca (CER) nell'ambito del programma di ricerca e innovazione Horizon 2020 dell'Unione europea (accordo di sovvenzione n. 864246, a HJJ). DQ riconosce il sostegno finanziario del programma Brigitte-Schlieben-Lange. AS è supportato dalla sovvenzione del programma MRC MR/T028904/1.

1. Impostazione del sistema CE-ESI-MS
<ol><li>Impostare un sistema CE-ESI-MS costituito da un sistema CE commerciale - e uno spettrometro di massa tandem a triplo quadrupolo, dotato di una sorgente di ionizzazione elettrospray (ESI) Agilent Jet Stream (AJS). Sono necessari un kit spruzzatore CE-ESI-MS e una pompa isocratica LC (cromatografia liquida).</li>
	<li>Collegare lo splitter di flusso della guaina 1:100 (incluso nel kit spruzzatore CE-MS) e l'uscita della pompa LC isocratica.</li>
	<li>Assicurarsi che il flaconcino di ingresso del sistema CE sia alla stessa altezza della punta dello spruzzatore dell'analizzatore di massa.</li>
	<li>Utilizzare MassHunter Workstation (Versione 10.1) o software MS simile per controllare l'intero sistema e per l'acquisizione e l'analisi dei dati.</li>
</ol>2. Preparazione del sistema tampone, capillare e CE-MS
<ol><li>Preparare il tampone di corsa CE: regolare il pH di 40 mM di acetato di ammonio a 9,0 con idrossido di ammonio. Si raccomanda un matraccio tarato da 250 ml. Filtrare i 250 ml di tampone con filtri a membrana da 0,2 μm di dimensioni poro. Assicurarsi di utilizzare solo acqua deionizzata ultrapura e reagenti di grado MS. NOTA: Questo tampone può essere conservato a temperatura ambiente per 2-3 settimane o per diversi mesi in frigorifero.</li>
	<li>Preparare il liquido della guaina: mescolare 100 ml di acqua ultrapura e 100 ml di isopropanolo di grado LC-MS in un flacone da 250 ml. Cambiare il liquido della guaina almeno una volta alla settimana. Aggiungere il riferimento di massa nel liquido della guaina quando si utilizza uno spettrometro di massa ad alta risoluzione.</li>
	<li>Installare il liquido della guaina: spurgare a 5 ml/min per 5 minuti e impostare la portata a 1 mL/min (10 μL/min nello spruzzatore CE-MS). La pressione della pompa sarà di circa 180 bar. Assicurarsi che il tubo di riciclo si ricolleghi alla bottiglia del liquido della guaina per riutilizzare il solvente.</li>
	<li>Preparare il capillare: acquistare un capillare CE-MS (50 μm i.d. e 365 μM o.d. con una lunghezza di 125 cm) con una finestra di rilevamento UV. L'utente può anche ottenere capillari di silice fusa a barra molto più economici da distributori specializzati. Tagliare un capillare con una lunghezza di 100 cm. Tagliare correttamente entrambe le estremità capillari con un tagliacolonne capillari con un disco diamantato rotante e rimuovere 2-3 cm di rivestimento in poliimmide su entrambe le estremità con un accendino. Pulire la superficie capillare con isopropanolo.</li>
	<li>Installa capillare: abbina il capillare nella cassetta CE-MS. Fare clic sul pulsante Cambia cassetta e installare la cassetta nel dispositivo CE. L'estremità di ingresso del capillare è circa 2 mm più bassa dell'elettrodo. Assicurarsi che l'estremità di ingresso sia più bassa della superficie del campione durante il processo di iniezione.</li>
	<li>Attivare il capillare: prima del primo utilizzo, lavare il capillare con 1 M NaOH, seguito da acqua per 10 minuti e tampone CE per 15 minuti.</li>
	<li>Inserire l'estremità capillare nello spruzzatore CE-MS: inserire delicatamente il capillare nello spruzzatore CE-MS e assicurarsi che l'estremità capillare sporga di circa 0,1 mm dalla punta dello spruzzatore. Assicurarsi di effettuare una regolazione precisa dell'estremità di uscita capillare con una lente d'ingrandimento e la vite di regolazione nello spruzzatore. Inserire nuovamente lo spruzzatore nella sorgente di ioni ed evitare di toccare la vite di regolazione. L'MS è in modalità standby quando si esegue questa operazione.</li>
	<li>Controlla spray ESI: controlla la stabilità dello spruzzatore ESI in modalità di scansione completa. La fluttuazione degli elettroferogrammi ionici totali deve essere entro il 5%.</li>
	<li>Eseguire un test con gli standard InsP: utilizzare una miscela di standard InsP3-InsP 8 da 2 μM (regolati da NMR15,27 quantitativi 31P) per le prove con un'iniezione a 50 mbar per 10 s (10 nL). Impostare i parametri ESI e MS dettagliati come mostrato nella Tabella 1. La corrente CE è di circa 26 μA. La larghezza del picco è di circa 0,4-0,5 min. Assicurarsi che il rapporto segnale/rumore raggiunga almeno 400.</li>
</ol>3. Estrazione di fosfati solubili di inositolo da cellule di mammifero
NOTA: le celluleNIH HCT116 sono state un gentile regalo di Stephen Shears28. Le celluleUCL HCT116 provenivano dal Lab26 di Saiardi.
<ol><li>Celle di semina<ol><li>Coltura di cellule HCT116NIH o HCT116UCL in palloni T75 a 37 °C in atmosfera di CO2 ad alta umidità del 5% (di seguito denominate condizioni standard) nel terreno di coltura con aquila modificata (DMEM) di Dulbecco integrato con siero bovino fetale (FBS) al 10%.</li>
		<li>Lavare le colture madre HCT116NIH e HCT116UCL con soluzione salina tamponata fosfato (PBS) (5 ml) e incubare le cellule con acido tripsin-etilendiammina tetraacetico (EDTA) (3 ml, 0,25%) in condizioni standard fino a completo distacco. Spegnere l'attività della tripsina aggiungendo mezzo (7 ml), raccogliere le cellule in una provetta da centrifuga e centrifugare (200 x g, 3 min).</li>
		<li>Rimuovere il surnatante e risospendere le cellule in mezzo (10 ml). Contare le cellule e determinare la vitalità tramite l'esclusione del blu tripano.</li>
		<li>Seminare le cellule (6 milioni di cellule HCT116 per test) in un piatto da 150 mm e regolare 20 ml di terreno di coltura cellulare in totale. Premiscelare il terreno e le cellule in una provetta da centrifuga prima della semina per ottenere una distribuzione uniforme delle celle nel piatto. Preparare un piatto parallelo quando è richiesta la normalizzazione per numero di celle.</li>
		<li>Coltivare le cellule in condizioni standard per 72 ore. Le cellule raggiungeranno circa l'80% -90% di confluenza.</li>
	</ol></li>
	<li>Modulazione dei livelli di inositolo fosfato con NaF e raccolta cellulare<ol><li>Trattamento NaF: aggiungere NaF (10 mM) 1 ora prima della raccolta nel substrato. Mescolare il mezzo ruotando la piastra/pipettaggio e incubare le cellule per 60 minuti in condizioni standard.</li>
		<li>Dopo il trattamento NaF, rimuovere il mezzo dalle cellule e posizionare le cellule sul ghiaccio.</li>
		<li>Lavare le celle due volte con PBS (5 ml, 4 °C) e rimuovere completamente il PBS dal piatto.</li>
		<li>Aggiungere acido perclorico (PA) (1 mL, 1 M, 4 °C). Assicurarsi di coprire l'intera superficie con PA (le cellule diventeranno bianche quando le proteine precipitano). Incubare le cellule per 10 minuti su un tavolo inclinabile a 4 °C.</li>
		<li>Raccogliere il PA in una provetta da centrifuga e rimuovere i detriti contaminanti mediante centrifugazione (17.000 x g, 5 min, 4 °C). Aggiungi il surnatante alle perline TiO2 preparate per il pulldown di InsP.</li>
		<li>Lavare il piatto post-estrazione due volte con PBS (5 ml, t.r.) per la disacidificazione; rimuovere completamente PBS dal piatto.</li>
		<li>Solubilizzare le proteine sulla piastra mediante l'aggiunta di tampone di lisi cellulare (1,5 ml, r.t.; 0,1% di sodio dodecilsolfato [SDS] in 0,1 M NaOH). Incubare il piatto per 15 minuti su un tavolo inclinabile a r.t. Trasferire il lisato cellulare in una provetta da centrifuga e centrifugare (17.000 x g, 5 min, 4 °C). Conservare il surnatante a -80 °C fino a determinare la concentrazione proteica mediante il test della proteina DC utilizzando l'albumina sierica bovina come standard di calibrazione (di solito, un piatto da 150 mm contiene circa 10 mg di proteine).</li>
		<li>Determinazione del numero di cellule da piastre parallele: prelevare le cellule della piastra parallela tramite tripsina come descritto al punto 3.1.2 (utilizzare 5 mL di tripsina-EDTA per il piatto da 150 mm) e rimuovere il terreno. Risospendere il pellet cellulare in PBS (5 ml), mescolare correttamente e contare le cellule. Eseguire questo passaggio subito prima della raccolta tramite tempra diretta per ottenere conteggi cellulari rappresentativi. Inoltre, misurare il volume delle celle con un metodo appropriato (ad esempio, con una macchina multidimensionatore).</li>
	</ol></li>
	<li>TiO2 arricchimento dei fosfati di inositolo NOTA: Per evitare la decomposizione acida dei composti fosforilati, eseguire tutte le fasi di arricchimento fino all'eluizione su ghiaccio e raffreddare tutti i reagenti a 4 °C. Mantenere il tempo per l'estrazione al minimo (1,5-2 h). Eseguire tutte le fasi di estrazione con 1 M PA.<ol><li>Preparazione delle perle: lavare TiO 2 perle (5 mg per campione) con ddH2 O (1mL) e centrifugare (3.500 x g, 1 min, 4 °C). Rimuovere ddH2O e lavare le perline con PA (1 mL). Rimuovere PA mediante centrifugazione (3.500 x g, 1 min, 4 °C). Risospendere le perle in PA (50 μL per campione).</li>
		<li>Aggiungere il surnatante contenente composti fosforilati (confrontare paragrafo 3.2, punto 3.2.5) alla sospensione del tallone, al vortice, quindi ruotare il campione per 20 minuti a 4 °C.</li>
		<li>Centrifugare il campione (3.500 x g, 1 min, 4 °C) ed eliminare il surnatante. Lavare le perline con PA (500 μL) e centrifugare (3.500 x g, 1 min, 4 °C). Scartare il surnatante e ripetere la fase di lavaggio.</li>
		<li>Aggiungere NH4OH (200 μL, 3%) alle perline e risospendere. Ruotare il campione per 5 minuti a r.t.</li>
		<li>Centrifugare il campione (3.500 x g, 1 min) e trasferire il surnatante in una nuova provetta.</li>
		<li>Ripetere le fasi di eluizione 3.3.4 e 3.3.5 e combinare gli eluenti. Scartare le perline.</li>
		<li>Centrifugare gli eluenti combinati (17.000 x g, 1 min, 4 °C) per rimuovere eventuali residui insolubili.</li>
		<li>Asciugare completamente il surnatante sotto vuoto per evaporazione (70 min, 60 °C, V-AQ). Aggiungere ddH2O (50 μL) agli estratti secchi contenenti InsP. Vortice per mescolare il campione fino a completa dissoluzione. Conservare il campione a -20 °C fino all'analisi CE-ESI-MS.</li>
	</ol></li>
</ol>4. Esecuzione delle esecuzioni CE-ESI-MS
<ol><li>Preparare una miscela di standard interni contenenti 40 μM [13 C 6]1,5-(PP)2-InsP 4, 80 μM [13 C 6]5-PP-InsP 5, 80 μM [13 C 6]1-PP-InsP 5, 400 μM [13 C 6]InsP 6 e 400 μM [13C 6]Ins(1,3,4,5,6)P 5. Determinare le concentrazioni di soluzioni SIL IS mediante NMR quantitativa 31P e 1H, con l'ausilio di uno standard di riferimento certificato, ovvero l'acido fosfoacetico. NOTA: Tutti gli standard interni SIL (IS) di cui sopra con purezze superiori al 96% sono stati sintetizzati e forniti dal gruppo Fiedler15,27. Come con i nucleotidi, questi IS potrebbero trasportare molte molecole di acqua cristallina e diversi controioni. Invece di pesare la sostanza e calcolare la concentrazione, si raccomanda la determinazione della concentrazione di 13C6 soluzioni standard mediante NMR quantitativo 31P.</li>
	<li>Mescolare 10 μL del campione con 0,5 μL di miscela standard interna in un flaconcino di campione CE. 2 μM [13 C 6]1,5-(PP)2-InsP 4, 4 μM [13 C 6]5-PP-InsP 5, 4 μM [13 C 6]1-PP-InsP 5, 20 μM [13 C 6]InsP 6 e 20 μM [13C 6]Ins(1,3,4,5,6)P 5 sono le concentrazioni finali all'interno dei campioni.</li>
	<li>Quando si utilizza il sistema di rifornimento, fare clic sul pulsante Cambia bottiglia, inserire i 250 ml di tampone corrente CE preparati nella bottiglia di elettrolita e fare clic su Clean Tubes. Tenere l'ago di rifornimento in un flaconcino d'acqua.</li>
	<li>Impostare i parametri ESI e MS come mostrato nella Tabella 1. Ottimizzare i parametri di origine utilizzando un Source Optimizer con una miscela di standard di inositolo polifosfato. Ottieni le impostazioni di monitoraggio delle reazioni multiple (MRM) utilizzando Masshunter Optimizer con tutti gli standard. Regolare le impostazioni ESI e MS/MS per strumentazione diversa.</li>
	<li>Eseguire un'esecuzione per le estrazioni InsP e controllare il risultato (Figura 2). Impostare una sequenza quando sono presenti più campioni.</li>
	<li>Lasciare che l'MS sia in modalità standby dopo le misurazioni. Non spegnere la pompa LC. Il flusso di liquido della guaina protegge l'ago dello spruzzatore. Sostituire lo spruzzatore CE-ESI-MS con uno spruzzatore LC-ESI-MS quando non c'è alimentazione di liquido della guaina.</li>
</ol>5. Analisi dei dati
<ol><li>Aprire il software di analisi quantitativa (per QQQ), creare un batch per tutti i campioni.</li>
	<li>Creare un nuovo metodo dai dati di gestione record di messaggistica acquisiti. Impostare i [13C6]InsP come standard interni - (ISTD). Controllare l'impostazione del composto MRM, l'impostazione del tempo di ritenzione, l'impostazione dell'ISTD, l'impostazione della concentrazione e l'impostazione del qualificatore. Passare la convalida e uscire per applicare il metodo al batch corrente. Salvare il metodo.</li>
	<li>Verificare se ogni picco del batch è correttamente integrato; In caso contrario, integrare manualmente il picco.</li>
	<li>Esporta i risultati in un foglio di calcolo. Eseguire la quantificazione di inositolo (piro)fosfati confrontando la risposta di picco dell'analita con la rispettiva risposta di picco di SIL IS con concentrazioni note. Le curve di calibrazione teoriche e sperimentali sono mostrate nella Tabella 2 per 5-PP-InsP 5, InsP6 e Ins(1,3,4,5,6)P5 con l'intervallo lineare. NOTA: La condizione preliminare che applica la curva di calibrazione teorica è l'uso di un modello isotopico di alta qualità di analiti mirati e con concentrazione credibile. Valutare l'intervallo lineare. Una curva di calibrazione è essenziale per la quantificazione assoluta quando l'acquisizione completa degli standard isotopici sopra menzionati non è pratica.</li>
	<li>Con la concentrazione misurata nella soluzione di estratto InsP e il suo volume, calcolare le quantità assolute. Inoltre, normalizzare la quantità in base alla conta cellulare o al contenuto proteico. Calcolare la concentrazione cellulare in base alla conta cellulare e al volume cellulare medio di HCT116 (1,68 fL).</li>
</ol>

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</ol>

Gli autori non dichiarano interessi concorrenti.

Presentato qui è un metodo pratico e sensibile per la quantificazione di pirofosfati inositolo altamente caricato in cellule di mammifero. Combinando questo approccio di analisi con l'attuale estrazione InsP all'avanguardia con acido perclorico seguita da arricchimento con TiO2, l'analisi CE-ESI-MS presenta vantaggi senza precedenti. Per quanto riguarda il suo throughput, sensibilità, stabilità, quantificazione assoluta, identificazione degli isomeri e indipendenza dalla matrice, questo metodo si distingue rispetto ad altri approcci. Questo protocollo è applicabile alle cellule di mammifero, ma in effetti questa strategia ha successo in molti campioni diversi (ad esempio, lievito, piante, parassiti, tessuti di topo, ecc.).
Il protocollo di estrazione applicato recupera completamente PP-InsPs e InsP6 dagli estratti di cellule di mammifero16,19. Estrarrà anche molti altri metaboliti anionici, in particolare specie contenenti fosfati, ad esempio fosfati di zucchero e nucleotidi. Sarebbe necessaria una valutazione del recupero e della decomposizione per gli analiti dell'utente con questo protocollo.
Generalmente, il sistema CE-ESI-MS funziona senza intoppi e può ospitare circa 200 campioni ogni settimana utilizzando questo protocollo. A differenza dell'HPLC, tuttavia, la CE è stata considerata per lungo tempo un metodo per esperti e persone specializzate, il che ne ha limitato il mercato e ne ha limitato l'applicazione. Pertanto, un dispositivo CE-ESI-MS è solitamente assente nelle facoltà analitiche. Le persone che desiderano eseguire analisi CE-ESI-MS probabilmente non hanno esperienza CE e dedicheranno più tempo alla risoluzione dei problemi. Qui vengono evidenziati i passaggi critici. Prima di tutto è la qualità del taglio capillare. La sensibilità e la stabilità dello spray ESI si basano principalmente su un taglio capillare di prima classe. In secondo luogo, l'estremità di uscita capillare dovrebbe essere esattamente 0,1 mm dalla punta dello spruzzatore. L'ago dello spruzzatore e il capillare CE devono essere nella direzione assiale. La qualità dello spray ESI è fondamentale per la quantificazione; Le esecuzioni tecniche dovrebbero essere eseguite per valutare la ripetibilità. 
Con il protocollo descritto, il limite di quantificazione (LOQ) per PP-InsPs è 40 nM con un'iniezione a 50 mbar per 10 s (10 nL). Esistono diversi approcci per aumentare ulteriormente la sensibilità del metodo. In primo luogo, un'iniezione a 100 mbar per 20 s (40 nL) si tradurrà comunque in una buona forma di picco e in una risoluzione sufficiente per i regiisomeri 5-PP-InsP 5 e 1-PP-InsP5. In secondo luogo, gli estratti di InsP possono essere sciolti in una minore quantità di acqua. In terzo luogo, il tempo di permanenza potrebbe essere aumentato quando si utilizzano meno transizioni MRM per la quantificazione. Inoltre, una sorgente di ioni CE-MS che utilizza un flusso di liquido con guaina ultra-bassa aumenterebbe significativamente la sensibilità.
Il buffer di corsa CE con pH 9 fornisce la migliore risoluzione tra InsP6-InsP 8. Quando si aumenta il pH a 9,7, la risoluzione tra InsP3-InsP 6 migliorerà significativamente. Grazie all'eccellente risoluzione, si consiglia una lunghezza capillare più corta di 72 cm per aumentare ulteriormente la produttività. Inoltre, una temperatura della cassetta CE più elevata a 40 °C diminuisce la viscosità del tampone elettroforetico acquoso e accelera il loro movimento sotto EOF. In base alle diverse esigenze di ricerca, le modifiche di questo metodo possono facilitare ulteriormente l'analisi di InsP e PP-InsP. Pertanto, i protocolli CE-ESI-MS descritti hanno il potenziale di aprire nuove strade di ricerca in questa famiglia sfaccettata di molecole di segnalazione.

Dalla scoperta iniziale dei pirofosfati di mio-inositolo (PP-InsPs) nel 19931,2, sono stati compiuti progressi significativi per chiarire la loro biosintesi, fatturato e funzioni3. I pirofosfati di inositolo si trovano ubiquitariamente nelle cellule eucariotiche4 e servono come molecole di segnalazione metabolica criticamente coinvolte, ad esempio, omeostasi del fosfato 5,6, sensibilità all'insulina7, oscillazioni del calcio8,9, traffico vescicolare 10, apoptosi 11, riparazione del DNA 12, segnalazione immunitaria 13 e altri. La pletora di processi importanti sotto il controllo di inositolo pirofosfati richiede una comprensione più profonda della loro abbondanza cellulare, fluttuazione, e localizzazione.
Sebbene InsP e PP-InsP abbiano attirato l'attenzione in tutte le discipline, l'analisi della loro abbondanza viene eseguita di routine utilizzando un metodo sviluppato durante gli anni '80, consistente nella marcatura delle cellule con inositolo triziato, risolvendo i PP-InsP estratti mediante cromatografia a scambio anionico forte Sax-HPLC con successivo conteggio a scintillazione. I metodi più recenti basati sulla spettrometria di massa devono ancora affrontare sfide significative: i pirofosfati di inositolo con fino a otto unità di fosfato ospitano esteri fosfatici e anidridi, portando a una carica negativa significativa e potenziale perdita di fosfato durante la ionizzazione. Ci sono quattro tipi principali di PP-InsP trovati nei mammiferi (Figura 1): 1,5-(PP)2-InsP 4 (o 1,5-InsP8), 5-PP-InsP 5 (o 5-InsP 7), 1-PP-InsP 5 (o 1-InsP7) e 5-PP-Ins(1,3,4,6)P 4 (o5-PP-InsP 4)3,14. I livelli fisiologici di PP-InsP sono tipicamente nell'intervallo da nano a basso micromolare, con 5-PP-InsP 5 come il più abbondante con concentrazioni cellulari di 0,5 - 5 μM. 1,5-(PP) 2-InsP 4 e 1-PP-InsP 5 sono ritenuti fino a circa il 10% del pool 5-PP-InsP5 e rimangono difficili da rintracciare in molte cellule15. 5-PP-InsP4 con un gruppo OH libero è ancora più basso in abbondanza e di solito diventa rilevabile solo quando le idrolasi fosfato sono inibite con fluoruro di sodio (NaF)16.
L'elevata densità di carica dei PP-InsP rende difficile la loro separazione e la presenza di regiomiomi PP-InsP complica ulteriormente questi sforzi. Di conseguenza, la maggior parte degli esperimenti si basava sulla quantificazione mediante marcatura radioattiva metabolica delle cellule usando [3H]-inositolo, poiché lo sfondo dalla matrice è escluso e l'alta sensibilità è raggiunta17,18. Tuttavia, questo metodo è costoso, richiede tempo e non consente di distinguere correttamente i regioisomeri PP-InsP correlati. Inoltre, [3H]-inositolo etichettatura non tiene conto della sintesi endogena di inositolo dal glucosio. Un metodo basato sull'elettroforesi su gel di poliacrilammide (PAGE) è un'alternativa economica ampiamente applicata, ma limitata nella sua sensibilità 19,20,21,22. Sono stati pubblicati altri approcci che evitano la radiomarcatura, tra cui la cromatografia ionica seguita dalla derivatizzazione post-colonna UV-detection23, la cromatografia di interazione idrofila (HILIC)24 o lo scambio anionico debole (WAX) accoppiato con spettrometria di massa (MS)25. Tuttavia, non sono (ancora) alla pari con il classico protocollo [3H]-inositolo SAX-HPLC.
Recentemente, la spettrometria di massa a ionizzazione elettrospray per elettroforesi capillare (CE-ESI-MS) è stata introdotta come strategia trasformativa per l'analisi del metabolismo di InsP e PP-InsPs, soddisfacendo tutti i requisiti discussi sopra16. In combinazione con l'attuale estrazione di InsP all'avanguardia mediante acido perclorico seguita da arricchimento con perle di biossido di titanio26, CE-ESI-MS ha avuto successo in ogni organismo testato finora, dal lievito alle piante e ai mammiferi. La profilazione simultanea di InsP e PP-InsP, compresi tutti i possibili regioisomeri, è stata facilmente raggiunta. Gli standard interni stabili marcati con isotopi (SIL) hanno consentito una quantificazione assoluta rapida e precisa, indipendentemente dagli effetti della matrice. Poiché la SM può catturare le differenze di massa isotopica, CE-ESI-MS può anche essere applicato per studiare le vie di sintesi cellulare compartimentate di InsPs e PP-InsP, ad esempio, alimentando le cellule con [13 C 6]-mio-inositolo o [13C6]-D-glucosio.
Qui è descritto un protocollo dettagliato passo-passo per la quantificazione assoluta di PP-InsP e InsP da cellule di mammifero mediante CE-ESI-MS. Oltre al principale isomero 5-PP-InsP 5, in questo studio sono quantificati anche 1,5-(PP)2-InsP4 e 1-PP-InsP5, nonostante la loro minore abbondanza. Vengono studiate due linee cellulari HCT116 provenienti da diversi laboratori (NIH, UCL) ed è convalidato che le cellule HCT116UCL contengono livelli 7 volte superiori di 1,5-(PP)2-InsP 4 rispetto a quelli trovati in HCT116NIH, mentre le concentrazioni di 5-PP-InsP5 sono comparabili. Inoltre, la sintesi di 1-PP-InsP5 in HCT116UCL non è significativamente aumentata. Inoltre, l'aumento dei livelli di PP-InsP bloccando la loro defosforilazione con fluoruro di sodio viene studiato quantitativamente.

<table><tbody><tr><td>Materiali</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1,5 mL Provette per microcentrifuga</td><td>Greiner Bio-One</td><td></td> <td>616201-15</td></tr> <tr><td>cm Provette</td> per microcentrifuga <td>Thermo Fisher</td> <td>168381-2,0</td><td></td></tr> <tr><td>mL</td><td>Greiner Bio-One</td><td>Provette</td> per centrifuga Greiner Bio-One <td>623201-50</td></tr> <tr><td>mL</td><td>Greiner Bio-One</td><td>Piastre da</td> <td>227261-96</td></tr> <tr><td>pozzetti</td><td>Thermo Fisher</td><td>260836</td><td>per il test delle proteine DC</td></tr> CE <tr><td>silice fusa capillare</td><td>CS Cromatografia</td><td>105180</td><td>50 &; M i.d. 360 &micro; M o.d.</td></tr><tr><td>Puntali per pipette</td><td>Starlab</td><td>I1054-0001, S1111-6701, S1113-1700, S1111-3700</td><td>10 mL, 1000 & micro; L, 200 & micro; L, 10 & micro; Pipette</td></tr><tr><td>sierologiche</td><td>TPP</td><td>94550, 94525, 94010, 94005</td><td>50 mL, 25, mL, 10 mL, 5 mL pipette sierologiche</td></tr><tr><td>Palloni T75</td><td>TPP</td><td>90076</td><td>-</td></tr><tr><td>Chemicals and Reagents</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>AppliChem</td><td>A6829,0500</td><td>pellet di idrossido di sodio per biologia molecolare, per la preparazione di cellule tampone di lisi</td></tr><tr><td>0,25% tripsina-EDTA</td><td>Gibco</td><td></td> <td>25200056-Acetato</td></tr> di <tr><td>ammonio</td><td>Thermo Fisher</td><td>1677373</td><td>grado HPLC</td></tr><tr><td>BSA</td><td>Thermo Fisher</td><td>23209</td><td>albumina standard (2,0 mg/mL) per la preparazione di curve standard</td></tr><tr><td>Saggio delle proteine DC</td><td>Biorad</td><td>5000116</td><td>Pacchetto di reagenti per il dosaggio delle proteine</td></tr><tr><td>DC DMEM</td><td>Gibco</td><td>41966029</td><td>alto glucosio, piruvato</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco</td><td>10270106, 10500064 (inattivato termicamente)</td><td>10270106 per HCT116UCL, 10500064 per HCT116NIH</td></tr><tr><td>Isopropanolo</td><td>Carl Roth</td><td>AE73.2</td><td>99,95% LC-MS grado</td></tr><tr><td>NH4OH, 10%</td><td>Carl Roth</td><td>6756.1</td><td>per la preparazione di 3% NH4OH</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td></td> <td>10010015-Acido</td></tr> <tr><td>perclorico, 70%</td><td>Carl Roth</td><td>9216.1</td><td>per la preparazione di acido perclorico 1 M</td></tr><tr><td>SDS</td><td>SERVA</td><td>20760.02</td><td>per la preparazione di tampone di lisi cellulare</td></tr><tr><td>Fluoruro di sodio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7920-TiO</td><td></td></tr><tr><td>2 perline</td><td>GL Sciences</td><td>5020-75000</td><td>5 &micro; m granulometria</td></tr><tr><td>Soluzione blu di tripano</td><td>Gibco</td><td>15250061</td><td>Macchia blu di tripano (0,4%)</td></tr><tr><td>Acqua ultrapura (Tipo 1)</td> Modello <td>di ZRQSVP3WW</td><td>Milli-Q</td><td>: Direct-Q 3 UV Sistema di purificazione dell'acqua</td></tr><tr><td>Equipment</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bilancia analitica</td><td>Modello di 30105893 Mettler Toledo</td><td></td><td>: XPE26; per la pesatura di perle ( 5-6 mg per campione)</td></tr><tr><td>Contatore di cellule automatizzato</td><td>Logos Biosystems</td><td>L40002</td><td>modello: LUNA-II Centrifuga da banco per contatore di cellule automatizzato</td></tr><tr><td></td><td>Hettich</td><td>1401</td><td>: UNIVERSAL 320</td></tr><tr><td>Centrifuga da banco con raffreddamento</td><td>VWR</td><td>521-1647P</td><td>modello: Sistema CE Microstar 17R</td></tr><tr><td></td><td>Kit adattatore Agilent</td><td>G7100A-CE</td><td></td></tr><tr><td>/MS</td><td></td> Kit spruzzatore <td>G1603A-CE</td><td></td></tr><tr><td>/MS</td><td>Agilent</td><td>G1607A-Vetrini</td><td></td></tr> <tr><td>per conteggio cellulare</td><td>Logos Biosystems</td><td>L12001</td><td>LUNA Vetrini per conteggio cellule</td></tr><tr><td>Evaporatore centrifugo</td><td>Eppendorf</td><td>5305000304</td><td>modello: Concentratore più sistema completo</td></tr><tr><td>Fonte ESI</td><td>Agilent</td><td>AJS ESI-Super</td><td></td></tr> <tr><td>Support Film</td><td>Nisshin EM Co. Ltd, Tokyo</td><td>647</td><td></td></tr><tr><td>Incubatrice umidificata</td><td>Raccoglitore</td><td>9040-0088</td><td>modello: CB E6.1, per la coltivazione di cellule di mammifero</td></tr><tr><td>Ghiacciaia</td> <td>-</td><td></td> <td>dovrebbe fornire spazio sufficiente per campioni, piatti, ecc.</td></tr><tr><td>Sistema LC isocratico</td><td>Agilent</td><td>G7110B 1260 Iso</td><td>Pompa modello: Infinity II Sistema quaternario</td></tr><tr><td>MSD</td><td>Agilent</td><td>G6495C</td><td>triplo quadrupolo</td></tr><tr><td>Lettore multipiastra</td><td>Tecan</td><td>30086375</td><td>modello: SPARK 10 M</td></tr><tr><td>Riempitrice per pipette</td><td>Thermo Fisher</td><td>10072332</td><td>per pipette sierologiche</td></tr><tr><td>Pipette</td><td>Marca</td><td>705884, 705880, 705878, 705872, 705870</td><td>pipette varie</td></tr><tr><td>Rotator</td><td>Labnet</td><td>H5500</td><td>modello: Mini LabRoller Rotator</td></tr><tr><td>Shortix taglierina a colonna capillare</td><td>SGT</td><td>S0020-Agitatore</td><td></td></tr> <tr><td>per provette (miscelatore a vortice)</td><td>Carl Roth</td><td>HXH6.1</td><td>modello: Rotilabo-Mini Vortex</td></tr><tr><td>Tilt table</td><td>Labnet</td><td>S0600</td><td>modello: EDURO MiniMix Nutating Mixer</td></tr><tr><td>Bagno d'acqua</td><td>Thermo Modello</td><td>Fisher FSGPD05</td><td>: Isotemp GPD 05</td></tr><tr><td>Software</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MassHunter Workstation</td><td>Agilent</td><td>Versione 10.1-MassHunter</td><td></td></tr> <tr><td>Workstation LC/MS Acquisizione dati</td><td>Agilent</td><td>Versione 10.1-MassHunter</td><td></td></tr> <tr><td>Workstation Optimizer</td><td>Agilent</td><td>Versione 10.1</td><td>-</td></tr><tr><td>Analisi qualitativa della workstation MassHunter</td><td>Agilent</td><td>versione 10.0-QQQ</td><td></td></tr> <tr><td>Analisi quantitativa</td><td>Agilent</td><td>versione 10.1</td><td>-</td></tr></tbody></table>

quantificazione assoluta di inositolo pirofosfati mediante elettroforesi capillare elettrospray ionizzazione spettrometria di massa

Absolute Quantitation of Inositol Pyrophosphates by Capillary Electrophoresis Electrospray Ionization Mass Spectrometry

Inositolo pirofosfati (PP-InsP) sono un importante gruppo di molecole di segnalazione intracellulare. Derivate da fosfati di inositolo (InsP), queste molecole presentano la presenza di almeno una porzione di pirofosfato energetico sull'anello myo-inositolo. Esistono ovunque negli eucarioti e operano come messaggeri metabolici che esaminano l'omeostasi del fosfato, la sensibilità all'insulina e la carica energetica cellulare. A causa dell'assenza di un cromoforo in questi metaboliti, di una densità di carica molto elevata e di una bassa abbondanza, la loro analisi richiede un tracciante radioattivo, e quindi è contorta e costosa. Qui, lo studio presenta un protocollo dettagliato per eseguire la quantificazione assoluta e ad alto rendimento di pirofosfati di inositolo da cellule di mammifero mediante elettroforesi capillare elettrospray ionizzazione spettrometria di massa (CE-ESI-MS). Questo metodo consente la profilazione sensibile di tutte le specie di PP-InsP biologicamente rilevanti nelle cellule di mammifero, consentendo la separazione basale dei regioisomeri. Vengono presentate le concentrazioni cellulari assolute di PP-InsP, inclusi gli isomeri minori, e il monitoraggio dei loro cambiamenti temporali nelle cellule HCT116 in diverse condizioni sperimentali.

I risultati qui riportati mirano a illustrare il potenziale dell'analisi CE-ESI-MS. Le cifre riportate sono descrittive di una corsa CE-ESI-MS tecnicamente impeccabile. In primo luogo, viene presentata una miscela di standard di inositolo pirofosfato (Figura 1) e un estratto di cellule di mammifero (Figura 2). In secondo luogo, viene fornito un confronto tra due linee cellulari HCT116 (Figura 3) e cellule HCT116 trattate con NaF (Figura 4).
Gli elettroferogrammi ionici estratti (EIE) degli standard di inositolo (piro)fosfato ad una concentrazione di 2 μM sono mostrati nella Figura 1. Viene inserito il metabolismo dei pirofosfati di inositolo nei mammiferi con le loro strutture semplificate. I quattro pirofosfati di inositolo nei mammiferi, 1,5-(PP)2-InsP 4, 5-PP-InsP 5, 1-PP-InsP 5, e5-PP-Ins(1,3,4,6)P4 sono ben distinti usando il metodo descritto. Una serie CE-ESI-MS di HCT116UCL è illustrata nella Figura 2. Con l'aiuto di standard interni marcati con isotopi stabili (SIL), una quantificazione assoluta può essere facilmente ottenuta confrontando la risposta del segnale con il SIL spiked-in di concentrazione nota. Vengono visualizzati gli EIE integrati del fosfato di inositolo da InsP5 a (PP) 2-InsP 4 e gli EIE non integrati dei loro modelli isotopici. Gli RSD di tutti gli analiti di sei ripetizioni tecniche sono entro il 4%. Con la concentrazione misurata e il volume degli estratti, è possibile calcolare la quantità di analiti. Con la conta cellulare e il volume cellulare, o contenuto proteico, la concentrazione cellulare assoluta (μM) o la quantità normalizzata dal contenuto proteico (pmol / mg di proteine) sono comunemente i risultati finali di tale analisi.
Secondo uno studio precedente, due lotti di cellule HCT116 divergenti hanno una variazione dei livelli di InsP 8, le cellule HCT116UCL contengono livelli 6 volte superiori di InsP8 rispetto alle cellule HCT116NIH 29. Con il metodo CE-MS, 1,5-(PP)2-InsP 4 in HCT116 NIH potrebbe essere facilmente quantificato (Figura 3), e le cellule HCT116UCL contengono livelli 7 volte superiori di InsP8 rispetto a HCT116NIH. Inoltre, un accumulo significativo di 1,5-(PP)2-InsP 4 nelle cellule HCT116UCL è parallelo a un aumento significativo di 1-PP-InsP5, che è ora mostrato quantitativamente nella Figura 3.
I livelli di PP-InsPs aumentano inibendo la loro defosforilazione con fluoruro di sodio. L'analisi CE-ESI-MS delle cellule HCT116NIH trattate con NaF ha dimostrato l'elevazione di -5-PP-InsP 5 insieme a una riduzione di InsP 6 e una comparsa di 5-PP-Ins(1,3,4,6)P 4 (Figura 4). Inoltre, l'elevazione dei livelli di InsP8 è evidente, mentre 1-PP-InsP5 diminuisce in una certa misura. 1-PP-InsP5 non è completamente assente in HCT116NIH trattato con NaF, ma per lo più sotto il limite di rilevazione o quantificazione.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62847/62847fig01.jpg"> Figura 1: Tipici elettroferogrammi ionici estratti (EIE) degli standard di inositolo (piro)fosfato nell'analisi CE-ESI-MS utilizzando il protocollo descritto. La concentrazione di ciascun analita è di 2 μM. Il volume del campione iniettato è di circa 10 nL con un'iniezione a 50 mbar per 10 s. Gli inserti mostrano il metabolismo dei pirofosfati di inositolo nei mammiferi. IPPK: inositolo pentakisphosphate 2-chinasi, IP6K: inositolo esakisfosfato chinasi, PPIP5K: difosfoinositolo pentakisfosfato chinasi, DIPP1: difosfoinositolo polifosfato fosfoidrolasi 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62847/62847fig01large.jpg" target="_blank">Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62847/62847fig02.jpg"> Figura 2: Profilo rappresentativo InsP delle cellule HCT116 UCL. (A) EIE dei principali inositolo (piro)fosfati in HCT116 NIH e SIL ISs a spillo 2 μM [13 C 6]1,5-(PP)2-InsP 4 (1), 4 μM [13 C 6]5-PP-InsP 5 (2), 4 μM [13 C 6]1-PP-InsP5 (3), 20 μM [13C 6]InsP 6 (4), e 20 μM [13C 6]Ins(1,3,4,5,6)P 5 (5). Gli inserti mostrano sei ripetizioni tecniche dell'analisi InsP mediante CE-ESI-MS, i dati sono presentati come mezzi ± SD. (B) Concentrazione cellulare di PP-InsPs e InsPs nelle linee cellulari umane HCT116UCL e (C) PP-InsPs e InsPs quantità normalizzata dal contenuto proteico. I dati sono mezzi ± SEM da tre esperimenti indipendenti. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62847/62847fig02large.jpg" target="_blank">Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62847/62847fig03.jpg"> Figura 3: Variazione dei livelli di InsP8 tra due cellule HCT116 divergenti. (A) EIE di inositolo pirofosfato in HCT116 UCL e HCT116NIH. InsP8 in HCT116UCL è marcatamente più abbondante che in HCT116NIH. (B) Rapporto tra inositolo pirofosfato e InsP6 (%) in entrambe le cellule HCT116. Le cellule HCT116UCL contengono livelli 7 volte superiori di InsP8 rispetto a HCT116NIH, mentre i livelli 5-PP-InsP5 sono uguali. I dati sono mezzi ± SEM da tre esperimenti indipendenti. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62847/62847fig03large.jpg" target="_blank">Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/62847/62847fig04.jpg"> Figura 4: Livelli di inositolo (piro)fosfato nelle cellule HCT116NIH, con trattamento NaF. (A) EIE di inositolo (piro)fosfato in HCT116NIH con trattamento con fluoruro di sodio (NaF, 10 mM). I livelli di inositolo pirofosfato tra cui 1,5-(PP) 2-InsP 4, 5-PP-InsP 5, e 5-PP-Ins (1,3,4,6) P 4 aumentano bloccando la loro defosforilazione usando NaF. (B) Livelli di inositolo (piro) fosfato (le quantità sono normalizzate dal contenuto proteico) nelle cellule HCT116NIH non trattate e trattate con NaF. I dati sono mezzi ± SEM da tre esperimenti indipendenti. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62847/62847fig04large.jpg" target="_blank">Fare clic qui per visualizzare una versione ingrandita di questa figura.</a>
Tabella 1: impostazioni dei parametri CE-ESI-MS. I parametri Source e iFunnel sono ottimizzati da Source e iFunnel Optimizer. Le impostazioni dei parametri MSM per inositolo (piro) fosfati sono ottimizzate da MassHunter Optimizer. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62847/Table1.xlsx" target="_blank">Clicca qui per scaricare questa tabella.</a>
Tabella 2: Equazione di regressione teorica e sperimentale. La concentrazione di [13 C 6]5-PP-InsP 5 [13 C 6]InsP 6 e [13C 6]Ins (1, 3, 4, 5, 6)P5 è rispettivamente di 4 μM, 20 μM e 20 μM. Per l'equazione di regressione, la concentrazione di 5-PP-InsP 5 è a 0,04 μM, 0,1 μM, 0,2 μM, 0,4 μM, 1 μM, 2 μM, 4 μM, 8 μM, 16 μM, 24 μM. La concentrazione di InsP 6 e Ins (1, 3, 4, 5,6)P 5 è a 0,2 μM, 0,5 μM, 1 μM, 2 μM,5 μM, 10 μM, 20 μM, 40 μM, 80 μM, 120 μM. x è la concentrazione, y è (Area InsP)12C/(Area InsP)13C. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/62847/Table%202.xlsx" target="_blank">Clicca qui per scaricare questa tabella.</a>

Viene descritta una procedura per elettroforesi capillare elettrospray ionizzazione spettrometria di massa per la quantificazione assoluta di inositolo pirofosfati da estratti di cellule di mammifero.

Quantificazione assoluta di inositolo pirofosfati mediante elettroforesi capillare Elettrospray ionizzazione spettrometria di massa

Inositol pyrophosphates (PP-InsPs) are an important group of intracellular signaling molecules. Derived from inositol phosphates (InsPs), these molecules ...

Questo fornisce risultati di alta qualità per il metabolismo del fosfato di inositolo in tutti gli organismi che abbiamo testato finora. Fornirà anche informazioni sul nuovo percorso biosintetico cellulare di cui siamo attualmente a conoscenza. Analisi del metabolismo dell'inositolo fosfato mediante CE-ESI-MS è più veloce, altamente sensibile, e in grado di fornire informazioni sulla struttura per gli assemblaggi di inositolo fosfato.Per iniziare, impostare un sistema di spettrometria di massa a ionizzazione elettrospray per elettroforesi capillare o CE-ESI-MS costituito da un sistema CE commerciale e uno spettrometro di massa tandem a triplo quadrupolo, dotato di una sorgente ESI Agilent Jet Stream. Quindi, collegare lo splitter 1:100 del flusso della guaina e l'uscita della pompa per cromatografia liquida isocratica e assicurarsi che il flaconcino di ingresso del sistema CE si trovi alla stessa altezza della punta dello spruzzatore dell'analizzatore di massa. Quindi, utilizzare la versione MassHunter Workstation o un software MS simile, per controllare l'intero sistema e l'acquisizione e l'analisi dei dati.Dopo aver preparato il tampone di funzionamento CE e il liquido della guaina, installare il liquido della guaina spurgandolo a cinque millilitri al minuto per cinque minuti. Quindi impostare la portata su un millilitro al minuto e la pressione della pompa su 180 bar. Assicurarsi che il tubo riciclato si colleghi nuovamente alla bottiglia del liquido della guaina per riutilizzare il solvente.Successivamente, utilizzando una fresa a colonna capillare con un disco diamantato rotante, tagliare correttamente entrambe le estremità di un capillare CE-MS con una finestra di rilevamento UV. Quindi rimuovere da due a tre centimetri di rivestimento in poliimmide su entrambe le estremità con un accendino e pulire la superficie capillare con isopropanolo. Per installare il capillare, abbinare il capillare nella cassetta CE-MS.Quindi fare clic sul pulsante Cambia cassetta e installare la cassetta nel dispositivo CE. Per attivare il capillare, lavare prima il capillare con un idrossido di sodio molare, seguito da acqua per 10 minuti, quindi tampone CE per 15 minuti. Quindi, inserire il capillare nello spruzzatore CE-MS.Utilizzando una lente d'ingrandimento e la vite di regolazione nello spruzzatore, regolare con precisione l'uscita capillare, assicurandosi che l'estremità capillare sporga di circa 0,1 millimetri dalla punta dello spruzzatore. Verificare la stabilità dello spruzzatore ESI in modalità Scansione completa. La fluttuazione degli elettroferogrammi ionici totali dovrebbe essere entro il 5% Quindi, eseguire un test con standard di inositolo fosfato.Dopo aver preparato la miscela di standard interni, mescolare 10 microlitri del campione con 0,5 microlitri della miscela di standard interni e un flaconcino di campione CE. Quando si utilizza il sistema di rifornimento, fare clic sul pulsante Cambia bottiglia. Mettere i 250 millilitri preparati di tampone di funzionamento CE nella bottiglia dell'elettrolita.Quindi fare clic su Clean Tubes mantenendo l'ago di rifornimento in una fiala d'acqua. Impostare i parametri ESI e MS. Quindi ottimizzare i parametri di origine utilizzando un ottimizzatore di origine con una miscela di standard di inositolo polifosfato e più impostazioni di monitoraggio delle reazioni utilizzando MassHunter Optimizer con tutti gli standard.Successivamente, eseguire una corsa per gli estratti di fosfato di inositolo e controllare i risultati. Impostare una sequenza quando sono presenti più campioni. Dopo la misurazione, lasciare che la MS sia in modalità standby e non spegnere la pompa per cromatografia liquida.Sostituire lo spruzzatore CE-ESI-MS con uno spruzzatore LC-ESI-MS quando non c'è alimentazione di liquido della guaina. Per l'analisi dei dati, aprire il software di analisi quantitativa e creare un batch per tutti i campioni. Successivamente, creare un nuovo metodo dai dati di monitoraggio delle reazioni multiple acquisiti e impostare i fosfati di inositolo di carbonio-13 come standard interni.Quindi, controllare il composto di monitoraggio delle reazioni multiple, il tempo di ritenzione, gli standard interni, la concentrazione e la configurazione del qualificatore. Passare Validation and Exit per applicare il metodo al batch corrente. Salvare il metodo.Quindi verificare se ogni picco nel batch è integrato correttamente. In caso contrario, integrare manualmente il picco. Esportare i risultati in un foglio di calcolo e quantificare i pirofosfati di inositolo, confrontando la risposta di picco dell'anolyte con la rispettiva risposta di picco degli standard interni marcati con isotopi stabili con concentrazioni note.Infine, con la concentrazione misurata nel fosfato di inositolo, estrarre la soluzione e il suo volume, calcolare le quantità assolute e normalizzare ulteriormente la quantità per conteggio delle cellule o contenuto proteico. Calcolare la concentrazione cellulare in base alla conta cellulare e al volume medio delle cellule HCT116. Gli elettroferogrammi ionici estratti di inositolo pirofosfato standard ad una concentrazione di due micromoli sono mostrati qui.Viene inserito il metabolismo dei pirofosfati di inositolo nei mammiferi con le loro strutture semplificate. Una serie CE-ESI-MS di cellule HCT116 dell'University College di Londra o UCL è mostrata qui. CE-MS è stato utilizzato per quantificare la variazione dei livelli di IP8 tra le cellule HCT116 di UCL e quelle di NIH.Le celle HCT116 di UCL contengono livelli sette volte superiori di IP8 rispetto a quelli di NIH. L'accumulo significativo di 1, 5-IP8 nelle celle HCT116 UCL è parallelo a un notevole aumento di 1-IP7. L'analisi CE-ESI-MS di cellule HCT116 trattate con fluoruro di sodio da NIH ha dimostrato un aumento di 5-IP7, insieme a una riduzione di IP6 e un aspetto di 5-PPIP4.Sebbene i livelli di 1-IP7 siano diminuiti in una certa misura, non è completamente assente nelle cellule trattate con fluoruro di sodio, ma per lo più sotto il limite di rilevazione. È importante formare un grado CE-ESI-MS stabile. Si consiglia di verificare la ripetibilità e la sensibilità del sistema prima delle misurazioni.Questa tecnica consente di fornire metabolismo del fosfato di inositolo, impianti e tessuti, e forniscono anche l'opportunità di studiare da vicino il pirofosfato di inositolo biologicamente rilevante.

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Descriviamo un nuovo metodo quantitativo per l'identificazione lipidomica numerose specie lipidico nel lievito con sondaggio-scan ionizzazione elettrospray spettrometria di massa (ESI / MS). Questo metodo supera attualmente i metodi disponibili per l'identificazione e la quantificazione dei lipidi nella capacità di risolvere le varie forme molecolari dei lipidi, la sensibilità e la velocità.

Una valutazione quantitativa del Lipidome lievito con ionizzazione Electrospray Spettrometria di massa

Pirofosfati inositolo svolgono un ruolo importante nelle patologie umane come il cancro, il diabete e l'obesità, ma l'esatto meccanismo d'azione è una questione di controversia. La mancanza di pirofosfati inositolo disponibili in commercio rende studi dettagliati problematico. Qui descriviamo un semplice protocollo per la produzione e isolare milligrammi di pirofosfati inositolo.

Preparazione di Qualità pirofosfati Inositolo

Fosfoinositidi stanno segnalando lipidi la cui abbondanza relativa cambia rapidamente in risposta a vari stimoli. Questo articolo descrive un metodo per misurare l'abbondanza di fosfoinositidi dalle cellule metabolicamente marcatura con 3 H- myo-inositolo, seguita da estrazione e deacilazione. Estratti glycero-inositides sono quindi separati mediante cromatografia liquida ad alta prestazione e quantificati dal flusso scintillazione.

Radiomarcatura e quantificazione dei livelli cellulari di fosfoinositidi da alte prestazioni cromatografia liquida accoppiata flusso scintillazione

Un protocollo per profili metabolici di campioni biologici da elettroforesi capillare-spettrometria di massa con un design di interfaccia punta porosa guaina è presentato.

Guaina elettroforesi capillare-spettrometria di massa per metaboliche Profiling di campioni biologici

Messa a fuoco isoelettrica capillare è una tecnica di basati su anticorpi, ultrasensibile, alta velocità di trasmissione, consentendo la dettagliata caratterizzazione delle proteine e loro isoforme da campioni biologici estremamente piccoli. Di seguito viene descritto un protocollo per il rilevamento e la quantificazione delle proteine specifiche e loro isoforme in modo automatizzato e robotizzato.

Rilevamento altamente sensibile e quantitativo delle proteine e loro isoforme dal metodo di messa a fuoco isoelettrica capillare

Questo protocollo si concentra sull'identificazione delle proteine che si legano ai fosfati inositoli o fosforoparassiti. Utilizza la cromatografia di affinità con fosfati inositoli biotinylati o fosforostostodi che vengono immobilizzati tramite streptavidin a agarose o perline magnetiche. Le proteine leganti al fosfato o fosfoinosazione sono identificate da gonfiore occidentale o spettrometria di massa.

Identificazione delle proteine che interagiscono con fosfato inositolo o fosfonositide mediante matricografia affinità accoppiata a Blot occidentale o spettrometria di massa

Qui descriviamo una forte cromatografia liquida ad alte prestazioni di [3H]-piantineetichettate myo-inositol che è un metodo altamente sensibile per rilevare e quantificare i polifosfati inositolo nelle piante.

Estrazione e quantificazione di Polifosfati Inostoti a inositolo radioeti da diverse specie vegetali che utilizzano SAX-HPLC

Presentiamo un protocollo per identificare e quantificare i componenti in miscele di specie che possiedono proteine simili. La spettrometria di massa rileva i peptidi per l'identificazione e fornisce una quantificazione relativa in base ai rapporti delle aree di picco. Come strumento alimentare per il rilevamento delle frodi, il metodo può rilevare l'1% di cavallo nella carne bovina.

Specie determinazione e la quantificazione in miscele Utilizzando MRM Spettrometria di massa dei peptidi applicata per l&#39;autenticazione a base di carne

Qui, presentiamo un protocollo completo di elettroforesi della zona capillare per la valutazione dell'eterogeneità fisico-chimica intrinseca degli anticorpi monoclonali come attributo di qualità.

Elettroforesi capillare Separazione di anticorpo monoclonale Isoforme Utilizzando un capillare Neutral

flessibilità conformazionale gioca un ruolo critico nella funzione delle proteine. Qui, si descrive l'utilizzo di spettrometria di massa elettrospray ionizzazione tempo risolto accoppiato a scambio idrogeno-deuterio per sondare i rapidi cambiamenti strutturali che guidano funzione di proteine ​​ordinate e disordinate.

Scambio risolta in tempo ionizzazione elettrospray idrogeno-deuterio Spettrometria di Massa per lo studio delle proteine ​​Struttura e dinamica

Scopri la quantificazione assoluta di inositolo pirofosfati mediante elettroforesi capillare ESI-MS in estratti cellulari mammiferi. Questo metodo rapido e sensibile permette di analizzare il metabolismo dei fosfati di inositolo con elevata ripetibilità.

Quantificazione assoluta di inositolo pirofosfati mediante elettroforesi capillare Elettrospray ionizzazione spettrometria di massa (Video) | JoVE Journal

Quantificazione assoluta di inositolo pirofosfati mediante elettroforesi capillare Elettrospray ionizzazione spettrometria di massa

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