Name: Legatura coronaria sinistra: un modello chirurgico murino di infarto miocardico (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-08-09T14:45:00.000+00:00
Duration: 5 min 48 s
Description: Scopri la legatura dell'arteria coronaria sinistra nei topi per studiare la patofisiologia e la risposta infiammatoria post-infarto. Questo modello chirurgico offre un metodo riproducibile per la ricerca cardiovascolare.

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Questo lavoro è stato supportato da sovvenzioni del National Institute of Health (R01HL143967, R01HL142629, R01AG069399 e R01DK129339), AHA Transformational Project Award (19TPA34910142), AHA Innovative Project Award (19IPLOI34760566) e ALA Innovation Project Award (IA-629694) (a PD).

Il presente protocollo di studio è stato esaminato e approvato dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) dell'Università di Pittsburgh. Per questi esperimenti sono stati utilizzati otto topi femmina C57BL / 6J di 1 anno del peso di 24-30 g. Circa il 100% e almeno l'80% dei topi sono sopravvissuti rispettivamente nelle prime 24 ore e 28 giorni.
1. Preparazione e intubazione endotracheale dei topi
<ol><li>Preriscaldare uno sterilizzatore a sfere (vedere Tabella dei materiali) a 250 °C e posizionarvi strumenti chirurgici autoclavati per alcuni minuti.</li>
	<li>Anestetizzare il topo in una camera di induzione con isoflurano al 3% e 1 L/min di ossigeno per 5 min.</li>
	<li>Garantire la profondità dell'anestesia nel mouse controllando la risposta a un pizzico fermo del dito.</li>
	<li>Pesare il topo per stimare il dosaggio del farmaco analgesico preoperatorio, buprenorfina (0,1 mg/kg). Iniettare il farmaco per via intraperitoniale.</li>
	<li>Taglia la pelliccia sul lato sinistro del torace usando un rasoio elettrico.</li>
	<li>Disinfettare il sito chirurgico con povidone-iodio e etanolo al 70% tre volte.</li>
	<li>Posizionare il mouse in posizione supina su una tavola inclinata. Fissare la testa e gli arti del mouse utilizzando una fascia elastica attaccata rispettivamente agli incisivi superiori e al nastro adesivo. Applicare lubrificante oftalmico sterile sugli occhi per prevenire la secchezza durante l'anestesia.</li>
	<li>Apri la mascella e tira delicatamente la lingua fuori dalla cavità orale.</li>
	<li>Identificare l'apertura della laringe illuminando l'orofaringe usando un laringoscopio (vedere Tabella dei materiali).</li>
	<li>Tagliare circa 0,5 cm da un ago del catetere da 24 G e inserire l'ago smussato nello schermo di plastica. Dirigere l'ago smussato con lo scudo di plastica nella trachea. Estrarre l'ago, lasciando lo scudo di plastica nella trachea.</li>
	<li>Impostare il ventilatore (vedi Tabella dei materiali) su una frequenza respiratoria di 137 battiti al minuto (ottimizzata per i topi utilizzati in questo studio) e volume corrente 0,18 cc. Collegare i tubi del respiratore allo schermo del catetere e confermare la corretta intubazione cercando un movimento toracico sincronizzato con il ventilatore.</li>
	<li>Scollegare il tubo del respiratore dalla protezione del catetere e posizionare l'animale in posizione supina su una tavola chirurgica preriscaldata a temperatura controllata. Ricollegare il mouse al ventilatore.</li>
</ol>2. Legatura permanente dell'arteria coronaria sinistra
<ol><li>Disinfettare il sito chirurgico con povidone-iodio e alcool al 70%. Applicare un drappo sterile con un foro di dimensioni quarte al centro per fissare il sito chirurgico. Sollevare delicatamente la pelle con un paio di pinze e praticare una piccola incisione trasversale cutanea (1,5-2 cm) lungo la linea tra i muscoli pettorali maggiori e minori sinistro usando un paio di forbici chirurgiche. NOTA: Le forbici sono state utilizzate per eseguire l'incisione in quanto fornisce il controllo richiesto sulla profondità e sulla direzione del taglio.</li>
	<li>Separare i muscoli pettorali sottostanti con una pinza e forbici da dissezione. I muscoli sono stati separati usando divaricatori attaccati a elastici.</li>
	<li>Fai un'incisione nel terzo spazio intercostale con un paio di micro forbici seguendo l'angolo naturale della gabbia toracica. In questa fase, è necessario prestare estrema attenzione per prevenire lesioni al cuore e ai polmoni.</li>
	<li>Allungare delicatamente le costole usando i divaricatori per esporre il ventricolo sinistro. Spostare il grasso pericardico da parte e individuare l'LCA, che corre dal bordo dell'atrio sinistro verso l'apice del cuore.</li>
	<li>Passa un 8-0 sutura di nylon sotto l'LCA con l'aiuto di un portaaghi. Ligare la LCA con un doppio nodo seguito da un secondo nodo (un nodo del chirurgo modificato). NOTA: Lo sbiancamento del ventricolo inferiore sinistro conferma una legatura LCA di successo. Oltre a questo, si consiglia anche la misurazione della troponina, il monitoraggio ECG (elevazione ST), la risonanza magnetica eco/cardio-dipendente in vivo o le immagini micro-CT per confermare le lesioni MI comparabili.</li>
	<li>Rimuovere i divaricatori e inserire un ago da catetere da 22 G nella cavità toracica. Rimuovere l'ago, lasciando la punta dello scudo di plastica nella cavità toracica. Chiudere la gabbia toracica utilizzando una sutura di nylon 4-0.</li>
	<li>Collegare una siringa allo schermo di plastica da 22 G e rimuovere lentamente l'aria in eccesso intrappolata nella cavità toracica premendo delicatamente il torace per stabilire una pressione dell'aria negativa. Rimuovere lo scudo di plastica.</li>
	<li>Chiudere la pelle con una sutura di nylon 4-0.</li>
	<li>Spegnere l'alimentazione di isoflurano. In questa fase, il mouse è sul ventilatore che fornisce ossigeno.</li>
</ol>3. Assistenza post-operatoria
<ol><li>Spegnere il ventilatore una volta iniziata la respirazione spontanea. NOTA: La procedura richiede circa 30-35 minuti per animale dalla preparazione dei topi fino a questa fase.</li>
	<li>Tenere il mouse sotto una lampada di calore e monitorarlo fino a quando non è sveglio. L'animale non deve essere lasciato incustodito fino a quando non ha recuperato abbastanza coscienza per mantenere la recumbency sternale.</li>
	<li>Dopo l'intervento chirurgico, posizionare l'animale in una gabbia separata e riportarlo nella gabbia originale con altri animali solo dopo che si è completamente ripreso.</li>
	<li>Monitorare il mouse quotidianamente per qualsiasi segno di dolore o disagio.</li>
	<li>Continuare l'iniezione intraperitoneale di buprenorfina (0,1 mg/kg) ogni 6-8 ore per altri 2 giorni dopo l'intervento.</li>
</ol>4. Valutazione ecocardiografica
NOTA: L'ecocardiografia è stata eseguita per valutare i parametri di insufficienza cardiaca il giorno 28 dopo l'infarto miocardico.
<ol><li>Dopo 28 giorni dall'intervento, anestetizzare i topi con il 3% di isoflurano e 1 L/min di ossigeno, applicare un lubrificante oftalmico sterile sugli occhi e rimuovere i peli del torace con una crema depilatoria. Disinfettare l'area del torace con povidone-iodio e etanolo al 70% tre volte.</li>
	<li>Assicurare i topi anestetizzati in cima alla piattaforma di imaging (vedi Tabella dei materiali) in posizione supina e mantenere un livello costante di anestesia durante tutta la procedura utilizzando un cono nasale collegato al sistema anestetico (1% -2% di isoflurano e 1 L / min di ossigeno).</li>
	<li>Fissare le quattro zampe agli elettrodi ECG con gel per elettrodi (vedere la tabella dei materiali). Monitorare la temperatura dell'animale inserendo una sonda rettale (vedi Tabella dei materiali).</li>
	<li>Applicare il gel di scansione (vedi Tabella dei materiali) sul torace, posizionare il trasduttore verticalmente, abbassarlo sulla linea parasternale (parallela al torace) e ruotare di 35° in senso antiorario per ottenere la vista dell'asse lungo parasternale del ventricolo sinistro.</li>
	<li>Toccare il pulsante di imaging in modalità B sul software di imaging (vedere Tabella dei materiali) per ottenere una visione completa dell'asse lungo del cuore. Regolare le dimensioni e la luminosità del cancello e salvare le immagini utilizzando Save Clip o Save Frame per misurazioni successive16.</li>
	<li>Passare alla modalità M (modalità movimento) e posizionare l'asse M-mode a livello del muscolo papillare. Regola le dimensioni del gate e tocca il pulsante M-mode Start. Salvate le immagini utilizzando Save Clip o Save Frame16,17.</li>
	<li>Poiché il processo di acquisizione delle immagini in modalità 4D è automatizzato, verificare che i segnali ECG e respirazione siano attivi (Figura 1) prima di acquisire i dati.</li>
	<li>Inizia ad acquisire i dati in B-Mode. Aprire il pannello di scansione 4D e avviare il motore 3D. Impostare i parametri dell'immagine nel pannello di scansione 4D e toccare il pulsante Scansione per iniziare la scansione. Dopo aver esaminato le immagini nella vista 2D, caricarle in modalità 4D utilizzando il pulsante Carica in 4D .</li>
</ol>

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</ol>

Gli autori non hanno alcun conflitto di interessi da rivelare.

Il modello murino di infarto miocardico sta guadagnando popolarità nei laboratori di ricerca cardiovascolare e questo studio descrive un modello di infarto miocardico riproducibile e clinicamente rilevante. Questo protocollo migliora il processo di legatura LCA in diversi modi. Per cominciare, si evita l'uso di anestetici pre-operatori iniettabili come xilazina / ketamina o pentobarbital di sodio14,15. È stata utilizzata solo l'anestesia con isoflurano, che aiuta...

Le malattie cardiovascolari sono una delle principali preoccupazioni per la salute pubblica che mietono 17,9 milioni di vite ogni anno, rappresentando il 31% della mortalità globale1. Il tipo più diffuso di anomalia cardiovascolare è la malattia coronarica e l'infarto miocardico (MI) è una delle principali manifestazioni della malattia coronarica2. L'infarto miocardico è solitamente causato dall'occlusione trombotica di un'arteria coronaria dovuta alla rottura di una placca vulnerabile3. L'ischemia risultante provoca profondi cambiamenti ionici e metabolici nel miocardio interessato, nonché una rapida diminuzione della funzione sistolica. L'infarto miocardico provoca la morte dei cardiomiociti, che può ulteriormente portare a disfunzione ventricolare e insufficienza cardiaca4.
La ricerca sull'infarto miocardico nei pazienti è limitata a causa della scarsità di tessuti ottenuti da pazienti con infartomiocardico 5. Pertanto, i modelli murini di infarto miocardico sono utili sia nello studio dei meccanismi della malattia che nello sviluppo di potenziali bersagli terapeutici. I modelli murini di IM attualmente disponibili includono modelli di ischemia irreversibile (LCA e metodi di ablazione) e modelli di riperfusione (ischemia/riperfusione, I/R)6. La legatura permanente dell'arteria coronaria sinistra (LCA) nei topi è il metodo più utilizzato e imita la fisiopatologia e l'immunologia dell'infarto miocardico nei pazienti 7,8,9. L'infarto miocardico permanente può anche essere indotto da metodi di ablazione, che comportano danni elettrici o criolesioni. I metodi di ablazione sono in grado di generare infarto di dimensioni uniformi nella posizione precisa10. D'altra parte, la formazione di cicatrici, la morfologia dell'infarto e i meccanismi di segnalazione molecolare possono variare tra i metodi di ablazione10,11. Il metodo I/R murino è un altro importante modello di MI in quanto rappresenta lo scenario clinico della terapia di riperfusione12. Il modello I/R è associato a sfide quali una dimensione variabile dell'infarto, difficoltà nel distinguere le risposte della lesione iniziale e riperfusione6.
Sebbene ampiamente utilizzati, i metodi di legatura LCA sono associati a bassi tassi di sopravvivenza e dolore post-operatorio13. Questo protocollo dimostra il modello di infarto miocardico chirurgico murino della legatura LCA che prevede la preparazione e l'intubazione dei topi, la legatura LCA, la cura post-operatoria e la convalida dell'infarto miocardico. Piuttosto che utilizzare una tracheotomia invasiva14, questo metodo impiega l'intubazione endotracheale. L'animale viene intubato illuminando l'orofaringe usando un laringoscopio, rendendo la procedura più facile, più sicura e meno traumatica15. Il topo viene tenuto sul supporto del ventilatore e in anestesia isoflurana durante tutta la procedura. Inoltre, l'ecocardiografia e la colorazione tricromatica di Masson vengono eseguite per valutare rispettivamente la funzione cardiaca e la fibrosi cardiaca dopo l'infarto miocardico. Nel complesso, questo metodo fornisce un modello murino chirurgico affidabile e riproducibile di MI che può essere utilizzato per studiare la fisiopatologia e l'infiammazione dopo l'infarto miocardico.

<table><tbody><tr><td>Ago per catetere 22 G</td><td>Exel INT</td><td>26741</td><td>Toracentesi</td></tr><tr><td>Ago per catetere 24 G</td><td>Exel INT</td><td>26746</td><td>Intubazione endotracheale</td></tr><tr><td>4-0 sutura in nylon</td><td>Covetrus</td><td>29263</td><td>Sutura dei muscoli e della pelle</td></tr><tr><td>8-0 sutura in nylon</td><td>S& T</td><td>3192</td><td>Legatura di LAD</td></tr><tr><td>Vaporizzatori anestetici</td><td>Vet equip</td><td>VE-6047</td><td>Supporto anestetico</td></tr><tr><td>Monitor fisiologico animale</td><td>Fujifilm</td><td>VEVO 3100</td><td>Monitoraggio della frequenza cardiaca, della frequenza respiratoria e della temperatura corporea</td></tr><tr><td>Soluzione di betadina</td><td>PBS salute animale</td><td>11205</td><td>Antispetico</td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td>Covetrus</td><td>55175</td><td>Analgesico</td></tr><tr><td>Microscopio sezionatore</td><td>OMANO</td><td>OM2300S-V7</td><td>Binocolo</td></tr><tr><td>Rasoio elettrico</td><td>Wahl</td><td>79300-1001M</td><td>Gel</td></tr> per <tr><td>elettrodi</td> da barba <td>Parker Laboratories</td><td>W60698L</td><td>Gel elettricamente conduttivo</td></tr><tr><td>Etanolo</td><td>Decon Laboratories</td><td>22-032-601</td><td>Pinze disinfettanti</td></tr><tr><td></td><td>FST</td><td>11065-07</td><td>Acciaio inossidabile</td></tr><tr><td>Garza</td><td>Curity</td><td>CAR-6339-PK</td><td></td></tr><tr><td>Lampada termica</td> sterile <td>Satco</td><td>S4998</td><td>Cura post-operatoria</td></tr><tr><td>Termoforo</td><td>Kent scientific</td><td>Surgi-M</td><td>Controllo della temperatura</td></tr><tr><td>Sterilizzatore a perline calde</td><td>Germinatore 500</td><td>11503</td><td>Sterilizzazione dello strumento chirurgico</td></tr><tr><td>Isoflurano</td><td>Covetrus</td><td>29405</td><td>Anestesia</td></tr><tr><td>Masson&rsquo; s kit di colorazione tricromica</td><td>Thermoscientific</td><td>87019</td><td>Misurazione della fibrosi cardiaca</td></tr><tr><td>Micro porta aghi</td><td>FST</td><td>12500-12</td><td>Micro forbici in acciaio inossidabile</td></tr><tr><td></td><td>FST</td><td>15000-02</td><td></td></tr><tr><td>Unguento oftalmico</td> in acciaio inossidabile <td>Dechra</td><td>Puralube Vet</td><td>Lubrificante oculare sterile</td></tr><tr><td>Gel di scansione</td><td>Parker Laboratories</td><td>Aquasonic 100</td><td>Gel acquoso per la trasmissione degli ultrasuoni</td></tr><tr><td>Forbici</td><td>FST</td><td>14060-11</td><td></td></tr><tr><td>Laringoscopio per piccoli animali</td> in acciaio inossidabile <td>Penn-Century</td><td>Model LS-2-M</td><td>Illuminazione dell'orofaringe</td></tr><tr><td>Ventilatore per piccoli animali</td><td>Apparecchio Harvard</td><td>557058</td><td>Supporto per ventilatore</td></tr><tr><td>Luce chirurgica</td><td>Cole parmer</td><td>41723</td><td>Larghezza dell'illuminatore (in): 7</td></tr><tr><td>Piattaforma di imaging preclinico Vevo 3100</td><td>Fujifilm</td><td>VEVO 3100</td><td>Ecocardiografia</td></tr><tr><td>Software VevoLAB</td><td>Fujifilm</td><td>VevoLAB 3.2.6</td><td>Analisi dei dati dell'ecocardiografia</td></tr></tbody></table>

legatura coronaria sinistra: un modello chirurgico murino di infarto miocardico

Left Coronary Artery Ligation: A Surgical Murine Model of Myocardial Infarction

La cardiopatia ischemica e il successivo infarto miocardico (IM) sono una delle principali cause di mortalità negli Stati Uniti e in tutto il mondo. Al fine di esplorare i cambiamenti fisiopatologici dopo infarto miocardico e progettare trattamenti futuri, sono necessari modelli di ricerca di IM. La legatura permanente dell'arteria coronaria sinistra (LCA) nei topi è un modello popolare per studiare la funzione cardiaca e il rimodellamento ventricolare post MI. Qui descriviamo un modello di MI murino chirurgico meno invasivo, affidabile e riproducibile mediante legatura permanente dell'LCA. Il nostro modello chirurgico comprende un'anestesia generale facilmente reversibile, un'intubazione endotracheale che non richiede una tracheotomia e una toracotomia. L'elettrocardiografia e la misurazione della troponina devono essere eseguite per garantire l'infarto miocardico. L'ecocardiografia al giorno 28 dopo l'infarto miocardico discernerà la funzione cardiaca e i parametri di insufficienza cardiaca. Il grado di fibrosi cardiaca può essere valutato dalla colorazione tricromatica di Masson e dalla risonanza magnetica cardiaca. Questo modello di MI è utile per studiare le alterazioni fisiopatologiche e immunologiche dopo l'infarto miocardico.

La Figura 1 mostra i segnali rappresentativi attivi dell'ECG e della respirazione durante la valutazione ecocardiografica dei topi sham (Figura 1A) e MI (Figura 1B). La verifica dei segnali attivi ECG e respirazione è importante prima di acquisire i dati ecocardiografici. La Figura 2 mostra la misurazione ecocardiografica dei parametri funzionali cardiaci dopo 28 giorni dopo la legatur...

Presentato qui è una procedura chirurgica per la legatura permanente dell'arteria coronaria sinistra nei topi. Questo modello può essere utilizzato per studiare la fisiopatologia e la risposta infiammatoria associata dopo infarto miocardico.

Legatura coronaria sinistra: un modello chirurgico murino di infarto miocardico

Ischemic heart disease and subsequent myocardial infarction (MI) is one of the leading causes of mortality in the United States and around the world. In ...

Il modello chirurgico di legatura permanente dell'arteria sinistra nei topi può essere utilizzato per studiare la fisiopatologia e la risposta infiammatoria associata dopo infarto miocardico. Questo metodo fornisce un modello murino affidabile e producibile di MI, che è facile, sicuro e meno invasivo. Per iniziare, preriscaldare uno sterilizzatore a perline a 250 gradi Celsius e posizionare strumenti chirurgici autoclavati in esso per alcuni minuti.Garantire la profondità dell'anestesia nel mouse controllando la risposta a un pizzico fermo del dito. Pesare il topo per stimare il dosaggio del farmaco analgesico pre-operatorio buprenorfina e iniettare il farmaco per via intraperitoneale. Taglia la pelliccia sul lato sinistro del torace usando un rasoio elettrico.Dopo aver disinfettato il sito chirurgico, posizionare il mouse in posizione supina su una tavola inclinata. Fissare la testa e gli arti del mouse utilizzando una fascia elastica attaccata rispettivamente agli incisivi superiori e al nastro adesivo. Applicare lubrificante oftalmico sterile sugli occhi per prevenire la secchezza durante l'anestesia.Apri la mascella e tira delicatamente la lingua fuori dalla cavità orale. Identificare l'apertura della laringe illuminando la faringe orale usando un laringoscopio. Tagliare circa 0,5 centimetri da un ago del catetere calibro 24 e inserire l'ago smussato nello schermo di plastica.Dirigere l'ago smussato con lo scudo di plastica nella trachea. Estrarre l'ago, lasciando lo scudo di plastica nella trachea. Impostare il ventilatore su una frequenza respiratoria di 137 battiti al minuto, ottimizzato per i topi utilizzati in questo studio e il volume corrente 0,18 capacità di chiusura.Collegare i tubi del respiratore allo schermo del catetere e confermare la corretta intubazione cercando un movimento toracico sincronizzato con il ventilatore. Scollegare il tubo del respiratore dallo schermo del catetere e posizionare l'animale in posizione supina su una tavola chirurgica preriscaldata a temperatura controllata. Ricollegare il mouse al ventilatore.Dopo aver disinfettato il sito chirurgico, sollevare delicatamente la pelle con una pinza e praticare una piccola incisione trasversale cutanea lungo la linea tra i muscoli pettorali maggiori e minori sinistro usando un paio di forbici chirurgiche. Separare i muscoli pettorali sottostanti con una pinza e forbici da dissezione. Dopo aver praticato un'incisione nel terzo spazio intercostale, allungare delicatamente le costole usando i divaricatori per esporre il ventricolo sinistro.Spostare il grasso pericardico da parte e individuare l'arteria coronaria sinistra, che corre dal bordo dell'atrio sinistro verso l'apice del cuore. Passa un 8-0 sutura di nylon sotto l'arteria coronaria sinistra con l'aiuto di un portaaghi. Delegare l'arteria coronaria sinistra con un doppio nodo seguito da un secondo nodo.Rimuovere i divaricatori e inserire un ago da catetere di calibro 22 nella cavità toracica. Rimuovere l'ago, lasciando la punta dello scudo di plastica nella cavità toracica. Chiudere la gabbia toracica utilizzando una sutura di nylon 4-0.Collegare una siringa allo schermo di plastica da 22 gauge e rimuovere lentamente l'aria in eccesso intrappolata nella cavità toracica premendo delicatamente il torace per stabilire una pressione dell'aria negativa. Rimuovere lo scudo di plastica. Spegnere l'alimentazione di isoflurano e posizionare il mouse sul ventilatore che fornisce ossigeno.Inizia una respirazione spontanea del topo, spegnere il ventilatore. Tenere il mouse sotto una lampada di calore e monitorare fino a quando non è sveglio. L'animale non deve essere lasciato incustodito fino a quando non ha recuperato abbastanza coscienza per mantenere la recumbency sternale.Monitorare il mouse quotidianamente per qualsiasi segno di dolore o disagio. Continuare l'iniezione intraperitoneale di buprenorfina ogni 6-8 ore per altri due giorni dopo l'intervento chirurgico. I segnali attivi dell'ECG e della respirazione sono stati verificati prima di acquisire i dati ecocardiografici.La misurazione ecocardiografica dei parametri funzionali cardiaci è stata osservata 28 giorni dopo la legatura delle arterie coronarie sinistra. Sono state osservate le immagini M-mode della vista peroneale dell'asse corto dei cuori SHAM e MI. Le immagini MI hanno mostrato un movimento difettoso della parete cardiaca dopo la legatura dell'arteria coronaria sinistra.Indicatori di insufficienza cardiaca, come aumento della massa ventricolare sinistra, diminuzione della frazione di eiezione e diminuzione della gittata cardiaca sono stati osservati nel gruppo MI rispetto al gruppo SHAM. La colorazione tricromatica di Masson delle sezioni del ventricolo inferiore, medio e superiore ha mostrato un aumento della colorazione del collagene nel cuore infartuato, indicando un aumento della fibrosi. Nella maggior parte dei casi, l'arteria non è fattibile.Tuttavia, legando il tessuto miocardico da 2 a 4 millimetri sotto il bordo dell'atrio sinistro si ottiene una legatura efficiente dell'arteria.

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Questo video illustra come utilizzare un modello veloce e affidabile per lo studio dei processi fisiopatologici pathobiological e di ischemia miocardica.

LAD-Legatura: un modello murino di infarto miocardico

Numerose manipolazioni genetiche e / o iniezioni intramiocardiche di geni, proteine, cellule e / o biomateriali si sovrappongono la dimensione del tempo negli studi di acuta ischemia / riperfusione e rimodellamento cronica nel topo. Questo video illustra le procedure di microchirurgia per ischemia / riperfusione, permanente legatura delle arterie coronarie, e gli studi di iniezione intramiocardico.

Legatura dell&#39;arteria coronarica e di iniezione intramiocardico in un modello murino di infarto

La procedura chirurgica utilizzata per indurre infarto miocardico sperimentale in topi inizia con toracotomia sinistra tra il terzo e il quarto nervature per visualizzare la superficie anteriore del cuore e polmone sinistro. Coronaria sinistra viene ligato, il torace è chiuso e il mouse viene consentito di recuperare spontaneamente.

Tecnica modificata di legatura dell&#39;arteria coronarica in Mouse

In questo video, descriviamo una procedura chirurgica per generare un modello murino di infarto del miocardio legando in modo permanente l'arteria coronaria discendente anteriore sinistra.

Generazione di un modello murino di infarto del miocardio: una procedura chirurgica per la legatura permanente dell'arteria coronaria discendente anteriore sinistra in un modello murino

Si introduce un metodo chirurgico per indurre sperimentale ischemia / riperfusione (I / R) pregiudizio per simulare infarto del miocardio (MI) in modelli murini che consente una maggiore chiarezza posizionamento della legatura sulla discendente anteriore sinistra (LAD) per migliorare la riproducibilità di esperimenti MI nei topi.

Un modello murino di ischemia miocardica e riperfusione lesioni da legatura della arteria discendente anteriore sinistra

L'insufficienza cardiaca è la principale causa di ospedalizzazione e una delle principali cause di mortalità. Un modello di legatura permanente dell'arteria coronaria discendente anteriore sinistra nei topi è stato applicato per studiare il rimodellamento ventricolare e la disfunzione cardiaca post-infarto del miocardio. Viene presentata la tecnica delle misurazioni emodinamiche invasive nei topi.

Legatura permanente dell&#39;arteria discendente anteriore sinistra coronarica nei topi: un modello di post-infarto rimodellante miocardico e insufficienza cardiaca

Forniamo un metodo affidabile per la legatura dell'arteria discendente anteriore sinistra (LAD) in un modello murino. Questo metodo è relativamente meno invasivo di altri metodi, che coinvolgono l'intubazione endotracheale, un approccio di toracotomia sul lato sinistro e la toracentesi. Questo metodo può essere utilizzato come modello per l'infarto miocardico acuto e cronico.

Murino discendente anteriore sinistra (LAD) Coronary legatura dell&#39;arteria: una migliore e semplificata del modello di infarto miocardico

Qui descriviamo una procedura chirurgica che mostra come ottenere una legatura permanente dell'arteria coronaria discendente sinistra-anteriore nei topi. Questo modello è di grande rilevanza per studiare la fisiofisiologia dell'infarto miocardico e i processi biologici concomitanti.

Modello di infarto miocardico Murine utilizzando la legatura permanente dell'arteria coronaria discendente anteriore sinistra

Questo protocollo delinea i passaggi per indurre l'infarto miocardico nei topi preservando il pericardio e il suo contenuto.

Un modello di roditore ischemico del pericardio intatto

Qui descriviamo un metodo semplice e riproducibile che può indurre infarto miocardico o danno da ischemia-riperfusione miocardica nei topi mediante legatura di precisione dell'arteria coronaria discendente anteriore sinistra attraverso la micromanipolazione.

Induzione di infarto miocardico e danno da ischemia-riperfusione miocardica nei topi

Scopri la legatura dell'arteria coronaria sinistra nei topi per studiare la patofisiologia e la risposta infiammatoria post-infarto. Questo modello chirurgico offre un metodo riproducibile per la ricerca cardiovascolare.

Legatura coronaria sinistra: un modello chirurgico murino di infarto miocardico

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