November 10th, 2023
Qui viene presentato un protocollo dettagliato per isolare e caratterizzare le popolazioni microambientali del midollo osseo da modelli murini di sindromi mielodisplastiche e leucemia mieloide acuta. Questa tecnica identifica i cambiamenti nella nicchia del midollo osseo non ematopoietico, comprese le cellule stromali endoteliali e mesenchimali, con progressione della malattia.
La nostra ricerca mira a esplorare come l'ambiente mutevole del midollo osseo influenzi la crescita del tumore. Abbiamo sviluppato un protocollo di citometria a flusso per analizzare le cellule non immunitarie nel midollo osseo e nei tessuti ossei, concentrandoci sulle neoplasie ematologiche murine. Questo metodo è adattabile per lo studio del midollo osseo in vari modelli murini.
Il nostro studio si concentra sull'isolamento e l'identificazione delle alterazioni nelle popolazioni stromali del midollo osseo durante la progressione del cancro. Comprendere il loro impatto sull'insorgenza e sull'avanzamento della malattia potrebbe aprire la strada a nuovi trattamenti mirati a questi cambiamenti che facilitano il cancro nelle cellule stromali del midollo osseo. Il nostro protocollo combina in modo univoco digestioni meccaniche ed enzimatiche, deplezioni magnetiche e citometria a flusso per delineare la composizione cellulare del microambiente del midollo osseo.
Si distingue per l'impiego della separazione magnetica e l'incorporazione di cellule sia ossee che midollari, offrendo una rappresentazione più completa di questo microambiente.
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Questo articolo presenta un protocollo dettagliato per isolare e caratterizzare le popolazioni microambientali del midollo osseo in modelli murini di sindromi mielodisplastiche e leucemia mieloide acuta. Lo studio si concentra sull'analisi delle cellule non immunitarie nel midollo osseo e delle loro alterazioni durante la progressione del cancro.
Dissecting the bone marrow microenvironment in myelodysplastic syndrome (MDS) and acute myeloid leukemia (AML) addresses a critical challenge in understanding disease initiation and progression. High-resolution phenotyping of stromal and endothelial populations enables mechanistic de-risking and informs target validation for therapies aimed at the tumor-supportive niche. This capability strengthens predictive confidence at the discovery-to-preclinical inflection point for hematological malignancy portfolios.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling high-fidelity isolation and analysis of bone marrow niche populations in murine models of MDS and AML.