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Allenamento di resistenza aggiustato in base al dosaggio nei topi con un rischio ridotto di danni...
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Dosage-Adjusted Resistance Training in Mice with a Reduced Risk of Muscle Damage

Allenamento di resistenza aggiustato in base al dosaggio nei topi con un rischio ridotto di danni muscolari

Full Text
2,143 Views
07:29 min
August 31, 2022

DOI: 10.3791/64000-v

Morium Begam1, Neha Narayan1, Drew Mankowski1, Robert Camaj1, Nicholas Murphy1, Kevin Roseni1, Marie E. Pepin1, Jacob M. Blackmer1, Takako I. Jones2, Joseph A. Roche1

1Physical Therapy Program, Department of Health Care Sciences, Eugene Applebaum College of Pharmacy and Health Sciences,Wayne State University, 2Department of Pharmacology,University of Nevada, Reno School of Medicine

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for dosage-adjusted resistance training (DART) in mice, enabling precise adjustments to the resistance during muscle training. The technique focuses on the anterior tibial muscles and aims to enhance or maintain muscle mass and strength under various disease conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Resistance Training
  • Neurophysiology
  • Molecular Biology

Background

  • Dosage-adjusted resistance training allows tailored muscle training in small animals.
  • Focus on eccentrically biased contractions reduces injury risk.
  • The anterior tibial muscles are specifically targeted due to their crucial role in locomotion.
  • Previous methods lacked precision in resistance adjustment, impacting training efficacy.

Purpose of Study

  • To develop a reliable method for implementing DART in preclinical studies.
  • To investigate muscle response and adaptations to controlled resistance training.
  • To assess exercise tolerance and muscle injury susceptibility post-training.

Methods Used

  • The primary platform involves a DART device for resistance training.
  • The biological model used is mice, focusing on the anterior tibial muscles and sciatic nerve stimulation.
  • Electrical stimulation protocols are detailed to optimize contractions in targeted muscles.
  • Protocols include careful animal preparation and step-by-step training implementation.
  • Histological analyses of muscle damage were performed post-training.

Main Results

  • Muscle damage was minimal, with a slight increase observed in isometric training compared to DART.
  • The precise stimulation of the anterior tibial muscles improves training outcomes.
  • Training led to measurable adaptations, confirming the efficacy of DART.
  • Investigator modifications led to better accuracy in stimulation delivery and resistance adjustment.

Conclusions

  • The DART protocol enables enhanced muscle training precision, potentially aiding in neuromuscular disease research.
  • The study highlights the importance of tailored resistance training for understanding muscle dynamics.
  • Future applications could investigate various muscle conditions and recovery protocols.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of DART?
DART allows for precise manipulation of resistance levels in muscle training, which can optimize recovery and strength in preclinical studies.
How is the anterior tibial muscle targeted?
The protocol involves direct stimulation of the fibular branch of the sciatic nerve, specifically designed to activate the anterior tibial muscles.
What data does the DART method provide?
DART provides insight into muscle performance, contraction response, and potential injury mechanisms during resistance training.
How can DART be adapted for different studies?
DART can be adjusted in terms of resistance levels and training frequency to suit various experimental conditions and muscle groups.
What limitations exist with this training protocol?
The method requires precise electrode positioning and may necessitate experience for effective nerve stimulation and resistance adjustment.

Il presente protocollo descrive una tecnica unica chiamata allenamento di resistenza aggiustato dal dosaggio (DART), che può essere incorporata in studi di riabilitazione di precisione eseguiti su piccoli animali, come i topi.

Questo protocollo è uno dei primi studi che consente agli scienziati di eseguire un allenamento di resistenza aggiustato per il dosaggio nei topi in modo simile a come viene eseguito negli esseri umani. Il vantaggio principale di questa tecnica è che consente agli investigatori di regolare con precisione la resistenza contro la quale i muscoli tibiali anteriori del topo devono lavorare durante l'allenamento di resistenza. Inoltre, poiché le contrazioni muscolari sono eccentricamente distorte, c'è una minore possibilità di lesioni muscolari indotte dalla contrazione.

La nostra tecnica di allenamento di resistenza aggiustata sul dosaggio può essere incorporata in studi di base e preclinici sui topi per sviluppare interventi per il miglioramento o il mantenimento della massa muscolare e della forza in una vasta gamma di condizioni patologiche. L'aspetto più impegnativo del protocollo è quello di stimolare con precisione il ramo fibulare del nervo sciatico, che innerva i muscoli tibiali anteriori. Per ridurre la stimolazione elettrica imprecisa, regolare la posizione dell'elettrodo e l'ampiezza della stimolazione fino a quando la coppia massima di contrazione non viene registrata da un dinamometro.

Per iniziare, fornire supporto termico al mouse utilizzando una piastra riscaldante isotermica in gel e posizionare una lampada termica 1 metro sopra il mouse. Per preparare la pelle per DART o ISOM, rimuovere la pelliccia dall'arto posteriore sinistro applicando una crema depilatoria. Dopo 2 minuti, pulire la coscia con salviette imbevute di acqua distillata per rimuovere il pelo e tutta la crema residua dalla pelle.

Disinfettare la pelle con una soluzione di lavaggio allo iodio povidone e etanolo al 70%, quindi utilizzare un batuffolo di cotone pulito per applicare un protettivo sugli occhi e sulla pelle depilata per prevenire l'essiccazione. Quindi, applicare la crema al 5% di lidocaina sulla tibia per intorpidire l'area. Passare un ago ipodermico sterile da 1/2 pollice 26 gauge attraverso la parte più ampia della porzione prossimale dell'osso tibiale.

Una volta fissato il perno stabilizzatore, tenere l'ago con un emostato sterile e piegare la parte di plastica fino a quando non si rompe, quindi posizionare il mouse in posizione supina. Assicurarsi che il mouse sia ancora saldamente collegato al cono del naso per mantenere l'anestesia. Con un paio di pinzette sterili, inserire il perno tibiale in una clip a coccodrillo metallico, in modo tale che l'estremità del perno tibiale sia tenuta dal morsetto a coccodrillo.

Spostare il braccio regolabile del morsetto a coccodrillo per assicurarsi che il piede del mouse sia posizionato sulla pedana del dispositivo DART. Allacciare il piede del mouse alla pedana del dispositivo DART con nastro adesivo da laboratorio. Assicurarsi che il piede sia posizionato con un angolo di 90 gradi rispetto all'asse lungo dell'osso tibiale del topo.

Posizionare un ago ipodermico lungo 18 gauge 1,5=pollice attraverso i fori pre-forati sul goniometro del dispositivo DART per creare un arresto della plantarflessione, quindi appoggiare la pedana sull'arresto della plantarflessione. Per ottimizzare il posizionamento dell'elettrodo, posizionare un elettrodo bipolare, transcutaneo e NMES sull'aspetto inferolaterale dell'articolazione del ginocchio del topo. Utilizzare uno stimolatore elettrico di laboratorio per applicare singoli impulsi di 1 hertz per stimolare il ramo fibulare del nervo sciatico.

Osservare il tibiale anteriore, o il muscolo della pancia e il tendine TA per la prova di contrazioni di contrazione elettricamente indotte. Ora, legare la sutura alla piastra del pavimento del dinamometro, quindi ottimizzare l'ampiezza dell'uscita di tensione dallo stimolatore NMES in modo che NMES sia limitato al nervo fibulare comune e al muscolo TA. Per impostare lo stimolatore in modo da produrre treni di impulsi ripetuti, regolare i quadranti per la frequenza dell'impulso a 125 hertz, la durata del treno a 500 millisecondi e i treni al secondo a 1.

Attivare l'interruttore a levetta per ripetere i treni di impulsi. Impostare lo stimolatore per produrre treni di impulsi della durata di 500 millisecondi intervallati da un riposo di 500 millisecondi tra i treni di impulsi. Spostare l'arresto della flessione plantarflesso sul foro sul goniometro che corrisponde a 160 gradi sull'asse lungo della tibia.

In DART, affinché il muscolo TA funzioni concentricamente, applicare resistenza appendendo un peso adeguato come 5 grammi con una sutura di seta non elastica legata alla pedana del dispositivo DART. Regolare la resistenza applicando il 50% del peso massimo di 1 ripetizione. Assicurarsi che il piede tiri attraverso almeno la metà della gamma attiva disponibile di dorsiflessione.

Esegui un singolo attacco di allenamento DART che prevede 1 serie di 10 ripetizioni di contrazioni concentriche e 2 minuti di riposo tra le serie. Per l'allenamento ISOM, posizionare il piede del mouse a 160 gradi rispetto all'asse lungo della tibia. Mantenere la posizione statica fissando la sutura di seta alla pedana del dinamometro robotico.

Esegui un singolo periodo di allenamento ISOM che prevede 4 serie di 10 ripetizioni a contrazioni isometriche e 2 minuti di riposo tra le serie. Come cura post-procedurale per i topi, prendere precauzioni per mantenere l'igiene dell'arto posteriore esercitato e ridurre il dolore del sito dell'ago. I cambiamenti istologici nel muscolo TA sono stati studiati dopo 3 giorni di allenamento DART o ISOM.

La colorazione con ematossilina ed eosina indicava che l'entità del danno muscolare era bassa in entrambi i gruppi DART e ISOM, ma il danno muscolare era leggermente più evidente nel gruppo ISOM. È importante stimolare specificamente le contrazioni nei muscoli tibiali anteriori e regolare con precisione la resistenza contro cui questi muscoli devono lavorare durante l'allenamento di resistenza regolato dal dosaggio. A seguito di questa procedura, i ricercatori saranno in grado di valutare la tolleranza all'esercizio sotto forma di suscettibilità alla fatica e alle lesioni da ripetute contrazioni muscolari contro la resistenza.

Questa tecnica può essere incorporata in un'ampia varietà di applicazioni di ricerca di base e precliniche, come studi su modelli murini, di malattie neuromuscolari come distrofie muscolari e modelli murini di lesioni sportive.

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Neuroscienze Numero 186 Muscolo scheletrico allenamento di resistenza riabilitazione rigenerativa riabilitazione di precisione lesioni muscolari disferlina distrofia muscolare dei cingoli

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