Name: Approvvigionamento di recupero rapido polmonare combinato con perfusione regionale normomica addominale nella donazione controllata dopo morte circolatoria (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-08-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 54 s
Description: Impara la tecnica di recupero polmonare rapido con raffreddamento combinata alla perfusione regionale normomica addominale per la donazione controllata dopo morte circolatoria. Questo metodo sicuro espande il pool di donatori e riduce i danni ischemici.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Gli autori riconoscono tutti i membri coinvolti nel programma di trapianto polmonare presso l'ospedale universitario Marqués de Valdecilla.

Questi interventi sono intrapresi al capezzale dell'unità di terapia intensiva (ICU). Questo protocollo segue le linee guida del comitato etico dell'Ospedale universitario Marqués de Valdecilla ed è conforme al quadro giuridico spagnolo in materia di procedure di donazione. Il consenso informato è stato ottenuto dai parenti più prossimi per la registrazione video delle procedure per la ricerca. La cDCD è considerata nei pazienti con danno cerebrale catastrofico o un cuore terminale o una malattia neurodegenerativa per i quali è stata presa la decisione di sospendere la terapia di sostegno vitale (WSLT). I criteri di esclusione e la valutazione polmonare sono gli stessi dei donatori di morte cerebrale (Tabella 1).
1. Interventi premortem nel donatore
<ol><li>Eparinizzazione: somministrare per via endovenosa un bolo di 300-500 UI/kg di eparina al donatore.</li>
	<li>Incannulamento NOTA: L'incannulamento viene eseguito dal chirurgo cardiovascolare ed è una procedura sterile.<ol><li>Preparare un tavolo di strumentazione sterile, con tutte le attrezzature necessarie (kit ECMO e strumenti chirurgici), nonché l'elettrocauterizzazione e il sistema di aspirazione.</li>
		<li>Preparare un campo chirurgico sull'inguine selezionato con soluzione disinfettante e teli sterili.</li>
		<li>Fare un'incisione longitudinale di 8-10 cm con una lama n. 23, controllando il sanguinamento con elettrocauterizzazione e clip Liga. Separare i bordi della ferita con un divaricatore e procedere con la dissezione per esporre l'arteria femorale e la vena. Abbracciare entrambi i vasi con anelli vascolari per il controllo del sanguinamento.</li>
		<li>Selezionare i diametri della cannula appropriati in base alle dimensioni del recipiente e abbastanza grandi da fornire un flusso sufficiente per la perfusione degli organi e per prevenire problemi di basso flusso (di solito 21 francese).</li>
		<li>Cannulare la vena femorale, introducendo prima un filo metallico come guida, seguito da dilatatori progressivi per introdurre infine la cannula. Se si osserva sanguinamento, eseguire una sutura di corda di borsa in polipropilene peri cannula 4-0 per il controllo.</li>
		<li>Procedere allo stesso modo con l'arteria femorale, utilizzando in questo caso una cannula a doppio lume.</li>
		<li>Tagliare un pezzo di 10 cm della linea di ingresso ECMO. Inserire un connettore dritto con un lucchetto Luer con un rubinetto a tre vie assemblato a un'estremità del pezzo e collegare l'altra estremità del pezzo alla cannula arteriosa (Figura 1).</li>
		<li>Eliminare le linee ECMO. Utilizzare una pera di irrigazione con soluzione salina per riempire le linee mentre si collega con cannule. Collegare la linea ECMO di uscita alla cannula venosa e la linea ECMO di ingresso al connettore dritto con il rubinetto di arresto a tre vie precedentemente assemblato alla cannula arteriosa. Il rubinetto di arresto a tre vie può essere utilizzato per lo spurgo del sistema (Figura 2).</li>
		<li>Mantenere le linee ECMO bloccate. Fissare entrambe le cannule all'inguine con suture di seta taglia 1 per evitare lo spostamento durante il trasferimento.</li>
		<li>Posizionare una linea di pressione monitorata nella cannula dell'arteria femorale e nell'arteria radiale sinistra del donatore.</li>
	</ol></li>
	<li>Posizionamento del palloncino di occlusione aortica<ol><li>Prendiamo, come riferimento, la distanza tra il processo xifoideo del donatore e l'estremità distale della cannula arteriosa e determinare la lunghezza del catetere da inserire per raggiungere l'aorta discendente toracica. Imposta un segno di riferimento nel palloncino con una sutura di seta o un pennarello.</li>
		<li>Introdurre una guida metallica attraverso il lume libero della cannula dell'arteria femorale. Continuare con il catetere allo stesso modo, guidato dal filo metallico, e introdurlo fino al segno di riferimento.</li>
		<li>Confermare la corretta posizione del palloncino occlusivo con radiografia toracica portatile o fluoroscopia (controllare i segni radiopaci del catetere sopra il diaframma).</li>
		<li>Controllare il corretto funzionamento del palloncino di occlusione riempiendolo con una siringa a cono da 50 cc con soluzione salina solo per 4-5 s, confermando che la pressione arteriosa dalla cannula femorale scompare mentre viene mantenuta la pressione dall'arteria radiale sinistra (Figura 3).</li>
		<li>Quando l'impulso femorale scompare, registrare il volume di riempimento come volume minimo da utilizzare per bloccare l'aorta toracica durante l'ARNP. Se viene rilevato un flusso nella cannula femorale, controllare nuovamente il corretto posizionamento o riempimento.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Ritiro della terapia di sostegno vitale (WLST) e dichiarazione di morte
<ol><li>Trasferire il donatore collegato al sistema ECMO in sala operatoria. Preparare e avvolgere il donatore in modo sterile.</li>
	<li>Avere le soluzioni e le linee di conservazione dei polmoni e degli addominali impostate e pronte. Mantenere l'équipe chirurgica pulita e sterile e pronta nella sala operatoria adiacente.</li>
	<li>Utilizzare un cronometro per registrare i tempi ischemici caldi. NOTA: Il tempo ischemico caldo funzionale (FWIT), definito come il tempo dalla pressione arteriosa sistolica <60 mmHg all'ANRP viene avviato per gli innesti addominali e la somministrazione della soluzione di conservazione polmonare attraverso l'arteria polmonare per i polmoni (è incluso il periodo di non contatto di 5 minuti). Vengono considerati i limiti superiori di 30 minuti per il fegato e il pancreas e di 60 minuti per i reni e i polmoni.</li>
	<li>Consentire ai parenti di stare con il loro caro durante la WLST fino alla dichiarazione di morte.</li>
	<li>Avviare WLST. L'estubazione è facoltativa secondo i desideri del parente. Dopo la dichiarazione di morte, condurre i parenti fuori dall'area chirurgica.</li>
	<li>Dopo il periodo di 5 minuti senza contatto, riempire il palloncino di occlusione aortica con il volume minimo precedentemente determinato che assicura il blocco aortico toracico discendente.</li>
	<li>Se la pressione dall'arteria radiale sinistra scompare, iniziare ANRP. La pressione della cannula femorale si trasformerà in un flusso continuo non pulsatile fornito dall'ECMO.</li>
	<li>Se il flusso nella linea radiale aumenta parallelamente alla pressione femorale, interrompere l'ANRP e controllare la posizione corretta e il riempimento o bloccare l'aorta toracica dopo un altro periodo di 5 minuti senza contatto prima di ripristinare l'ANRP. L'ANRP non viene iniziata fino a quando l'occlusione aortica non è completamente confermata. NOTA: WLST può essere eseguito in sala operatoria o in terapia intensiva seguendo la preferenza di parenti e persone care. Se viene eseguito in terapia intensiva, dopo il periodo di 5 minuti senza contatto, il palloncino viene riempito e controllato il funzionamento, viene avviato l'ARNP e il donatore viene trasferito nella sala operatoria dove l'équipe chirurgica è pronta per iniziare. Se viene rilevato un malfunzionamento del palloncino di occlusione, l'ARNP viene interrotto fino a quando l'aorta toracica non viene bloccata nella sala operatoria.</li>
</ol>3. Tecnica di recupero e approvvigionamento polmonare
NOTA: Le tecniche di recupero e approvvigionamento polmonare vengono eseguite dal chirurgo toracico e dal coordinatore del trapianto (Figura 4).
<ol><li>Eseguire una sternotomia media: procedere con un'incisione cutanea verticale mediana dalla tacca soprasternale alla punta del processo xifoideo. Estendere l'incisione alla fascia pettorale e al periostio sternale usando l'elettrocauterizzazione.</li>
	<li>Dividere il legamento interclavicolare e creare un piano per dissezione delle dita dietro lo sterno, sia a livello della tacca soprasternale che del processo xifoideo. Dividere lo sterno con una sega elettrica. Posizionare un divaricatore sternale e aprire con cura, rilasciando il pericardio dalla superficie posteriore dello sterno. Controlla qualsiasi punto di sanguinamento con elettrocauterizzazione.</li>
	<li>Allo stesso tempo, reintubare e ventilare il donatore con ossigeno al 100% e una pressione positiva di fine espirazione di 5 cm H2O.</li>
	<li>Se la broncoscopia non è stata eseguita durante la degenza in terapia intensiva del donatore come manovra critica di gestione del paziente, può essere eseguita a questo punto dal secondo chirurgo del team toracico. Per la broncoscopia, introdurre un broncoscopio flessibile attraverso il tubo endotracheale e valutare l'anatomia, l'aspetto della mucosa e le secrezioni chiare.</li>
	<li>Aprire entrambe le cavità pleuriche mediante incisioni longitudinali nella pleura mediastinica.</li>
	<li>Se ci sono dubbi o problemi su un adeguato blocco dei vasi sovra-aortici con il palloncino di occlusione, ritrarre medialmente il polmone sinistro per esporre e bloccare l'aorta toracica il più in basso possibile sotto visione diretta.</li>
	<li>Esaminare i polmoni eseguendo la valutazione visiva e palpatoria. Ispezionare per bolle, contusione, atelettasia, polmonite e tumori occulti. Erogare 1 L di soluzione salina a 4 °C in entrambe le cavità pleuriche.</li>
	<li>Ridurre la frazione inspirata di ossigeno al 50%. Aprire il pericardio con un'incisione a T rovesciata. Ritrarre lateralmente i bordi del pericardio con suture di seta 2-0 fissate alla pelle con pinze per zanzare per esporre le strutture cardiache.</li>
	<li>Posizionare una sutura di stringa di borsa in polipropilene 4-0 sull'arteria polmonare principale sotto la biforcazione. Eseguire un'arteriotomia con una lama n. 11 e dilatare con una pinza per zanzare curva.</li>
	<li>Cannulare l'arteria polmonare (PA) con una cannula dritta ad angolo retto bloccata all'estremità. Collegare la cannula dell'arteria polmonare alla linea del sistema di irrigazione, assemblando un connettore dritto con un lucchetto Luer e un rubinetto a tre vie. Collegare il sistema di irrigazione alla soluzione di conservazione polmonare. Eliminare le linee.</li>
	<li>Iniziare a lavare 50-60 ml/kg di soluzione di conservazione a freddo in modo anterogrado. Iniziare a lavare 500 μg di prostaglandina diluita contemporaneamente in 100 ml di soluzione salina attraverso il rubinetto a tre vie.</li>
	<li>Aprire direttamente l'appendice atriale sinistra o l'atrio sinistro per consentire il drenaggio libero. Se si trovano aree di atelettasi, reclutarle con brevi prese inspiratorie a 25-30 cm H2O di pressione.</li>
	<li>Una volta terminata la conservazione, rimuovere la cannula PA. Annuncia al resto della squadra l'intenzione di bloccare la vena cava e iniziare l'escissione cardiaca.</li>
	<li>Somministrare 1-1,2 L di soluzione salina al donatore prima di serrare le vene di cava per evitare una diminuzione del flusso della pompa a causa della perdita di ritorno venoso del sangue dal torace.</li>
	<li>Posizionare un morsetto incrociato nella vena cava inferiore, assicurandosi che ci sia abbastanza moncone per il fegato. Ligare e dividere la vena cava inferiore con n. 3 fili di seta.</li>
	<li>Legare e dividere la vena cava superiore caudale ad azygous con n. 3 filo di seta. Fissare il moncone distale con un morsetto.</li>
	<li>Lasciare i morsetti rimanendo in campo chirurgico, facendo attenzione a non rimuoverli per sbaglio, altrimenti l'ANRP sarà compromesso. Eliminare il resto del cuore in modo standard.</li>
	<li>Dopo l'escissione cardiaca, rimuovere i polmoni seguendo la stessa procedura dei donatori di morte cerebrale, come descritto di seguito.<ol><li>Dividere i legamenti polmonari inferiori, aprire il pericardio posteriore ed esporre l'esofago. Liberare gli attacchi mediastinici posteriori del polmone con una dissezione smussata, assicurando un'emostasi prudente.</li>
		<li>Sezionare le arterie polmonari lontano dall'aorta. Isolare la trachea sopra la carina e passare una cucitrice TA.</li>
		<li>Gonfiare i polmoni al 50% -60% del volume corrente prima di prelevare il tubo endotracheale e dividere la trachea. Rimuovere qualsiasi attaccamento residuo ed estrarre il blocco polmonare dal donatore.</li>
	</ol></li>
	<li>Controllare attentamente la cavità toracica per rilevare qualsiasi punto di sanguinamento, in particolare la legatura della vena azygos e la cauterizzazione dei vasi o dei capillari dal mediastino posteriore, dalle strutture paratracheali e dai tessuti circostanti. La perdita continua di sangue può ridurre il flusso della pompa.</li>
	<li>Porta il blocco polmonare sul tavolo posteriore e procedi con la chirurgia da banco. Separare i polmoni sinistro e destro.</li>
	<li>Con un catetere Foley con bulbo gonfiato sulla punta, eseguire in sequenza, attraverso ciascuna vena polmonare, un lavaggio retrogrado con 0,2-0,25 L di soluzione di conservazione a freddo.</li>
	<li>Imballare ogni polmone in una prima sacca sterile contenente solo soluzione di conservazione a freddo, circondata da altri due sacchetti di plastica, e conservare in un frigorifero portatile contenente soluzione salina ghiacciata a 4 °C.</li>
	<li>Quando è indicato un sistema di perfusione polmonare ex vivo , seguire i passaggi seguenti per i collegamenti del dispositivo all'arteria polmonare e alla trachea durante l'approvvigionamento polmonare.<ol><li>Preservare il tronco principale dell'arteria polmonare e non solo la sua biforcazione durante l'approvvigionamento.</li>
		<li>Se non è possibile, prendere un pezzo di 3-4 cm dell'aorta per suturarlo posteriormente alla biforcazione dell'arteria polmonare per sostituire il tronco dell'arteria polmonare.</li>
		<li>Dividere la trachea da quattro a cinque anelli sopra la carina per avere una lunghezza sufficiente per l'intubazione.</li>
		<li>Conservare e conservare i polmoni in blocco.</li>
	</ol></li>
</ol>4. Perfusione regionale normotermica addominale
<ol><li>Avviare l'ANRP dopo aver riempito il palloncino di occlusione aortica e aver controllato il corretto funzionamento.</li>
	<li>Impostare i seguenti punti target di monitoraggio: portata della pompa = 2-2,5 L/min, pressione continua di 60-65 mmHg nella cannula dell'arteria femorale, temperatura = 37 °C, pH = 7,35-7,45, ematocrito >25%.</li>
	<li>Ottenere campioni di sangue dalla cannula dell'arteria femorale con una siringa da 10 ml dopo l'inizio dell'ANRP e ogni 30 minuti per l'analisi biochimica epatica e renale, i livelli sierici di lattato, il gas arterioso nel sangue e i valori di ematocrito. Mantenere ARNP per almeno 90-120 minuti.</li>
	<li>Scartare il fegato se i valori di alanina transaminasi (ALT) o aspartato transaminasi (AST) sono più di quattro volte il limite normale superiore durante ANRP.</li>
</ol>5. Recupero epatico e renale
NOTA: Il recupero del fegato e dei reni viene eseguito rispettivamente dal chirurgo epatico e dal chirurgo renale.
<ol><li>Eseguire laparotomia media: procedere con un'incisione cutanea verticale mediana lungo la linea alba, dal processo xifoideo (unire alla precedente sternotomia) al pube, curvando l'incisione attorno all'ombelico. Utilizzare l'elettrocauterizzazione per sezionare il grasso sottocutaneo e gli strati fasciali superficiali fino alla guaina del retto.</li>
	<li>Sezionare attraverso i componenti anteriore e posteriore della guaina del retto e aprire il peritoneo per accedere alla cavità peritoneale. Allargare l'incisione infilando le dita nel foro creato, facendo attenzione a non ferire le strutture sottostanti. Posizionare i divaricatori per avere un'adeguata esposizione dell'addome.</li>
	<li>Valutare la qualità macroscopica degli organi addominali eseguendo valutazioni visive e palpatorie. Una biopsia epatica può essere presa se viene sollevata qualsiasi preoccupazione, come con i donatori di morte cerebrale.</li>
	<li>Se i valori chimici sono corretti e l'aspetto macroscopico è normale, convalidare gli organi.</li>
	<li>Arrestare il dispositivo ECMO. Lavare la soluzione di conservazione per gli organi addominali attraverso la cannula arteriosa femorale e utilizzare la cannula venosa femorale per il dissanguamento.</li>
	<li>Procurare organi addominali adatti al trapianto in modo standard come in DBD27,28.</li>
</ol>

Gli autori dichiarano che non ci sono conflitti di interesse.

Sebbene l'uso simultaneo della perfusione polmonare fredda con ARNP nella cDCD sia stato pubblicato per la prima volta nel 2014, sono state descritte pochissime esperienze per questo25,26,29. Inoltre, l'utilizzo dei polmoni cDCD, indipendentemente dalla tecnica utilizzata, rimane basso nella maggior parte dei paesi.
I passaggi critici all'interno di questo protocollo sono l'uso di interventi premortem...

La donazione dopo la morte circolatoria (DCD) è iniziata in Spagna con donatori incontrollati. Nel 1996, il primo documento di consenso nazionale sulla DCD è stato pubblicato come guida per la pratica della donazione incontrollata dopo la morte circolatoria1 (uDCD), stabilendo anche una moratoria sulla donazione controllata dopo la morte circolatoria (cDCD). Nel 2012 è emerso un nuovo consenso che stabilisce le basi e il quadro legislativo per la pratica sia della uDCD che della cDCD2. Attualmente, la Spagna è uno dei paesi più attivi nella DCD, raggiungendo il più alto tasso di donatori dopo la morte circolatoria nel mondo3. Questo tipo di donatore rappresentava quasi il 35% del totale dei donatori nel 2021 nel paese, con una marcata diminuzione dell'uDCD e donatori esclusivamente cDCD4.
L'approvvigionamento di organi nella cDCD viene comunemente eseguito utilizzando la tecnica di recupero super-rapido5. Dopo la dichiarazione di morte e quando è trascorso il periodo di non contatto, viene eseguita una sternotomia rapida e laparotomia. L'aorta addominale e l'arteria polmonare vengono incannulate e lavate con soluzioni di perfusione fredda per preservare gli organi addominali e toracici, inoltre il raffreddamento topico viene condotto prima del recupero6. In questa situazione, la cDCD è caratterizzata dalle conseguenze imprevedibili dell'ischemia calda, dopo il ritiro della terapia di sostegno vitale. Il danno ischemico durante questo periodo di ipotensione agonica e ipossia progressiva, seguito dal periodo di non contatto dopo l'arresto cardiaco, è ulteriormente esacerbato dal successivo periodo di ischemia fredda7. Questa combinazione di ischemia calda e fredda sembra essere dannosa, specialmente per gli innesti addominali 8,9,10, generando più riluttanza tra i professionisti nell'uso di questi organi da donatori di cDCD.
Per ridurre al minimo questi rischi, un modello di conservazione in situ, basato su precedenti esperienze di team spagnoli che lavorano in uCDC11, è stato sviluppato con crescente interesse. L'uso di sistemi di ossigenazione extracorporea a membrana (ECMO) per ripristinare il flusso sanguigno dopo la morte e prima del recupero del trapianto può invertire le deviazioni metaboliche derivanti dall'ischemia e ripristinare la fisiologia cellulare12. La perfusione regionale normotermica addominale (ANRP) può migliorare la qualità degli organi ischemico-danneggiati nella cDCD13. La funzione degli organi può essere valutata e migliorata, consentendo una migliore selezione degli innesti addominali per il trapianto.
Recenti esperienze multicentriche internazionali forniscono prove che l'ANRP rispetto alla tecnica di recupero rapido (RR) aiuta a superare i limiti tradizionali nella cDCD, riducendo i tassi di complicanze biliari post-trapianto, facilitando il successo del trapianto di fegati più anziani e migliorando la sopravvivenza dell'innesto di fegato14,15. Nei reni, sembra migliorare i risultati a breve termine con una funzione di trapianto ritardata inferiore e tassi di sopravvivenza del trapianto più elevati a 1 anno16. Con questa evidenza, ANRP nella cDCD ha acquisito vantaggi rispetto alla tecnica di recupero rapido per l'approvvigionamento di innesti addominali ed è ora applicato in diversi paesi europei e in altre parti del mondo17,18.
L'uso di polmoni da donatori di cDCD, tuttavia, è stato prontamente adottato in tutto il mondo. Un tempo ischemico caldo funzionale polmonare fino a 60 minuti non sembra influenzare la sopravvivenza19. Nell'ultimo decennio, diversi centri ed esperienze multi-istituzionali hanno riportato risultati dopo trapianto di polmone da cDCD paragonabili a quelli di DBD20,21. La tecnica RR è il metodo di routine per l'approvvigionamento polmonare: i polmoni vengono raffreddati localmente e rimossi dopo essere stati lavati con la soluzione di conservazione a freddo22.
Le prime esperienze che combinano ANRP e RR dei polmoni nella cDCD sono state riportate da due gruppi del Regno Unito23,24. Anni dopo, una variante di questa tecnica che aggiunge interventi premortem è stata pubblicata25. I risultati presentano questa doppia tecnica di approvvigionamento come sicura ed efficace sia per gli innesti addominali che toracici26. Ovviamente, la procedura di donazione diventa più complessa. Richiede risorse tecnologiche e umane, sufficienti capacità organizzative e ha un costo economico più elevato. Tutto ciò può scoraggiare i professionisti dall'avviare un programma. Lo scopo di questo studio è quello di presentare un protocollo particolarmente focalizzato sugli interventi premortem, incannulamento e posizionamento del palloncino di occlusione aortica, con suggerimenti e trucchi appresi dall'esperienza e commentare i diversi dettagli tecnici da considerare durante il recupero polmonare quando viene utilizzato ARNP. Attualmente, nel Centro, i donatori di cDCD sono diventati la principale fonte di innesti per il trapianto toracico e addominale.

<table><tbody><tr><td>Fiala 5 mL di eparina 1000 UI/mL</td><td>ROVI</td><td></td><td>Per eparinizzazione da donatore</td></tr><tr><td>KIT ECMO (MATERIALI PER L'INCANNULAMENTO)</td>Linee di pressione dell'arteria <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>BEXEN MEDICAL</td><td>137.15</td><td>Linea di pressione dell'arteria per arteria radiale e cannula femorale</td></tr><tr><td>Forbici per bende</td><td>SURGIMEDIC</td><td>BC-881R</td><td>Cesoia per tagliare le linee</td></tr> <tr><td>ECMOCannula venosa Bio-medicus 21 Fr (7,0 mm) x 27,5 pollici (69,9 cm)</td><td>MEDTRONIC</td><td>96670-121</td><td>Cannula venosa</td></tr><tr><td>Soluzione di clorexidina 2%</td><td></td><td></td><td>Soluzione disinfettante</td></tr><tr><td>Dispositivo ECMO Maquet Rotaflow</td><td>Maquet, Rasttat, Germania</td><td></td><td>Sistema ECMO</td></tr><tr><td>Impugnatura per elettrocauterizzazione</td><td>DEXTRO</td><td>SW12200</td><td></td></tr><tr><td>Kit di cannule arteriose EndoReturn &nbsp; 21-23F</td><td>Edwards Lifesciences</td><td>ER21B, ER23B</td><td>Cannula arteriosa con un doppio lume di connessione all'ECMO e per l'introduzione di palloncino oclussione aortica</td></tr><tr><td>Ethicon LigaClip med/short 20 terreno in titanio</td><td>ETHICON</td><td>MCS30</td><td>Ligaclip per il controllo del sanguinamento durante la dissezione dell'inguine</td></tr><tr><td>Ethicon LigaClip med/short 20 titanio piccolo</td><td>ETHICON</td><td>MCS20</td><td>Ligaclip per il controllo del sanguinamento durante la dissezione</td></tr> <tr><td>dell'inguineKit di inserimento Bio-medicus 180cm</td><td>MEDTRONIC</td><td>96551</td><td>Kit di inserimento per cannule ECMO, con catetere, guida del filo metallico e dilatatori</td></tr><tr><td>Pera di irrigazione</td><td>MEDLINE</td><td>DYNDE 20125</td><td>Pera da riempire con soluzione fisiologica e spurgare le linee ECMO nel sito di connessione con le cannule</td></tr><tr><td>Siringa a cono Luer 50cc</td><td>CARDIONATUR</td><td>60ML</td><td>Siringa riempita con soluzione fisiologica per riempire il palloncino</td></tr> <tr><td>di occlusioneMersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cm</td><td>ETHICON</td><td>W562H</td><td>Sutura curva in seta per fissaggio di cannule ECMO</td></tr><tr><td>Prolene 4/0</td><td>ETHICON</td><td>W8355</td><td>sutura in polipropilene per cordino in vasi femorali o sutura vascolare</td></tr><tr><td>Prolene 5/0 , 60 cm</td><td>ETHICON</td><td>8325</td><td>sutura in polipropilene per sutura vascolare</td></tr><tr><td>Prolene 5/0, 90 cm</td><td>ETHICON</td><td>8720</td><td>sutura in polipropilene per sutura vascolare</td></tr><tr><td>Catetere a palloncino per innesto di stent Reliant&nbsp; 12F</td><td>Medtronic, Irlanda</td><td>AB46</td><td>Palloncino per occlusione aortica introdotto attraverso l'arteria femorale. Viene utilizzato come</td></tr><tr><td>endoclamp Lama per bisturi n. 11</td><td>INTRAVEN</td><td>150011</td><td></td></tr><tr><td>Lama per scapel n. 23</td><td>INTRAVEN</td><td>150023</td><td></td></tr><tr><td>Tubo in silicone</td><td>IBERHOSPITEX</td><td>0027224-P</td><td>Tubo in silicone per collegare il sistema di aspirazione Seta</td></tr><tr><td>intrecciata Sofsilk n. 1 fili</td><td>COVIDIEN</td><td>L-12</td><td>Filo di seta per legatura o controllo del sanguinamento</td></tr><tr><td>Seta intrecciata Sofsilk n. 3 fili</td><td>COVIDIEN</td><td>L-115</td><td>Filo di seta per legatura o controllo del sanguinamento</td></tr><tr><td>connettore dritto 3/8"x3/8" con Luer lock</td><td>ANDOCOR</td><td>04CS0022</td><td>Pezzo per collegare la cannula arteriosa con la linea ECMO e il rubinetto a tre vie per la linea di pressione e il prelievo di sangue</td></tr><tr><td>Confezione di cuscinetti chirurgici</td><td>TEXPOL</td><td>146500</td><td></td></tr><tr><td>Suturatrice</td><td>chirurgica COVIDIEN</td><td>8886803712</td><td>Cucitrice per chiudere la ferita chirurgica</td></tr><tr><td>Rubinetto a tre vie</td><td>BD CONNECTA</td><td>394501</td><td>Rubinetto a tre vie per collegare la cannula farteriale con la linea di pressione</td></tr><tr><td>Anello del vaso grande</td><td>MEDLINE</td><td>VLMAXR</td><td>Anello vascolare per abbracciare l'arteria e la vena femorale per il controllo del sanguinamento.</td></tr><tr><td>Ansa vascolare piccola</td><td>MEDLINE</td><td>VLMINR</td><td>Ansa vascolare per abbracciare l'arteria e la vena femorale per il controllo delle emorragie.</td></tr><tr><td>Terminale di aspirazione Yankauer 50 V</td><td>DEXTROMEDICA</td><td>349701</td><td>Terminale di aspirazione per aspirazione durante la dissezione chirurgica</td></tr><tr><td>STRUMENTI CHIRURGICI PER INCANNULAMENTO</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adson divaricatore 20 cm e 33 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinza</td><td></td><td></td><td></td>aortica</tr><tr><td>Boyd Forbici 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinza per dissezione senza ganasce 21 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Divaricatore Farabeuf piccole</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>forbici Mayo dritte 14 cm e 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forbici Metzembaum 18 cm, 20 cm e 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze per zanzare dritte e curve</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Porta aghi 18 cm e 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze per dissezione Russ 15 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manico del bisturi n. 23 e n. 21,&nbsp; 21 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dissettore chirurgico 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>MATERIALI PER L'APPROVVIGIONAMENTO POLMONARE</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 cc siringa</td><td>BD DISCARDIT</td><td>309110</td><td></td></tr><tr><td>Alprostadil 500 mcgs soluzione iniettabile</td><td>PFIZER</td><td></td><td>Prostaglandine iniettate con soluzione di conservazione polmonare</td></tr><tr><td>Cartuccia GIA monouso Steril 6/Ca</td><td>MEDTRONIC</td><td>1141634</td><td></td></tr><tr><td>Succatrice GIA monouso 60/3.8 3/Ca</td><td>MEDTRONIC</td><td>2802122</td><td>Cucitrice per trachea e divisione bronquiale</td></tr><tr><td>Catetere di Foley 18 Ch Folysil</td><td>Folysil, Coloplast</td><td>AA6118</td><td>Catetere urinario impiegato per vene polmonari canulate per perfusione</td></tr> <tr><td>retrogradaSoluzione per la conservazione dei polmoni Perfadex 1000 mL</td><td>Medisan, Uppsala, Sweeden</td><td>19811 ( scatola da 10 unità)</td><td>Soluzione per la conservazione dei polmoni</td></tr><tr><td>Mersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cm</td><td>ETHICON</td><td>W562H</td><td>Sutura curva in seta per suture pericardiche</td></tr><tr><td>Cannula venosa pediatrica</td><td>SORIN GROUP</td><td>V132-12</td><td>Cannula utilizzata per l'incannulamento dell'arteria polmonare</td></tr><tr><td>Prolene 4/0</td><td>ETHICON</td><td>W8355</td><td>sutura in polipropilene per cordino della borsa nell'arteria polmonare</td></tr><tr><td>Lama del bisturi n. 11</td><td>INTRAVEN</td><td>150011</td><td></td></tr><tr><td>Seta intrecciata Sofsilk n. 1 fili</td><td>COVIDIEN</td><td>L-12</td><td>Filo di seta per fissare la cannula arteriosa con il laccio emostatico</td></tr><tr><td>Seta intrecciata Sofsilk n. 3 fili</td><td>COVIDIEN</td><td>L-115</td><td>Filo di seta per legatura dei vasi</td></tr><tr><td>Sacche</td><td></td><td></td> sterili <td>Per conservare e conservare i polmoni.</td></tr><tr><td>Connettore dritto 1,4"/1,4" con luer lock</td><td>ANDOCOR</td><td>04CS0032</td><td>Pezzo per collegare la cannula arteriosa dell'arteria polmonare con la linea di conservazione e il rubinetto a tre vie per le prostaglandine</td></tr><tr><td>Rubinetto a tre vie</td><td>BD CONNECTA</td><td>394501</td><td>Rubinetto a tre vie per collegare la cannula farteriale con la linea di pressione</td></tr><tr><td>Set uromatico per irrigazione a doppio elettrocatetere</td><td>MEDISAVE</td><td>TRC4007N</td><td>Sistema di irrigazione per soluzione per la conservazione dei polmoni</td></tr><tr><td>Set uromatico per irrigazione a una derivazione</td><td>MEDISAVE</td><td>TRC4002</td><td>Sistema di irrigazione per soluzione per la conservazione dei polmoni</td></tr><tr><td>STRUMENTI CHIRURGICI PER L'APPROVVIGIONAMENTO DEI POLMONI</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinza</td><td></td><td></td><td></td>a croce aortica</tr><tr><td>Sega</td><td></td><td></td><td></td>chirurgica a batteria</tr><tr><td>Cooley vascolare </td><td></td><td></td><td></td>pinza</tr> da <tr><td>dissezione 18 cm e 27,9 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr>Divaricatore <td></td><td></td><td></td><td>sternale Finochietto</td></tr><tr><td>Forbici Metzembaum 20 cm e 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze per zanzare curve 12,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze vascolari</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>STRUMENTI CHIRURGICI PER ORGANO ADDOMINALE PROCUREMENT</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adson divaricatori articolati Pinza</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Allis 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Morsetti</td><td></td><td></td><td></td>a croce aortica</tr><tr><td>Forbici Boyd 17 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Porta</td><td></td><td></td><td></td>aghi Castroviejo</tr><tr><td>Morsetti vascolari</td><td></td><td></td><td></td> Cooley</tr><tr><td>Pinze Crile curve 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Divaricatore Davis 24,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze da dissezione DeBakey 19,7 cm e 24,1 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze vascolari DeBakey Pinze</td><td></td><td></td><td></td>da</tr><tr><td>dissezione 18 cm e 27,9 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze Duval 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Divaricatori Farabeuf</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vassoi per reni 300 cc e 500 cc</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze Kocher dritte 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Divaricatori Langenbeck 21 cm e 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forbici Mayo dritte e curve, 17 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze per zanzare dritte e curve, 12,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Portaaghi 15 cm, 18 cm, 23 cm e 23 cm.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze Pean 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forbici Potts 19 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze Rochester curve 24 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze Rochester dritte 24 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinze per dissezione Russ 15 cm e 20 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manici</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>per bisturiDivaricatore Senn-Mueller 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

approvvigionamento di recupero rapido polmonare combinato con perfusione regionale normomica addominale nella donazione controllata dopo morte circolatoria

Lung Rapid Recovery Procurement Combined with Abdominal Normothermic Regional Perfusion in Controlled Donation after Circulatory Death

La donazione controllata dopo la morte circolatoria (cDCD) ha contribuito ad aumentare il numero di donatori in tutto il mondo. Le esperienze pubblicate negli ultimi anni confermano che i risultati dopo il trapianto di polmone da cDCD sono simili a quelli dei donatori di morte cerebrale; Tuttavia, l'utilizzo dei polmoni da donatori di asistolia rimane basso. Diverse ragioni possono essere coinvolte: diversi quadri giuridici tra paesi e centri con diversi interventi premortem, assistenza inadeguata del donatore polmonare prima dell'approvvigionamento o persino scarsa esperienza con le procedure e i protocolli cDCD.
Inizialmente, la tecnica di recupero rapido era comunemente impiegata per l'approvvigionamento di organi toracici e addominali nella cDCD, ma, nell'ultimo decennio, la perfusione regionale normotermica addominale (ANRP) con dispositivi di ossigenazione extracorporea a membrana è diventata un metodo utile per ripristinare il flusso sanguigno agli organi addominali, consentendo il loro miglioramento della qualità e la loro valutazione funzionale prima del trapianto. Ciò rende la procedura di donazione più complessa e genera dubbi sulla lesione degli innesti dovuta alla doppia temperatura.
Lo scopo di questo articolo è quello di descrivere un protocollo basato su un'esperienza di un singolo centro con donatori di Maastricht III che combina il recupero rapido del raffreddamento polmonare nel torace e la perfusione regionale normotermica addominale. Vengono spiegati suggerimenti e trucchi incentrati sugli interventi premortem e sulle tecniche di procedura di approvvigionamento polmonare. Ciò può aiutare a ridurre al minimo la riluttanza tra i professionisti a utilizzare questa tecnica combinata e incoraggiare altri centri donatori a utilizzarla, nonostante la maggiore complessità della procedura.

Abbiamo eseguito un'analisi descrittiva di 30 trapianti di polmone eseguiti presso l'Ospedale Universitario Marqués de Valdecilla con polmoni ottenuti da donatori cDCD negli ultimi 2 anni, 2020 e 2021. Le caratteristiche demografiche del donatore e del ricevente, i dati tecnici, gli esiti postoperatori e i risultati a breve termine sono presentati qui. Questi risultati sono presentati come numeri assoluti e percentuali per variabili categoriali e come misure di tendenza centrale e dispersione per variabili continue. Il t...

Il protocollo combina una tecnica di recupero rapido del raffreddamento polmonare con la perfusione regionale normotermica addominale per l'acquisizione di innesti addominali in donatori di asistole controllati, che è un metodo sicuro e utile per espandere il pool di donatori.

Approvvigionamento di recupero rapido polmonare combinato con perfusione regionale normomica addominale nella donazione controllata dopo morte circolatoria

Controlled donation after circulatory death (cDCD) has contributed to increasing donor numbers all over the world. Experiences published in the last years ...

Il recupero multiorgano per la donazione controllata dopo i donatori di morte cardiaca è una sfida. Questo metodo aumenta la complessità dell'intera procedura, ma offre risultati migliori per i destinatari. Questo metodo riduce al minimo il danno ischemico prodotto da ipotensione e arresto cardiaco dopo la sospensione della terapia di sostegno vitale nei donatori.Per iniziare, somministrare per via endovenosa un bolo di eparina al donatore. Quindi preparare un tavolo di strumentazione sterile con tutte le attrezzature necessarie, l'elettrocauterizzazione e il sistema di aspirazione. Preparare un campo chirurgico sull'inguine selezionato con soluzione disinfettante e teli sterili.Fai un'incisione longitudinale da otto a 10 centimetri con una lama numero 23 e controlla l'emorragia con elettrocauterizzazione e Ligaclips. Separare i bordi della ferita con un divaricatore e procedere con la dissezione per esporre l'arteria femorale e la vena. Abbraccia i vasi femorali con un filo di seta per controllare l'emorragia.Selezionare i diametri della cannula appropriati in base alle dimensioni del recipiente come descritto nel manoscritto testuale. Cannulare la vena femorale, introducendo prima un filo metallico come guida, seguito da dilatatori progressivi per introdurre infine la cannula. Procedere in modo simile con l'arteria femorale utilizzando una cannula a doppio lume.Tagliare un pezzo di 10 centimetri della linea di ingresso ECMO. Inserire un connettore dritto con un blocco esca con un rubinetto a tre vie assemblato a un'estremità del pezzo e collegare l'altra estremità alla cannula arteriosa. Eliminare le linee ECMO.Utilizzare un'irrigazione abbinata a soluzione salina per riempire le linee mentre si collega con le cannule. Collegare la linea ECMO di uscita alla cannula venosa e la linea ECMO di ingresso al connettore dritto con il rubinetto di arresto a tre vie precedentemente assemblato alla cannula arteriosa. Il rubinetto di arresto a tre vie può essere utilizzato per lo spurgo del sistema.Mantenere le linee ECMO bloccate. Fissare entrambe le cannule all'inguine con suture di seta di taglia uno per evitare lo spostamento durante il trasferimento. Posizionare una linea di pressione monitorata nella cannula dell'arteria femorale e nell'arteria radiale sinistra del donatore.Successivamente, iniziare il posizionamento del palloncino di occlusione aortica prendendo la distanza tra il processo xifoideo del donatore e l'estremità distale della cannula arteriosa come riferimento per determinare la lunghezza del catetere da inserire per raggiungere l'aorta discendente toracica. Imposta un segno di riferimento nel palloncino con una sutura di seta o un pennarello. Introdurre una guida metallica attraverso il lume libero della cannula dell'arteria femorale.Continuare con il catetere guidato dal filo metallico e introdurlo fino al segno di riferimento. Confermare la corretta posizione del palloncino di occlusione. Controllare il corretto funzionamento del palloncino di occlusione riempiendolo di soluzione salina per quattro o cinque secondi utilizzando una siringa a cono da 50 centimetri cubici.Confermando che la pressione arteriosa dalla cannula femorale scompare, mentre viene mantenuta la pressione dall'arteria radiale sinistra. Per eseguire una sternotomia mediana, procedere con un'incisione cutanea verticale mediana dalla tacca soprasternale alla punta del processo xifoideo. Estendere l'incisione alla fascia pettorale e al periostio sternale usando l'elettrocauterizzazione.Dividere il legamento interclavicolare e creare un piano per dissezione delle dita dietro lo sterno, sia a livello della tacca soprasternale che del processo xifoideo. Dividere lo sterno con una sega elettrica. Posizionare un divaricatore sternale e aprirlo con cura, rilasciando il pericardio dalla superficie posteriore dello sterno.Controlla qualsiasi punto di sanguinamento con elettrocauterizzazione. Allo stesso tempo, ventilare il donatore con il 100% di ossigeno e una pressione positiva ed espiratoria di cinque centimetri di acqua. Per la broncoscopia, introdurre un broncoscopio flessibile attraverso il tubo endotracheale.Aprire entrambe le cavità pleuriche mediante incisioni longitudinali nella pleura mediastinica. Se si riscontrano errori durante l'esame dei vasi sovra-aortici con il palloncino di occlusione, ritrarre il polmone sinistro medialmente per esporre e bloccare l'aorta toracica il più in basso possibile sotto visione diretta. Esaminare i polmoni eseguendo valutazioni visive e palpatorie, ispezionando bolle, contusione, atelettasia, polmonite e tumori occulti.Fornire un litro di soluzione salina a quattro gradi Celsius in entrambe le cavità pleuriche. Ridurre la frazione inspirata di ossigeno al 50%Aprire il pericardio con un'incisione a T rovesciata. Ritrarre lateralmente i bordi del pericardio con suture di seta 2-0 fissate alla pelle con pinze per zanzare per esporre le strutture cardiache.Posizionare una sutura a corda di borsa in polipropilene 4-0 sull'arteria polmonare principale sotto la biforcazione. Eseguire un'arteriotomia con una lama numero 11 e dilatare con una pinza per zanzare curva. Cannulare l'arteria polmonare con una cannula retta e dritta bloccata all'estremità.Collegare la cannula dell'arteria polmonare alla linea del sistema di irrigazione, assemblando un connettore dritto con un blocco esca e un rubinetto a tre vie. Collegare il sistema di irrigazione alla soluzione di conservazione polmonare e spurgare le linee. Iniziare a lavare da 50 a 60 millilitri per chilogrammo di soluzione di conservazione a freddo in modo anterogrado.Iniziare a lavare 500 microgrammi di prostaglandina diluita in 100 millilitri di soluzione salina allo stesso tempo attraverso il rubinetto a tre vie. Aprire direttamente l'atrio sinistro per consentire il drenaggio libero. Se si trovano aree di atelettasie, reclutarle con brevi prese inspiratorie a una pressione dell'acqua da 25 a 30 centimetri.Una volta terminata la conservazione, rimuovere la cannula dell'arteria polmonare e annunciare al resto del team l'intenzione di bloccare la vena cava e iniziare l'escissione cardiaca. Posizionare un morsetto incrociato nella vena cava inferiore, assicurandosi che ci sia abbastanza moncone per il fegato. Argare e dividere la vena cava inferiore con un filo di seta numero tre.Legare e dividere la vena cava superiore del femore da caudale ad azygous con un filo di seta numero tre. Fissare il moncone distale con un morsetto. Lasciare i morsetti rimanendo in campo chirurgico, facendo attenzione a non rimuoverli accidentalmente, altrimenti il dispositivo ECMO e ARNP saranno compromessi.Eliminare il resto del cuore in una funzione standard. Dopo l'escissione cardiaca, rimuovere i polmoni seguendo la stessa procedura dei donatori di morte cerebrale. Dividere i legamenti polmonari inferiori, aprire il pericardio posteriore ed esporre l'esofago.Liberare gli attacchi mediastinici posteriori del polmone con una dissezione smussata, assicurando un'emostasi prudente. Sezionare le arterie polmonari lontano dall'aorta. Isolare la trachea sopra la carina e passare una cucitrice TA.Gonfiare i polmoni al 50-60% del volume corrente prima di prelevare il tubo endotracheale e dividere la trachea. Rimuovere eventuali allegati rimanenti ed estrarre il blocco polmonare dal donatore. Controllare attentamente la cavità toracica per rilevare eventuali punti di sanguinamento, poiché la perdita continua di sangue può ridurre il flusso della pompa.La percentuale di pazienti con malattia polmonare interstiziale era la più alta, seguita dalla broncopneumopatia cronica ostruttiva e dalle bronchiectasie. La maggior parte dei destinatari aveva una storia di fumo. Solo il 16,7% aveva ipertensione sistemica e il 10% aveva diabete mellito.L'ipertensione polmonare era presente in 14 destinatari. Un ricevente aveva bisogno di supporto vitale extracorporeo intraoperatorio durante l'intervento chirurgico con ECMO. Il tempo ischemico freddo mediano è stato di 292,5 minuti per il primo innesto e 405 minuti per il secondo.Non ci sono stati decessi intraoperatori. Due riceventi hanno avuto bisogno di supporto ECMO postoperatorio a causa della disfunzione primaria del trapianto. Il tempo mediano per l'intubazione postoperatoria è stato di 24 ore.La degenza in terapia intensiva è stata di 3,1 giorni e la degenza ospedaliera è stata di 18,9 giorni. Il rigetto cellulare acuto nelle prime tre settimane era presente in 12 riceventi. Non c'è stata mortalità ospedaliera e la sopravvivenza a 30 giorni è stata del 100% I punti chiave di questo metodo sono gli interventi pre-mortem, l'incannulamento, il posizionamento del palloncino di occlusione aortica e le misure per evitare la perdita di volume e il flusso della pompa durante la conservazione e l'approvvigionamento polmonare.Questo metodo è stato applicato a donatori pediatrici con un aumento del tasso di utilizzo degli innesti e un'eccellente sopravvivenza dei riceventi.

lung-rapid-recovery-procurement-combined-with-abdominal-normothermic

Research

Ricerca

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Innesti marginali, come fegati grassi, innesti da donatori di età superiore o fegati prelevati dopo la morte cardiaca (DCD) tollerano stoccaggio statico convenzionale, freddo solo male. Abbiamo sviluppato un nuovo modello di subnormothermic ex vivo perfusione epatica per la conservazione, la valutazione, e la riparazione di fegati marginali prima del trapianto.

Tecnica di Subnormothermic<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Fegato perfusione per la Conservazione, valutazione e riparazione dei marginali fegato innesti

Descriviamo un metodo di ex vivo macchina perfusione di innesti di fegato umano a temperatura subnormothermic (21 ° C).

Umana Funzionale Fegato Conservazione e recupero mediante Subnormothermic macchina di perfusione

Questo protocollo mostra un approccio semplice e flessibile per la valutazione di nuovi agenti di condizionamento o strategie per aumentare la fattibilità della donazione cardiaca dopo la morte circolatoria.

Modello preclinico di donazione cardiaca dopo la morte circolatoria

Il protocollo descrive un modello di donazione di animali di grandi dimensioni (suini) dopo morte circolatoria, seguito da perfusione regionale normotermica toracoaddominale che simula da vicino lo scenario clinico nel trapianto di cuore e ha il potenziale per facilitare studi e strategie terapeutiche.

Modello di donazione su animali di grandi dimensioni dopo morte circolatoria e perfusione regionale normothermica per la valutazione cardiaca

In questo protocollo viene descritto un modello di trapianto di fegato ortotopico suino dopo conservazione statica a freddo di organi donatori per 20 ore senza l'uso di un bypass veno-venoso durante l'attecchimento. L'approccio utilizza una tecnica chirurgica semplificata con minimizzazione della fase anepatica e sofisticata gestione del volume e del vasopressore.

Trapianto di fegato suino senza bypass veno-venoso come modello di donatore a criteri estesi

Qui, presentiamo un protocollo di valutazione di un cuore impiantato eterotopicamente dopo la conservazione ex situ normotermica nel modello di ratto.

Modello di ratto del trapianto di cuore eterotopico perfuso ex-situ normothermic

Questo protocollo delinea la metodologia per stabilire un modello suino che utilizza la perfusione meccanica (MP) a temperatura variabile e controllata per la conservazione del fegato del donatore, seguita dal trapianto di fegato ortotopico (OLTx). Mira a promuovere il tasso di successo di OLTx utilizzando la donazione di donatori dopo la morte circolatoria (DCD) del fegato e stabilire un modello stabile.

Conservazione della donazione suina dopo morte circolatoria (DCD) Fegato mediante perfusione e trapianto ortotopico di fegato

L'obiettivo è sviluppare un nuovo modello di perfusione polmonare ex vivo (EVLP) nei ratti in grado di sostenere una funzione polmonare costante per 4 ore durante l'EVLP e fornire all'industria specifiche di implementazione che offriranno un metodo robusto per applicare l'EVLP ai modelli di roditori.

Istituzione di un nuovo sistema di perfusione polmonare ex vivo per polmoni di ratto dopo la morte circolatoria

Il protocollo qui descrive un modello suino ad alta fedeltà di trapianto di cuore dopo la donazione dopo la morte circolatoria utilizzando la perfusione ex vivo dell'allotrapianto.

Un modello suino ad alta fedeltà di trapianto di cuore ortotopico dopo donazione dopo morte circolatoria

Questo protocollo presenta un modello di perfusione polmonare ex-vivo di ratto che incorpora un'esposizione transitoria a uno stress termico calibrato, promuovendo meccanismi protettivi endogeni per il ricondizionamento terapeutico di innesti polmonari danneggiati. L'approccio è scalabile e riproducibile e supporta lo sviluppo di terapie non farmacologiche per migliorare il successo del trapianto di polmone.

Precondizionamento termico durante la perfusione polmonare ex-vivo per la riabilitazione di innesti polmonari danneggiati prima del trapianto

Impara la tecnica di recupero polmonare rapido con raffreddamento combinata alla perfusione regionale normomica addominale per la donazione controllata dopo morte circolatoria. Questo metodo sicuro espande il pool di donatori e riduce i danni ischemici.

Approvvigionamento di recupero rapido polmonare combinato con perfusione regionale normomica addominale nella donazione controllata dopo morte circolatoria (Video) | JoVE Journal

Approvvigionamento di recupero rapido polmonare combinato con perfusione regionale normomica addominale nella donazione controllata dopo morte circolatoria

Esplora altri video