23 giugno 2023
Qui, discutiamo di un flusso di lavoro per preparare, sezionare, montare e visualizzare cervelli di espianti vivi da larve di terzo stadio di Drosophila melanogaster per osservare le dinamiche cellulari e subcellulari in condizioni fisiologiche.
La nostra ricerca si concentra sullo studio dell'impatto della divisione cellulare asimmetrica o ACD, sulla proliferazione e differenziazione delle cellule staminali. Utilizziamo cellule staminali neurali o neuroblasti di Drosophila come modello per comprendere i meccanismi, le regolazioni e gli impatti della divisione cellulare asimmetrica sullo sviluppo e sulla neurogenesi. I recenti sviluppi dell'intelligenza artificiale hanno fatto passi da gigante nella quantificazione e nell'analisi delle immagini, che ha fatto avanzare significativamente il campo dell'imaging delle cellule viventi.
Mantenere la qualità del campione per un film a lungo termine è una sfida di lunga data. Mentre è perspicace osservare un campione per otto o 10 ore, i vincoli logistici, come i requisiti di imaging del campione e gli strumenti di imaging disponibili, lo rendono difficile. Il nostro protocollo affronta questo problema dimostrando l'imaging a lungo termine senza influire sulla qualità del campione.
La nostra tecnica potrebbe essere facilmente adottata e applicata sul campo dai nuovi arrivati. Con un po 'di tempo e pratica, è possibile generare film a breve e lungo termine, che hanno il potenziale per produrre dati approfonditi e significativi.
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Questo articolo discute un workflow per preparare, dissezionare, montare e ottenere immagini di cervelli di espianti vivi provenienti da larve di Drosophila melanogaster al terzo stadio. L'attenzione si concentra sull'osservazione delle dinamiche cellulari e subcellulari in condizioni fisiologiche, in particolare nel contesto della divisione cellulare asimmetrica nelle cellule staminali neurali.
Live-cell imaging of Drosophila third instar larval brains enables direct observation of neural stem cell asymmetric division, supporting mechanistic de-risking and target validation in neurodevelopmental research. This workflow addresses the challenge of maintaining sample viability for extended imaging, providing robust, quantitative data on cell polarity, spindle orientation, and differentiation. The method enhances predictive confidence at early discovery inflection points and supports translational continuity for neurogenesis-focused portfolios.
This live-cell imaging protocol integrates from early discovery through lead identification and preclinical research in neurobiology-focused pipelines.