28 marzo 2025
La bioenergetica delle cellule T CD8 può essere interrogata utilizzando il Mito Stress Test. Questa metodologia può essere utilizzata per studiare la programmazione metabolica acuta e cronica. Questo protocollo descrive gli approcci per esaminare le relazioni tra la biologia del recettore delle cellule T e l'analisi bioenergetica.
Il nostro laboratorio studia la tolleranza immunitaria, la sorveglianza immunitaria e la segnalazione del recettore dell'antigene da parte dei linfociti. Abbiamo scoperto che l'acido lisofosfatidico interrompe la citotossicità delle cellule T CD8, promuovendo la tolleranza periferica riducendo la flessibilità metabolica nelle cellule effettrici. Utilizziamo tecnologie per misurare il metabolismo mitocondriale e le capacità energetiche nelle cellule T CD8.
Il nostro laboratorio ha dimostrato che l'acido lisofosfatidico modula la fitness metabolica delle cellule T CD8 e può essere un importante determinante dei fenotipi delle cellule T. Il nostro protocollo qui descritto valuta in tempo reale il metabolismo funzionale e la bioenergetica della segnalazione del recettore delle cellule T. Per iniziare, aggiungi 200 microlitri di acqua distillata in ogni pozzetto di una piastra multiuso.
Posizionare una cartuccia del sensore sopra la piastra di servizio, assicurandosi che le estremità della cartuccia del sensore siano immerse per consentire una corretta idratazione. Incubare la piastra di servizio con la cartuccia del sensore a 37 gradi Celsius per un minimo di 10 ore in un incubatore senza anidride carbonica. Quindi, riempire una provetta conica da 50 millilitri con 50 millilitri di soluzione calibrante e incubare.
Il giorno successivo, muovi la piastra per rimuovere l'acqua distillata. Reidratare la piastra con 200 microlitri di calibrante. Riposizionare la cartuccia del sensore sulla parte superiore della piastra di servizio e riposizionare la piastra di servizio nell'incubatore senza anidride carbonica.
Successivamente, utilizzare una pipetta multicanale per risospendere 10 milioni di cellule T CD8 in 4,5 millilitri di terreno completo. Pipettare 90 microlitri di sospensione in ciascun pozzetto, seguiti da 90 microlitri del terreno designato per pozzetto durante il pretrattamento. Pipettare 180 microlitri di terreno completo nei pozzetti angolari per evitare l'evaporazione.
Quindi posizionare la micropiastra con le cellule T CD8 in un incubatore senza anidride carbonica. Posizionare saldamente gli adattatori della piastra sulla cartuccia del sensore. Dopo l'incubazione, utilizzare adattatori per piastre per pipettare oligomicina, FCCP, rotenone e antimicina A nelle rispettive porte.
Posizionare la micropiastra nell'incubatore senza anidride carbonica un'ora prima di iniziare il saggio. Aprire il software e calibrare l'analizzatore dello strumento 30 minuti prima di caricare la micropiastra. Etichettare i pozzetti e rivedere lo schema di iniezione nel sistema software.
Quindi caricare la cartuccia del sensore nello strumento durante la calibrazione. Eseguire il test tramite il software. Per ulteriori iniezioni, modificare gli schemi di iniezione utilizzando la camera aggiuntiva per l'iniezione.
Caricare l'anti-CD3 e l'anti-CD28 nella porta A della cartuccia del sensore. Caricare l'oligomicina nella porta B, l'FCCP nella porta C e il rotenone e l'antimicina A nella porta D.Per la stimolazione individuale anti-CD3 e anti-CD28, pipettare 20 microlitri di anti-CD3 biotinilato a 10 microgrammi per millilitro negli appositi pozzetti della cartuccia del sensore. Pipettare 20 microlitri di anti-CD28 e streptavidina nei pozzetti designati.
Per la stimolazione anti-CD3 o CD28, combinare e pipettare 20 microlitri di anti-CD3, anti-CD28 e streptavidina biotinilati nei pozzetti designati. Preparare i pozzetti di controllo iniettando il terreno. Per la stimolazione combinata anti-CD3 e CD-28, utilizzare un rapporto uno-a-uno tra perle e cellule e pipettare cinque microlitri di microsfere magnetiche anti-CD3 CD-28 nei pozzetti designati contenenti 200.000 cellule per pozzetto.
Preparare i pozzetti di controllo con il terreno solo per l'iniezione. Regolare i veleni in ciascuna porta per ottenere le concentrazioni finali post-iniezione. Assicurarsi che lo schema di iniezione rifletta i punti temporali aggiornati prima di caricare la micropiastra nello strumento.
Programmare il software per eseguire il test di stimolazione acuta TCR per un totale di 140 minuti. Modificare lo schema per includere 10 misurazioni temporali prima dell'iniezione di oligomicina. La stimolazione acuta del TCR con anti-CD3 e/o anti-CD28 biotinilato con streptavidina e stimolazione con biglie magnetiche anti-CD3 e/o CD-28 ha determinato un aumento del tasso di consumo di ossigeno e del tasso di acidificazione extracellulare rispetto ai controlli con solo terreno.
La stimolazione con biglie magnetiche anti-CD3 e CD-28 ha mostrato risposte metaboliche paragonabili alle iniezioni biotinilate di anti-CD3 e CD-28 con aumenti simili del tasso di consumo di ossigeno e del tasso di acidificazione extracellulare.
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Questo studio analizza l'impatto dell'acido lisofosfatidico sulla citotossicità dei linfociti T CD8 e sulla loro flessibilità metabolica. La metodologia comprende il test Mito Stress per analizzare la bioenergetica dei linfociti T e il segnale dei recettori.
La valutazione quantitativa della funzione mitocondriale in linfociti T CD8 naïve ed effettori consente una riduzione meccanicistica dei rischi associati a bersagli immunometabolici nella fase iniziale della scoperta. Il profilo bioenergetico in tempo reale supporta la previsione dello stato funzionale dei linfociti T, fornendo informazioni per la validazione dei bersagli e la continuità traslazionale. Questo flusso di lavoro colloca l'immunometabolismo come un asse fondamentale per la selezione del portafoglio e le strategie di modulazione immunitaria.
Questo metodo di analisi bioenergetica integra le fasi iniziali della scoperta fino all'identificazione dei composti promettenti e agli studi preclinici di modulazione immunitaria.