Name: Separazione automatica e raccolta di sostanze correlate al cancro da campioni clinici (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-01-13T14:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 49 s
Description: Impara un protocollo automatizzato per separare e raccogliere DNA libero da cellule e cellule tumorali circolanti dal sangue intero. Questo metodo riduce la contaminazione e garantisce estrazione ad alta purezza per studi oncologici.

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Questo manoscritto è stato sostenuto in parte dal Korea Medical Device Development Fund (KMDF, Grant No. RS-2020-KD000019) e dal Korea Health Industry Development Institute (KHIDI, Grant No. HI19C0521020020).

Tutti i campioni di sangue intero sono stati ottenuti da pazienti affetti da cancro del polmone. La ricerca e l'analisi presso Clinomics sono condotte dal Cancer Genomics Research Institute e l'approvazione della ricerca IRB da parte del governo è guidata dal Comitato di revisione istituzionale dell'Asan Medical Center (IRB NO. 2021-0802) con il numero IRB registrato per la ricerca presso Clinomics.
1. Preparazione del campione
<ol><li>Raccogliere 9 ml di sangue intero in una provetta di raccolta del sangue stabile con EDTA o cfDNA.</li>
	<li>Mescolare bene capovolgendo il tubo su e giù circa 10 volte.</li>
	<li>Conservare i campioni a temperatura ambiente (RT; per la conservazione a breve termine) o a 4 °C (per la conservazione a lungo termine). Non congelare e scongelare.</li>
</ol>2. Preparazione del dispositivo
<ol><li>Premere l'interruttore di alimentazione per accendere lo strumento. NOTA: sul touchpad viene visualizzata una schermata di caricamento e lo strumento viene inizializzato. Tenere le mani lontane dallo strumento durante l'inizializzazione. La schermata di selezione della cartuccia viene visualizzata al termine dell'inizializzazione dello strumento.</li>
	<li>Selezionare la modalità campione da utilizzare. Modificare il numero di campioni premendo la freccia.</li>
</ol>3. Funzionamento del dispositivo e raccolta dei campioni
<ol><li>Caricamento della cartuccia LBx-1<ol><li>Selezionare il tipo di cartuccia sul pannello touchscreen dello strumento. Modificare il numero di campioni premendo il pulsante freccia.</li>
		<li>Aprire lo sportello dello strumento e inserire tutte le cartucce da utilizzare in ordine di numero sul portacartucce. Assicurarsi di inserire correttamente la cartuccia e il portacartucce. Se la cartuccia non è inserita correttamente, potrebbe causare danni considerevoli allo strumento.</li>
		<li>Per un totale di quattro cartucce, posizionare la cartuccia fittizia nello spazio vuoto del portacartucce.</li>
		<li>Utilizzare la rotella di supporto per montare la cartuccia e serrare il dado di bloccaggio per fissarlo.</li>
		<li>Chiudere lo sportello e premere il pulsante RUN sullo schermo del touchpad. Lo strumento chiude le valvole sulle cartucce, il che richiede circa 30 s.</li>
		<li>Seguire il messaggio per aprire lo sportello, rimuovere la ruota di supporto e rimuovere la cartuccia chiusa a valvola dal supporto della cartuccia.</li>
		<li>Posizionare la cartuccia sul tavolo e prepararsi a iniettare l'intero campione di sangue. Pipettare un massimo di 10 ml di campione di sangue intero utilizzando una pipetta sierologica. ATTENZIONE: Pericoli della manipolazione del sangue. Durante l'intera procedura di manipolazione di campioni di sangue e reagenti, è importante indossare un camice da laboratorio e guanti da laboratorio. La scheda di sicurezza fornita deve essere studiata accuratamente dagli operatori di laboratorio.</li>
		<li>Inserire la punta della pipetta in profondità nell'ingresso del campione della cartuccia e iniettare lentamente l'intero campione di sangue. NOTA Quando si utilizzano più o uguali a 9 ml di campione di sangue intero, non è necessaria l'aggiunta di soluzione salina tamponata fosfato (PBS). Quando si utilizzano meno di 9 ml di campione di sangue intero, aggiungere PBS per rendere il volume totale a 9 ml. Ad esempio, quando si utilizzano 7,2 ml di sangue intero, aggiungere 1,8 ml di PBS nell'ingresso del campione. Una pipetta sierologica o una punta di pipetta può essere utilizzata per l'iniezione di sangue intero e PBS. Quando si utilizzano meno di 8 ml di campione di sangue intero, il buffy coat non può essere recuperato anche aggiungendo 1 mL di PBS. Per la preparazione del gDNA, utilizzare 200 μL di sangue intero, che è stato separato prima di questo passaggio.</li>
		<li>Inserire le cartucce da utilizzare in ordine di numero sul portacartucce. Utilizzare la rotella di supporto per montare la cartuccia e serrare il dado di bloccaggio per fissarlo. Chiudere lo sportello e premere il pulsante OK . NOTA: Il plasma e il buffy coat vengono separati automaticamente dal sangue intero, il che richiede circa 30 minuti. ATTENZIONE Pericolo durante il funzionamento. L'apertura della porta o il contatto con lo strumento durante le operazioni di rotazione ad alta velocità può causare gravi lesioni. C'è anche il rischio di lesioni dovute al carico asimmetrico del rotore. Se si verificano vibrazioni e rumori insoliti quando lo strumento si avvia in modalità di arricchimento cellulare assistito o esperto, il posizionamento della cartuccia può essere asimmetrico. Premere immediatamente il tasto di accensione per arrestare e installare correttamente la cartuccia.</li>
		<li>Cerca il messaggio sullo schermo accompagnato da un suono di allarme, che appare quando la separazione di plasma e buffy coat è completa.</li>
		<li>Arrestare l'allarme aprendo la porta o premendo il pulsante STOP . Aprire la porta, rimuovere la cartuccia e posizionarla sul tavolo.</li>
		<li>Recuperare 3 mL di plasma dall'uscita del plasma utilizzando una punta da pipetta da 1 mL. Recuperare il buffy coat da 3 mL dall'uscita del buffy coat utilizzando una punta per pipetta da 1 mL.</li>
	</ol></li>
	<li>Caricamento della cartuccia LBx-2<ol><li>Selezionare il nome della cartuccia sul pannello touchscreen dello strumento. Modificare il numero di campioni premendo il pulsante freccia.</li>
		<li>Aprire lo sportello e inserire le cartucce da utilizzare in ordine di numero sul portacartucce.</li>
		<li>Per un totale di quattro cartucce, posizionare la cartuccia fittizia nello spazio vuoto del portacartucce.</li>
		<li>Utilizzare la rotella di supporto per montare la cartuccia e serrare il dado di bloccaggio per fissarlo. Assicurarsi di inserire correttamente la cartuccia nel supporto della cartuccia. Se la cartuccia non è inserita correttamente, potrebbe causare danni considerevoli allo strumento.</li>
		<li>Chiudere lo sportello e premere il pulsante RUN sullo schermo del touchpad. Lo strumento chiude le valvole sulla cartuccia, che richiede circa 30 s.</li>
		<li>Seguire il messaggio per aprire lo sportello, rimuovere la ruota di supporto, rimuovere la cartuccia chiusa a valvola dal supporto della cartuccia e posizionarla sul tavolo.</li>
		<li>Posizionare la cartuccia sul tavolo e prepararsi a iniettare la soluzione con gradiente di densità e l'intero campione di sangue. Controllare il volume della soluzione a gradiente di densità e della PBS da iniettare in funzione del volume dell'intero campione di sangue (Tabella supplementare 1).</li>
		<li>Pipettare la soluzione del gradiente di densità utilizzando una pipetta sierologica. Inserire la punta della pipetta in profondità nell'ingresso della cartuccia e iniettare lentamente la soluzione con gradiente di densità.</li>
		<li>Dopo aver iniettato la soluzione a gradiente di densità, pipettare l'intero campione di sangue utilizzando una pipetta sierologica. Inserire la punta della pipetta in profondità nell'ingresso del campione della cartuccia e iniettare lentamente l'intero campione di sangue. NOTA: Quando si utilizzano meno di 9 ml di campione di sangue intero, aggiungere PBS facendo riferimento a questa tabella (Tabella supplementare 1).</li>
		<li>Inserire le cartucce da utilizzare in base al numero riportato sul portacartucce. Utilizzare la rotella di supporto per montare la cartuccia e serrare il dado di bloccaggio per fissarlo. Chiudere lo sportello e premere il pulsante OK .</li>
		<li>Il plasma e la PBMC vengono separati automaticamente dal sangue intero, il che richiede circa 30 minuti. Cerca il messaggio che appare accompagnato da un suono di allarme, quando la separazione di plasma e PBMC è completa.</li>
		<li>Arrestare l'allarme aprendo la porta o premendo il pulsante STOP . Aprire la porta, rimuovere la cartuccia e posizionarla sul tavolo.</li>
		<li>Recuperare 3 mL di plasma dall'uscita del plasma utilizzando una punta da pipetta da 1 mL. Recuperare 3 mL di PBMC dalla presa PBMC utilizzando una punta per pipetta da 1 mL.</li>
	</ol></li>
	<li>Caricamento della cartuccia FAST-auto<ol><li>Selezionare la cartuccia sul pannello touch screen dello strumento. Modificare il numero di campioni premendo il pulsante freccia.</li>
		<li>Aprire lo sportello e inserire le cartucce da utilizzare in ordine di numero sul portacartucce. Per un totale di quattro cartucce, posizionare la cartuccia fittizia nello spazio vuoto del portacartucce.</li>
		<li>Utilizzare la rotella di supporto per montare la cartuccia e serrare il dado di bloccaggio per fissarlo.</li>
		<li>Chiudere lo sportello e premere il pulsante RUN sullo schermo del touchpad. Lo strumento chiude le valvole sulla cartuccia, che richiede circa 30 s.</li>
		<li>Seguire il messaggio per aprire lo sportello, rimuovere la ruota di supporto e rimuovere la cartuccia chiusa a valvola dal supporto della cartuccia.</li>
		<li>Posizionare la cartuccia sul tavolo e prepararsi a iniettare la soluzione PBS e il campione di sangue intero. Pipettare 6 mL di soluzione PBS utilizzando una pipetta sierologica. Inserire la punta della pipetta in profondità nell'ingresso PBS della cartuccia e iniettare lentamente 6 mL della soluzione PBS.</li>
		<li>Dopo aver iniettato la soluzione PBS, pipettare 3 ml di sangue intero o campione di PBMC ottenuto da LBx-2 utilizzando una pipetta sierologica, che è stata precedentemente risciacquata con BSA all'1% per evitare l'attaccamento del residuo. Inserire la punta della pipetta in profondità nell'ingresso del campione della cartuccia e iniettare lentamente l'intero campione di sangue.</li>
		<li>Inserire le cartucce da utilizzare in ordine di numero sul portacartucce. Utilizzare la rotella di supporto per montare la cartuccia e serrare il dado di bloccaggio per fissarlo. Chiudere lo sportello e premere il pulsante OK .</li>
		<li>I CTC sono arricchiti automaticamente dal sangue intero, il che richiede circa 15 minuti. Cerca un messaggio che appaia accompagnato da un suono di allarme quando l'arricchimento dei CTC è completo. Arrestare l'allarme aprendo la porta o premendo il pulsante STOP .</li>
		<li>Aprire la porta, rimuovere la cartuccia e posizionarla sul tavolo. Inserire il dispositivo di rimozione della piastra posteriore (BPR) nei quattro fori sulla parte anteriore della cartuccia. Premere l'ala blu scuro con i pollici di entrambe le mani, quindi premere il corpo azzurro fino a quando non scatta.</li>
		<li>Rimuovere con cautela il corpo della cartuccia sollevandolo. Raccogliere molto delicatamente la membrana filtrante dal bordo usando una pinzetta. Assicurarsi di utilizzare il bordo esterno (la parte del bordo larga 1 mm) della membrana filtrante per pizzicare e tenere la membrana filtrante.</li>
		<li>Posizionare con cautela la membrana filtrante (su cui risiedono i CTC arricchiti) in un tubo da 1,5 mL per la preparazione degli acidi nucleici. Se necessario, recuperare il sangue filtrato all'uscita del sangue utilizzando una punta di pipetta da 1 ml.</li>
	</ol></li>
</ol>4. Manutenzione del sistema
<ol><li>Preparazione per la pulizia e la disinfezione dello strumento<ol><li>Pulire tutte le superfici accessibili dello strumento e degli accessori una volta alla settimana utilizzando etanolo e fazzoletto essiccato, e anche immediatamente quando contaminati.</li>
		<li>Pulire regolarmente la ciotola e l'albero del rotore utilizzando alcool (etanolo e isopropanolo) o disinfettanti a base alcolica.</li>
	</ol></li>
	<li>Pulizia e disinfezione dello strumento NOTA: per la risoluzione generale dei problemi e altre note sulla macchina, fare riferimento alla tabella supplementare 2.<ol><li>Spegnere lo strumento utilizzando l'interruttore di alimentazione principale. Scollegare la spina di alimentazione dall'alimentatore.</li>
		<li>Aprire lo sportello e pulire e disinfettare tutte le superfici accessibili dello strumento, compreso il cavo di alimentazione, utilizzando un panno umido e i detergenti consigliati.</li>
		<li>Controllare che l'albero del rotore non sia danneggiato. Ispezionare lo strumento per verificare la presenza di corrosione e danni.</li>
		<li>Collegare lo strumento all'alimentatore solo se è completamente asciutto dentro e fuori.</li>
	</ol></li>
	<li>Scollegare la spina di alimentazione principale e rimuovere il portafusibili. Il portafusibili si trova sopra la presa di corrente. Sostituire il fusibile usato con uno di ricambio dal contenitore.</li>
</ol>

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<li>Paterlini-Brechot, P., Benali, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumor+cells+%28CTC%29+detection%3A+clinical+impact+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Letters%22%5BJournal%5D)">Circulating tumor cells (CTC) detection: clinical impact and future directions.</a> Cancer Letters. 253 (2), 180-204 (2007).</li>
<li>Loeian, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liquid+biopsy+using+the+nanotube-CTC-chip%3A+capture+of+invasive+CTCs+with+high+purity+using+preferential+adherence+in+breast+cancer+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Liquid biopsy using the nanotube-CTC-chip: capture of invasive CTCs with high purity using preferential adherence in breast cancer patients.</a> Lab on a Chip. 19 (11), 1899-1915 (2019).</li>
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<li>Sharma, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumor+cell+isolation%2C+culture%2C+and+downstream+molecular+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+advances%22%5BJournal%5D)">Circulating tumor cell isolation, culture, and downstream molecular analysis.</a> Biotechnology advances. 36 (4), 1063-1078 (2018).</li>
<li>Bennett, C. W., Berchem, G., Kim, Y. J., El-Khoury, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+DNA+and+next-generation+sequencing+in+the+service+of+personalized+medicine+for+lung+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">Cell-free DNA and next-generation sequencing in the service of personalized medicine for lung cancer.</a> Oncotarget. 7 (43), 71013(2016).</li>
<li>Lowes, L. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+tumor+cells+%28CTC%29+and+cell-free+DNA+%28cfDNA%29+workshop+2016%3A+scientific+opportunities+and+logistics+for+cancer+clinical+trial+incorporation%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Molecular+Sciences%22%5BJournal%5D)">Circulating tumor cells (CTC) and cell-free DNA (cfDNA) workshop 2016: scientific opportunities and logistics for cancer clinical trial incorporation.</a> International Journal of Molecular Sciences. 17 (9), 1505(2016).</li>
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</ol>

Gli autori non hanno conflitti di interesse relativi a questo lavoro.

La quantità e la concentrazione di cfDNA e CTC dipende dall'individuo, dallo stadio e dal tipo di cancro. Dipende anche dalle condizioni del paziente 2,4,5,10,20. In particolare, nelle fasi iniziali o precancerose del cancro, le concentrazioni di sostanze correlate al cancro sono molto basse, quindi c'è un'alta possibilità che non possa essere rilevato. Tuttav...

La diagnosi precoce e accurata di varie malattie, incluso il cancro, è il fattore più importante nello stabilire una strategia di trattamento 1,2,3,4. In particolare, la diagnosi precoce del cancro è strettamente correlata all'aumento delle possibilità di sopravvivenza per il paziente 5,6,7,8. Recentemente, le biopsie liquide sono state sotto i riflettori per la diagnosi precoce del cancro. I tumori solidi subiscono angiogenesi e rilasciano varie sostanze nel sangue. In particolare, DNA circolanti (ctDNA), RNA circolanti (ctRNA), proteine, vescicole come esosomi e cellule tumorali circolanti (CTC) sono stati trovati nel sangue di pazienti oncologici 2,9. Sebbene ci siano differenze nella quantità di queste sostanze, sono costantemente osservate non solo nelle fasi iniziali ma anche nelle fasi successive 6,10. Tuttavia, queste differenze individuali sono molto elevate; ad esempio, la quantità di DNA privo di cellule (cfDNA) contenente ctDNA è inferiore a 1.000 ng e il numero di CTC è inferiore a 100 in 10 ml di sangue intero da pazienti oncologici11,12,13. Molti studi hanno caratterizzato il cancro utilizzando queste sostanze presenti in quantità minori (cioè cfDNA, ctDNA e CTC). Per ottenere risultati accurati, è importante separare accuratamente piccole quantità di sostanze con elevata purezza13,14. I metodi di centrifugazione convenzionali sono comunemente usati, ma sono difficili da gestire e hanno una bassa purezza a seconda dell'abilità dell'utente. Dalla scoperta dei CTC, sono state sviluppate diverse tecniche di separazione, come la centrifugazione o la separazione del grado di densità, l'immunobead e i metodi microfluidici. Diverse tecniche di contenimento sono state sviluppate dalla scoperta dei CTC. Tuttavia, queste tecniche sono spesso limitate quando è necessario isolare le cellule dai vari chip e membrane utilizzati per isolarle15. Inoltre, i metodi di etichettatura richiedono attrezzature come FACS e ci sono limiti al processo a valle a causa della contaminazione dell'etichettatura.
Recentemente, l'uso di biopsie liquide è aumentato e sono stati condotti vari studi per la diagnosi precoce del cancro. Sebbene questo metodo sia semplice, ci sono ancora difficoltà nell'analisi a valle, e vari studi stanno tentando di superare queste difficoltà16,17. Inoltre, molti siti, compresi gli ospedali, richiedono metodi automatizzati, riproducibili e ad alta purezza che siano convenienti da usare. Qui, abbiamo sviluppato un lab-on-a-disc per la separazione automatica delle sostanze dai campioni di sangue dopo una biopsia liquida. Questi dispositivi si basano sul principio della centrifugazione, della microfluidica e della cattura cellulare delle dimensioni dei pori. Esistono tre tipi di dischi: LBx-1 può acquisire plasma e buffy coat, mentre LBx-2 può acquisire plasma e PBMC da sangue intero con un volume inferiore a 10 ml; FAST-auto può anche acquisire CTC utilizzando una membrana rimovibile dal disco. È possibile utilizzare fino a quattro di ciascun disco in una sola esecuzione. Soprattutto, il vantaggio di questo dispositivo e metodo è che può ottenere una varietà di sostanze derivate dal cancro dallo stesso campione utilizzando una piccola quantità di sangue. Ciò significa che il sangue del paziente deve essere prelevato solo una volta. Inoltre, ha il vantaggio di escludere errori dovuti a differenze nel periodo di prelievo del sangue. Questa piattaforma è facile da usare e fornisce risultati accurati per biopsie liquide e applicazioni a valle. In questo protocollo, viene introdotto l'utilizzo del dispositivo e della cartuccia.

<table><tbody><tr><td>1% BSA (albumina sierica bovina)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3059</td><td></td></tr><tr><td>Provetta per microcentrifuga da 1,5 mL</td><td>Axygen</td><td>MCT-150-C-S Provetta</td><td></td></tr><tr><td>conica da 15 mL</td><td>SPL</td><td>50015</td><td></td></tr><tr><td>4150 Sistema</td><td>TapeStation Agilent</td><td>G2992AA</td><td>Nastro per screening del DNA senza cellule (Agilent, 5067-5630), tampone per campioni di DNA senza cellule (Agilent, 5067-5633)</td></tr><tr><td>Kit di isolamento del DNA senza cellule ad alta efficienza Apostle MiniMax&nbsp;</td><td>Apostolo</td><td>A17622-250</td><td>5 mL X 50 provette</td></tr><tr><td>per la raccolta del sangue BD Vacutainer Provetta per la raccolta del sangue</td><td>BD</td><td>367525</td><td>EDTA (10 mL)</td></tr><tr><td>BioViewCCBS</td><td>Clinomics</td><td></td><td>BioView Clinomics-Sistema Bioview personalizzato. Apparecchiatura di personalizzazione basata su microscopio Allegro Plus</td></tr><tr><td>Anticorpo monoclonale CD45 (HI30), PE-Alexa Fluor 610</td><td>Invitrogen</td><td>MHCD4522</td><td></td></tr><tr><td>cartuccia FAST Auto</td><td>Clinomics</td><td>Cartuccia CLX-M3001</td><td></td></tr><tr><td>LBx-1</td><td>Cartuccia Clinomics</td><td>CLX-M4101</td><td></td></tr><tr><td>LBx-2 Strumento</td><td>Clinomics</td><td>CLX-M4201</td><td></td></tr><tr><td>OPR-2000</td><td>Clinomics</td><td>CLX-I2001</td><td></td></tr><tr><td>Vetro di copertura</td><td>Marienfeld Superior</td><td>HSU-0101040</td><td></td></tr><tr><td>DynaMag 2 Supporto magnetico</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>12321D</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll Paque Solution</td><td>GE healthcare</td><td>17-1440-03</td><td>soluzione di gradiente di densità</td></tr><tr><td>Puntale filtrante, 10 &; L</td><td>Axygen</td><td>AX-TF-10</td><td>Si consigliano puntali per pipette con barriere aerosol per aiutare a prevenire la contaminazione incrociata.</td></tr><tr><td>Punta filtro, 200 & micro; L</td><td>Axygen</td><td>AX-TF-200</td><td>Si consigliano puntali per pipette con barriere aerosol per aiutare a prevenire la contaminazione incrociata.</td></tr><tr><td>Ugello filtro, 100 & micro; L</td><td>Axygen</td><td>AX-TF-100</td><td>Si consigliano puntali per pipette con barriere per aerosol per aiutare a prevenire la contaminazione incrociata.</td></tr><tr><td>Punta con filtro, 1000 & micro; L</td><td>Axygen</td><td>AX-TF-1000</td><td>Si consigliano puntali per pipette con barriere aerosol per aiutare a prevenire la contaminazione incrociata.</td></tr><tr><td>FITC anti-umano CD326 (EpCAM) Anticorpo</td><td>BioLegend</td><td>324204</td><td></td></tr><tr><td>FITC Topo Anti-Citocheratina</td> umana <td>BD Biosciences</td><td>347653</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione di formaldeide (35% in peso in H2O)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>433284</td><td></td></tr><tr><td>Kimtech Science Tergicristalli</td><td>Yuhan-Kimberly</td><td>41117</td><td></td></tr><tr><td>Guanto in lattice</td><td>Microflex</td><td>63-754</td><td></td></tr><tr><td>Rack di separazione delle perline magnetiche</td><td>V& P Scientific</td><td>VP 772F2M-2</td><td></td></tr><tr><td>Pipettaggio manuale&nbsp; (0,5-10 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3120000020</td><td></td></tr><tr><td>Pipettaggio manuale&nbsp; (2-20 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3120000038</td><td></td></tr><tr><td>Pipettaggio manuale&nbsp; (10-100 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3120000046</td><td></td></tr><tr><td>Pipettaggio manuale&nbsp; (20-200 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3120000054</td><td></td></tr><tr><td>Pipettaggio manuale&nbsp; (100-1000 &micro; L)</td><td>Eppendorf</td><td>3120000062</td><td></td></tr><tr><td>Mezzo di montaggio con DAPI&nbsp;- Acquoso, Fluoroshield</td><td>abcam</td><td>ab104139</td><td></td></tr><tr><td>Controllo normale delle IgG umane</td><td>R& D Systems</td><td>1-001-A</td><td></td></tr><tr><td>OLYMPUS BX-UCB</td><td>Olympus</td><td>9217316</td><td></td></tr><tr><td>Pan citocheratina anticorpo monoclonale (AE1/AE3), Alexa Fluor 488</td><td>Invitrogen</td><td>53-9003-82</td><td></td></tr><tr><td>PBS (soluzione salina tamponata con fosfato)</td><td>Corning</td><td>21-040CVC</td><td></td></tr><tr><td>Pipet Aid</td><td>portatile Drummond</td><td>4-000-201</td><td></td></tr><tr><td>Vetrino</td><td>scorrevole Marienfeld Superior</td><td>HSU-1000612</td><td></td></tr><tr><td>StainTray Scatola per colorazione</td><td>Pipetta</td> sierologica sterile Simport <td>M920</td><td></td></tr><tr><td>(10 mL)</td><td>SPL</td><td>91010</td><td></td></tr><tr><td>Triton&nbsp; Soluzione X-100</td><td>Sigma Aldrich</td><td>93443</td><td></td></tr><tr><td>TWEEN&nbsp; 20</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P7949</td><td></td></tr><tr><td>Sangue</td><td></td><td></td> intero <td>conservato a 4-8 gradi C raccogliendo in provetta stabile EDTA o cfDNA : Se il sangue intero è insufficiente in 9 ml, aggiungere PBS (soluzione salina tamponata con fosfato) quanto necessario.</td></tr><tr><td>X-Cite 120Q (illuminatore per lampada a fluorescenza)</td><td>Excelitas</td><td>010-00157</td><td></td></tr></tbody></table>

separazione automatica e raccolta di sostanze correlate al cancro da campioni clinici

Automatic Separation and Collection of Cancer-Related Substances from Clinical Samples

Recentemente, le biopsie liquide sono state utilizzate per diagnosticare varie malattie, tra cui il cancro. I fluidi corporei contengono molte sostanze, tra cui cellule, proteine e acidi nucleici provenienti da tessuti normali, ma alcune di queste sostanze provengono anche dall'area malata. L'indagine e l'analisi di queste sostanze nei fluidi corporei svolgono un ruolo fondamentale nella diagnosi di varie malattie. Pertanto, è importante separare accuratamente le sostanze richieste e vengono sviluppate diverse tecniche da utilizzare a tale scopo.
Abbiamo sviluppato un tipo di dispositivo e piattaforma lab-on-a-disc chiamato CD-PRIME. Questo dispositivo è automatizzato e ha buoni risultati per la contaminazione del campione e la stabilità del campione. Inoltre, ha vantaggi di una buona resa di acquisizione, un breve tempo di funzionamento e un'elevata riproducibilità. Inoltre, a seconda del tipo di disco da montare, il plasma contenente DNA privo di cellule, cellule tumorali circolanti, cellule mononucleate del sangue periferico o buffy coat può essere separato. Pertanto, l'acquisizione di una varietà di materiali presenti nei fluidi corporei può essere effettuata per una varietà di applicazioni a valle, incluso lo studio dell'omica.

L'obiettivo di questa tecnica è quello di isolare facilmente e automaticamente le sostanze associate al cancro dal sangue intero. In particolare, chiunque può utilizzare questa tecnica in tutti i campi adatti di ricerca e analisi. La separazione simultanea e riproducibile di più sostanze in un singolo campione di sangue è significativa nelle biopsie liquide. I dischi LBx-1 e LBx-2 sono utilizzati per isolare il plasma e il buffy coat o PBMC dal sangue intero. La Figura 1 mostra i materiali s...

Questo documento descrive l'applicazione di apparecchiature automatizzate per separare e raccogliere in modo semplice ed efficiente sostanze, come il DNA privo di cellule e le cellule tumorali circolanti, dal sangue intero.

Separazione automatica e raccolta di sostanze correlate al cancro da campioni clinici

Recently, liquid biopsies have been used to diagnose various diseases, including cancer. Body fluids contain many substances, including cells, proteins, ...

Il nostro protocollo è facile da usare. Usando questa tecnica, chiunque può facilmente isolare il componente dal sangue. La contaminazione può essere ridotta al minimo e i materiali possono essere separati con precisione.Con l'automazione e l'istituzione di questo protocollo, i ricercatori possono facilmente ottenere sostanze correlate al cancro con elevata purezza, il che è utile per vari studi a valle. In particolare, si prevede che apporterà importanti vantaggi per la ricerca sugli utenti finali. A dimostrare la loro procedura sarà Jay Jeong, ricercatore senior e assistente manager presso il Cancer Genomics Research Institute.Per iniziare, caricare la cartuccia LBx 1 selezionando il tipo di cartuccia sul pannello touchscreen dello strumento. Premere il pulsante freccia per modificare il numero di campioni. Quindi, aprire lo sportello dello strumento e inserire tutte le cartucce da utilizzare in ordine di numero sul portacartucce.Per un totale di quattro cartucce, posizionare la cartuccia fittizia nello spazio vuoto del portacartucce. Utilizzare la rotella di supporto per montare la cartuccia e serrare il dado di bloccaggio per fissarlo. Chiudere lo sportello e premere il pulsante di esecuzione sullo schermo del touchpad.Lo strumento chiude le valvole sulle cartucce che richiede circa 30 secondi. Segui il messaggio per aprire la porta. Rimuovere la ruota di supporto e rimuovere la cartuccia chiusa a valvola dal supporto della cartuccia.Pipettare un massimo di 10 millilitri di un campione di sangue intero utilizzando una pipetta sierologica. Inserire la punta della pipetta in profondità nell'ingresso del campione della cartuccia e iniettare lentamente l'intero campione di sangue. Dopo aver inserito le cartucce nello strumento, chiudere lo sportello dello strumento e premere il pulsante OK.I mantelli di plasma e buffy vengono automaticamente separati dal sangue intero, il che richiede circa 30 minuti. Una volta separati il plasma e il buffy coat, apparirà un messaggio sullo schermo accompagnato da un suono di allarme. Arrestare l'allarme aprendo la porta o premendo il pulsante di arresto.Apri la porta. Rimuovere la cartuccia e posizionarla sul tavolo. Recuperare tre millilitri di plasma dall'uscita del plasma utilizzando una punta per pipetta da un millilitro.Quindi, recuperare tre millilitri del buffy coat dall'uscita del buffy coat usando una punta di pipetta da un millilitro. Quindi, caricare la cartuccia LBx 2 selezionando il nome della cartuccia sul pannello touchscreen dello strumento. Premere il pulsante freccia per modificare il numero di campioni e seguire la stessa procedura indicata per la cartuccia LBx 1 per inserire la cartuccia nel supporto della cartuccia.Dopo aver inserito la cartuccia e chiuso lo sportellone, premere il pulsante di esecuzione sullo schermo del touchpad. Seguire la procedura illustrata in precedenza per rimuovere la cartuccia chiusa a valvola dal supporto della cartuccia e posizionarla sul tavolo. Pipettare la soluzione del gradiente di densità utilizzando una pipetta sierologica.Inserire la punta della pipetta in profondità nell'ingresso della cartuccia e iniettare lentamente la soluzione. Quindi, pipettare l'intero campione di sangue e iniettarlo lentamente nell'ingresso del campione. Dopo aver inserito e fissato la cartuccia, chiudere lo sportello e premere il pulsante OK.Una volta che il plasma e il PBMC sono automaticamente separati dal sangue intero, apparirà un messaggio accompagnato da un suono di allarme. Aprire lo sportello e rimuovere la cartuccia. Recuperare tre millilitri di plasma dall'uscita del plasma utilizzando una punta di pipetta da un millilitro, quindi recuperare tre millilitri di PBMC dall'uscita PBMC.Allo stesso modo, per la cartuccia FAST-auto, dopo aver rimosso la cartuccia chiusa a valvola dal supporto della cartuccia, iniettare sei millilitri della soluzione PBS nell'ingresso PBS della cartuccia. Quindi, pipettare tre millilitri di sangue intero o buffy coat ottenuto da LBx 1, o campione PBMC ottenuto da LBx 2, e iniettare lentamente il campione nell'ingresso del campione della cartuccia. Dopo aver inserito la cartuccia e averla fissata, chiudere lo sportello e premere il pulsante OK.Una volta completato l'arricchimento automatico dei CTC, interrompere l'allarme. Rimuovere la cartuccia e inserire il dispositivo di rimozione della piastra posteriore, o BPR, nei quattro fori sulla parte anteriore della cartuccia. Premere l'ala blu scuro con i pollici di entrambe le mani e quindi premere il corpo azzurro fino a quando non scatta.Rimuovere con cautela il corpo della cartuccia sollevandolo. Molto delicatamente, raccogliere la membrana del filtro dal bordo usando una pinzetta e posizionare la membrana in un tubo da 1,5 millilitri per la preparazione dell'acido nucleico o su un vetro diapositiva per la colorazione. Se necessario, recuperare il sangue filtrato all'uscita del sangue utilizzando una punta di pipetta da un millilitro.I cfDNA estratti sono stati valutati utilizzando Bioanalyzer e i nastri dello schermo cfDNA sono stati utilizzati insieme a una scala elettronica. La linea verde è stata utilizzata per allineare la scala e il campione. I segni del triangolo indicano la banda del DNA.La maggior parte del cfDNA ha una lunghezza di 166 coppie di basi e alcune esistono in multipli interi di lunghezza. Di solito, la concentrazione di cfDNA misura fino alle dimensioni di 50-700 coppie di basi. Sebbene ci sia una differenza nella quantità ottenuta da ogni singolo campione, come 8,47 nanogrammi per millilitro e 5,2 nanogrammi per millilitro, i risultati dell'estrazione del cfDNA sono stati buoni sia per la concentrazione che per la distribuzione delle dimensioni in tutti i casi.Questi risultati indicano che il metodo LBx 1 separa accuratamente il plasma contenente cfDNA. In FAST-auto, la membrana è stata rimossa e colorata con anticorpi fluorescenti per rilevare CTC e globuli bianchi. La membrana colorata, posta su vetrini, è stata osservata al microscopio a fluorescenza.Dopo la colorazione della membrana, le cellule mostrano segnali DAPI o positivi nucleari in blu, mentre EpCAM e CK o CTC positivi sono evidenziati in verde e CD45 o WBC positivi sono evidenziati in rosso. Non è difficile rimuovere la membrana. Tuttavia, è necessario fare attenzione alla perdita e alla contaminazione dei CTC.Sangue intero, PBMC e buffy coat sono tutti disponibili. Invece, devi solo impostare l'intero volume. Possono essere utilizzati anche altri liquidi, anche se saranno necessari test.Questa tecnica può essere utilizzata direttamente negli ospedali e la sostanza può essere ottenuta rapidamente.

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