Name: Intubazione endotracheale tramite tracheotomia e successiva toracotomia nei ratti per applicazioni non di sopravvivenza (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-03-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 4 min 43 s
Description: Impara l'intubazione endotracheale tramite tracheotomia e toracotomia nei ratti per applicazioni non di sopravvivenza. Questa tecnica standardizzata migliora la precisione della ventilazione invasiva e supporta la ricerca traslazionale.

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Tutte le attività animali qui descritte sono state approvate dal comitato istituzionale per la cura e l'uso degli animali (IACUC) del Consiglio regionale del Baden-Württemberg a Karlsruhe, in Germania. Gli animali da esperimento sono stati gestiti secondo gli standard istituzionali e secondo le leggi tedesche per l'uso e la cura degli animali e secondo le direttive del Consiglio della Comunità Europea (2010/63/UE) e le linee guida ARRIVE e sono stati condotti in strutture accreditate. Sono stati utilizzati ratti maschi Spraque Dawley di Janvier Labs con un peso dell'ordine di 400 g.
1. Preparazione della procedura (Figura 1)
<ol>
	<li>Preparare i ganci per la preparazione chirurgica piegando le cannule con un angolo di 135° a 1 cm rispetto alla punta, collegandole a tubi di perfusione in plastica tramite Luer-lock e applicando tensione utilizzando una pinza chirurgica per zanzare (Figura 1A, B).</li>
	<li>Preparare un apparecchio chirurgico per l'esposizione ai roditori. NOTA: Oltre alla disponibilità di piattaforme commerciali, queste possono anche essere facilmente costruite in modo economico ed economico, come in questo studio.<ol>
		<li>Per questo, utilizzare una piastra in acciaio di 40 cm x 50 cm con uno spessore di 4 mm. Creare diversi fori da 8 mm utilizzando un trapano in acciaio nella posizione desiderata per i punti di tensione successivi. Posizionare le aste di fissaggio a forma di Y in queste posizioni.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Posizionare un termoforo sopra la piastra d'acciaio dell'apparecchio chirurgico per fornire un supporto termico.</li>
	<li>Preparare i ganci di preparazione chirurgica con i tubi di plastica attaccati e le pinze chirurgiche per zanzare per applicare successivamente la tensione al tessuto per l'esposizione chirurgica.</li>
	<li>Rimuovere il tappo di una siringa di plastica da 10 ml con un'estremità Luer-lock maschio e tagliare l'estremità prossimale della siringa. Inserire la parte distale nella sacca di ventilazione come illustrato e sigillarla ermeticamente coprendola con un tubo termorestringente e applicando un calore delicato utilizzando una torcia da laboratorio (Figura 1D-F).</li>
	<li>Accorciare e smussare cateteri endovenosi di diverse dimensioni e inserire un filo guida da un set di catetere arterioso con l'estremità del filo flessibile sulla punta nella dimensione del catetere più appropriata per la rispettiva taglia dell'animale (presumibilmente 14 G) per la successiva tecnica di Seldinger22,23 durante l'intubazione (Figura 1G, H).</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig01v2.jpg"> 
Figura 1: Configurazione sperimentale. (A) Una cannula piegata collegata a un tubo di perfusione utilizzato come gancio per la preparazione chirurgica. (B) Gancio di preparazione con morsetto posizionato in un'asta di fissaggio metallica. (C) Animale sedato prima dell'intervento. (D) Sacca di ventilazione da neonatologia. (E-F) Montaggio ermetico di una siringa Luer-lock sulla sacca di ventilazione utilizzando un tubo termoretraibile. (G) Cateteri endovenosi accorciati e smussati di diverse dimensioni con un filo guida da un set di cateterismo arterioso per la tecnica di Seldinger. (H) Costruzione finale su misura. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig01largev2.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
2. Anestesia e analgesia
<ol>
	<li>Anestetizzare il ratto con il farmaco di scelta. NOTA: Qui, l'anestesia e l'analgesia sono state stabilite utilizzando ketamina 10% (100 mg/mL), xilazina 2% (20 mg/mL), carprofene 50 mg/mL e isoflurano. Una diluizione 1:10 di xilazina e carprofene sono stati utilizzati come soluzioni stock per l'applicazione.<ol>
		<li>Indurre l'anestesia mettendo l'animale in una scatola di induzione inondata di ossigeno al 100% a una velocità di afflusso di 5 L/min integrata dal 4% (v) di isoflurano utilizzando un vaporizzatore.</li>
		<li>Dopo aver raggiunto lo stato di incoscienza, rimuovere l'animale dalla scatola di induzione e iniettarlo (i.p.) con 100 mg/kg di peso corporeo di ketamina e 4 mg/kg di peso corporeo di xilazina. NOTA: Ciò corrisponde a 40 mg di ketamina (0,4 ml della soluzione originale) e 1,6 mg di xilazina (0,08 ml della soluzione originale o 0,8 ml della soluzione 1:10) per un animale da 400 mg.</li>
		<li>Rimetti l'animale nella scatola di induzione inondata di isoflurano fino a quando non si manifesta l'effetto dell'iniezione i.p.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Garantire un'adeguata profondità dell'anestesia testando la mancanza di risposta del ratto a un fermo pizzicamento del dito.</li>
	<li>Applicare un unguento oftalmico sugli occhi.</li>
	<li>Valutare e mantenere la profondità dell'anestesia durante l'intervento chirurgico.<ol>
		<li>Quando gli effetti narcotici sembravano diminuire nel tempo (circa ogni ora), iniettare (s.c) all'animale altri 50 mg/kg di peso corporeo di ketamina e 1 mg/kg di peso corporeo di xilazina. Ciò corrisponde a 20 mg di ketamina (0,2 mL della soluzione originale) e 0,4 mg di xilazina (0,2 mL della soluzione 1:10) per un animale da 400 mg.</li>
		<li>Fornire ulteriore analgesia prima della toracotomia con un'iniezione s.c. di 5 mg/kg di peso corporeo di carprofene. Ciò corrisponde a 2 mg di carprofene (0,04 mL della soluzione originale o 0,4 mL della soluzione 1:10) per un animale da 400 mg.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. Preparazione chirurgica (Figura 2)
<ol>
	<li>Saturare la circolazione animale con ossigeno offrendo l'inalazione di ossigeno al 100% tramite una maschera neonatale transnasale (Figura 2A).</li>
	<li>Dopo 5 minuti, passare dalla maschera neonatale transnasale alla costruzione di una sacca di ventilazione neonatale con una siringa di plastica maschile con punta Luer-lock come descritto sopra e offrire ossigeno in eccesso con la punta della siringa vicino alla punta nasale dell'animale (Figura 2B).</li>
	<li>Eseguire un'incisione cutanea toracocervicale mediana per la lunghezza desiderata ed esporre il sito chirurgico utilizzando i ganci di preparazione chirurgica (Figura 2C, D).</li>
	<li>Far avanzare la preparazione mediante dissezione smussata con forbici sottili attraverso la fascia cervicale. Esporre il muscolo sternocleidomastoideo e infraioideo e lateralizzare il muscolo infraioideo mediano a destra dopo la dissezione della membrana laterale sinistra (Figura 2E-G).</li>
	<li>Eseguire la dissezione smussata verso la trachea e il tunneling della trachea utilizzando i morsetti overholt (Figura 2H-I).</li>
	<li>Imbracare la trachea utilizzando un anello vascolare in silicone e imbracare la trachea distale utilizzando una sutura in polifilamento per la successiva fissazione della cannula endotracheale (Figura 2J-N).</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig02.jpg"> 
Figura 2: Preparazione della trachea. (A) Inalazione di ossigeno tramite maschera. (B) Passare dalla maschera alla siringa Luer-lock maschile per l'applicazione di ossigeno. (C) Incisione cutanea toracocervicale. (D) Preparazione attraverso la fascia cervicale. (E) esposizione del muscolo sternocleidomastoideo e del muscolo infraioideo. (F) Lateralizzazione del muscolo infraioidale mediano. (G) Dissezione smussata verso la trachea. (H) tunneling della trachea mediante morsetti overholt. (I) Imbracatura della trachea utilizzando un anello del vaso in silicone. (J-N) Doppia imbracatura caudale della trachea utilizzando una sutura in polifilamento per la successiva fissazione della cannula endotracheale. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig02large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
4. Procedura di intubazione (Figura 3)
<ol>
	<li>Allungare caudalmente la trachea utilizzando una pinza atraumatica (Figura 3A, B).</li>
	<li>Eseguire un'incisione parziale della trachea di 180° di circonferenza utilizzando le forbici (Figura 3C-F).</li>
	<li>Introdurre un filo guida di Seldinger con l'estremità flessibile nella trachea (Figura 3G-H) e successivamente introdurre il catetere endovenoso modificato di circonferenza appropriata nella trachea guidata dal filo di Seldinger (Figura 3I-N).</li>
	<li>Rimuovere il filo di Seldinger (Figura 3O), collegare la punta Luer-lock del catetere tracheale alla sacca di ventilazione modificata e avviare una delicata ventilazione manuale polmonare protettiva con alta frequenza e basso volume corrente (Figura 3P). Eseguire la ventilazione manuale fino a quando non è stata eseguita la toracotomia mediana e il polmone non è in bella vista.</li>
	<li>Legare la sutura di bloccaggio precedentemente posizionata con un nodo scorrevole per evitare perdite aeree e rimozione accidentale del catetere (Figura 3Q-T).</li>
</ol>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig03.jpg"> 
Figura 3: Intubazione endotracheale tramite tracheotomia. (A) Situazione iniziale dopo la preparazione. (B) Allungamento caudale della trachea mediante pinze atraumatiche. (C-F) Incisione parziale della trachea di 180° di circonferenza. (G,H) Introduzione di un filo guida Seldinger nella trachea. (I-M) Introduzione del catetere endovenoso modificato nella trachea guidata dal filo di Seldinger. (N-O) Rimozione del filo di Seldinger. (P) Collegamento Luer-lock del catetere tracheale alla sacca di ventilazione modificata. (Q-T) Legatura della sutura di bloccaggio precedentemente posizionata per evitare la rimozione accidentale del catetere. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig03large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
5. Ventilazione manuale e toracotomia mediana (Figura 4)
<ol>
	<li>Iniziare la toracotomia mediana dallo xifoide utilizzando forbici di materiale smussate e stabili (Figura 4A, B) e continuare cranialmente attraverso lo sterno. Mettere sempre in pausa la ventilazione per alcuni secondi quando si avanza con le forbici sottosternalmente e quando si taglia per evitare traumi al polmone (Figura 4C-E).</li>
	<li>Ottenere l'esposizione toracica utilizzando i ganci di preparazione chirurgica e rimuovere le membrane sierose mediastiniche (Figura 4F-H).</li>
	<li>Continuare la ventilazione manuale con la frequenza e il volume corrente desiderati ed espandere il monitoraggio (ad esempio, stabilire una misurazione della pressione arteriosa intra-arteriosa, installare un catetere arterioso venoso centrale o polmonare a seconda dello scopo o della rispettiva domanda di ricerca) (Figura 4I-L).</li>
</ol>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig04.jpg"> 
Figura 4: Ventilazione manuale e toracotomia mediana. (A) situazione iniziale dopo l'intubazione. (B-E) Toracotomia mediana a partire dallo xifoide. (F-I) Esposizione toracica mediante ganci di preparazione chirurgica. (J) Configurazione finale durante la ventilazione. (K-L) il processo di ventilazione manuale. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig04large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
6. Eutanasia
<ol>
	<li>Raggiungere l'eutanasia mediante cardiectomia brusca e acuta usando le forbici nell'animale profondamente anestetizzato.</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>Protocollo di intubazione endotracheale basato sulla tracheotomia per modelli di ratto non sopravviventi

<ol><li>Czigany, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limb+remote+ischemic+conditioning+of+the+recipient+protects+the+liver+in+a+rat+model+of+arterialized+orthotopic+liver+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Limb remote ischemic conditioning of the recipient protects the liver in a rat model of arterialized orthotopic liver transplantation.</a> PLoS One. 13 (4), e0195507(2018).</li>
<li>Czigány, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improving+research+practice+in+rat+orthotopic+and+partial+orthotopic+liver+transplantation%3A+A+review%2C+recommendation%2C+and+publication+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Improving research practice in rat orthotopic and partial orthotopic liver transplantation: A review, recommendation, and publication guide.</a> Eur Surg Res. 55 (1-2), 119-138 (2015).</li>
<li>Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surgical+procedures+for+a+rat+model+of+partial+orthotopic+liver+transplantation+with+hepatic+arterial+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction.</a> J Vis Exp. 73, e4376(2013).</li>
<li>Jahshan, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+for+assessment+of+laryngotracheal+injury+following+transoral+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Pediatr+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">A novel rat model for assessment of laryngotracheal injury following transoral intubation.</a> Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 113, 4-10 (2018).</li>
<li>Lamoureux, L., Radhakrishnan, J., Gazmuri, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rat+model+of+ventricular+fibrillation+and+resuscitation+by+conventional+closed-chest+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A rat model of ventricular fibrillation and resuscitation by conventional closed-chest technique.</a> J Vis Exp. 98, 52413(2015).</li>
<li>Wang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoinducer-2+of+streptococcus+mitis+as+a+target+molecule+to+inhibit+pathogenic+multi-species+biofilm+formation+in+vitro+and+in+an+endotracheal+intubation+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Autoinducer-2 of streptococcus mitis as a target molecule to inhibit pathogenic multi-species biofilm formation in vitro and in an endotracheal intubation rat model.</a> Front Microbiol. 7, 88(2016).</li>
<li>Jahshan, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+rat+model+for+tracheal+mucosal+damage+assessment+of+following+long+term+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Pediatr+Otorhinolaryngol%22%5BJournal%5D)">A novel rat model for tracheal mucosal damage assessment of following long term intubation.</a> Int J Pediatr Otorhinolaryngol. 128, 109738(2020).</li>
<li>Rivard, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+intubation+and+ventilation+for+surgical+research%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Surg%22%5BJournal%5D)">Rat intubation and ventilation for surgical research.</a> J Invest Surg. 19 (4), 267-274 (2006).</li>
<li>Na, N., Zhao, D. Q., Huang, Z. Y., Hong, L. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+method+for+rat+intubation+and+thymectomy%5BTitle%5D)+AND+%22Chin+Med+J+%28Engl%29%22%5BJournal%5D)">An improved method for rat intubation and thymectomy.</a> Chin Med J (Engl). 124 (17), 2723-2727 (2011).</li>
<li>Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthesia+protocols+in+laboratory+animals+used+for+scientific+purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomed%22%5BJournal%5D)">Anesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes.</a> Acta Biomed. 89 (3), 337-342 (2018).</li>
<li>Fuentes, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Videoendoscopic+endotracheal+intubation+in+the+rat%3A+A+comprehensive+rodent+model+of+laparoscopic+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">Videoendoscopic endotracheal intubation in the rat: A comprehensive rodent model of laparoscopic surgery.</a> J Surg Res. 122 (2), 240-248 (2004).</li>
<li>Bryda, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mighty+mouse%3A+The+impact+of+rodents+on+advances+in+biomedical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Mo+Med%22%5BJournal%5D)">The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research.</a> Mo Med. 110 (3), 207-211 (2013).</li>
<li>Lazopoulos, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Open+thoracotomy+for+pneumothorax%5BTitle%5D)+AND+%22J+Thorac+Dis%22%5BJournal%5D)">Open thoracotomy for pneumothorax.</a> J Thorac Dis. 7 (S1), S50-S55 (2015).</li>
<li>Rendell, V. R., Giamberardino, C., Li, J., Markert, M. L., Brennan, T. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complete+thymectomy+in+adult+rats+with+non-invasive+endotracheal+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Complete thymectomy in adult rats with non-invasive endotracheal intubation.</a> J Vis Exp. 94, 52152(2014).</li>
<li>Thomas, J. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotracheal+intubation+in+mice+via+direct+laryngoscopy+using+an+otoscope%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Endotracheal intubation in mice via direct laryngoscopy using an otoscope.</a> J Vis Exp. 86, 50269(2014).</li>
<li>Nelson, A. M., Nolan, K. E., Davis, I. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+orotracheal+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Repeated orotracheal intubation in mice.</a> J Vis Exp. 157, 60844(2020).</li>
<li>Das, S., Macdonald, K., Chang, H. Y., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+of+mouse+lung+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A simple method of mouse lung intubation.</a> J Vis Exp. 73, e50318(2013).</li>
<li>Massick, D. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantification+of+the+learning+curve+for+percutaneous+dilatational+tracheotomy%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Quantification of the learning curve for percutaneous dilatational tracheotomy.</a> Laryngoscope. 110 (2 Pt 1), 222-228 (2000).</li>
<li>Giugliano, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Learning+curve+for+translaryngeal+tracheotomy+in+head+and+neck+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Laryngoscope%22%5BJournal%5D)">Learning curve for translaryngeal tracheotomy in head and neck surgery.</a> Laryngoscope. 111 (4 Pt 1), 628-633 (2001).</li>
<li>Mort, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emergency+tracheal+intubation%3A+Complications+associated+with+repeated+laryngoscopic+attempts%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Emergency tracheal intubation: Complications associated with repeated laryngoscopic attempts.</a> Anesth Analg. 99 (2), 607-613 (2004).</li>
<li>Hasegawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Association+between+repeated+intubation+attempts+and+adverse+events+in+emergency+departments%3A+An+analysis+of+a+multicenter+prospective+observational+study%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Emerg+Med%22%5BJournal%5D)">Association between repeated intubation attempts and adverse events in emergency departments: An analysis of a multicenter prospective observational study.</a> Ann Emerg Med. 60 (6), 749-754.e742 (2012).</li>
<li>Titu, I. M., Delaca, G. B., Teterea, F., Ciulic, S. A., Palade, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+tracheostomy+using+the+Seldinger+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Multimed+Man+Cardiothorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Percutaneous tracheostomy using the Seldinger technique.</a> Multimed Man Cardiothorac Surg. 2023, (2023).</li>
<li>Garry, B. P., Bivens, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Seldinger+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cardiothorac+Anesth%22%5BJournal%5D)">The Seldinger technique.</a> J Cardiothorac Anesth. 2 (3), 403(1988).</li>
<li>Carbone, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimating+mouse+and+rat+use+in+American+laboratories+by+extrapolation+from+animal+welfare+act-regulated+species%5BTitle%5D)+AND+%22Sci+Rep%22%5BJournal%5D)">Estimating mouse and rat use in American laboratories by extrapolation from animal welfare act-regulated species.</a> Sci Rep. 11 (1), 493(2021).</li>
<li>Su, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacious+and+safe+orotracheal+intubation+for+laboratory+mice+using+slim+torqueable+guidewire-based+technique%3A+Comparisons+between+a+modified+and+a+conventional+method%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Anesthesiol%22%5BJournal%5D)">Efficacious and safe orotracheal intubation for laboratory mice using slim torqueable guidewire-based technique: Comparisons between a modified and a conventional method.</a> BMC Anesthesiol. 16, 5(2016).</li>
<li>Clary, E. M., O'halloran, E. K., De La Fuente, S. G., Eubanks, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Videoendoscopic+endotracheal+intubation+of+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Videoendoscopic endotracheal intubation of the rat.</a> Lab Anim. 38 (2), 158-161 (2004).</li>
<li>Ghali, M. G. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microsurgical+technique+for+tracheostomy+in+the+rat%5BTitle%5D)+AND+%22MethodsX%22%5BJournal%5D)">Microsurgical technique for tracheostomy in the rat.</a> MethodsX. 5, 61-67 (2018).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Ambu Spur II Sacca di ventilazione monouso per neonati</td><td>Meier Medizintechnik</td><td>335 102 000</td><td>Sacca di ventilazione</td></tr><tr><td>BD Microlance 3 cannula 20 G</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>301300</td><td>Cannula</td></tr><tr><td>BD Microlance Discardit II 20 mL Siringa</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>300296</td><td>Siringa in plastica</td></tr><tr><td>Aste di fissaggio</td><td>Legefirm</td><td>&lrm; 500343896</td><td>Diapason utilizzati come aste di fissaggio in metallo a forma di Y</td></tr><tr><td>Tubo termorestringente</td><td>Sekesoer</td><td>RSG-400</td><td>Tubo termorestringente</td></tr><tr><td>Catetere endovenoso</td><td>BD (Beckton, Dickinson)</td><td>393230</td><td>BD Venflon Pro Catetere endovenoso di sicurezza 14 G; accorciato con le forbici; in alternativa 16 G o 18 G</td></tr><tr><td>Tubo perfusivo in plastica</td><td>M. Schilling GmbH</td><td>S702NC150</td><td>Tubo di collegamento COEX 150 cm</td></tr><tr><td>Sutura in polifilamento</td><td>COVIDIEN</td><td>CL331</td><td>Sutura chirurgica in polifilamento consigliata con una forza da 1 a 2; l'ago può essere rimosso</td></tr><tr><td>Royal Gardineer Pad riscaldante Taglia S, 20 Watt</td><td>Royal Gardineer</td><td>IP67</td><td>Pad riscaldante</td></tr><tr><td>Filo guida Seldinger</td><td>VYGON</td><td>115.798</td><td>Filo guida in metallo dal set leadercath arterioso</td></tr><tr><td>Fascetta ad anello per vasi in silicone</td><td>SERAG WIESSNER</td><td>SL26</td><td>Fascetta ad anello in silicone 2,5 mm rossa</td></tr><tr><td>Spraque Dawley ratti</td><td>Janvier Labs</td><td></td><td>Ratti maschi del peso di 400 grammi</td></tr><tr><td>Piastra in acciaio</td><td>Maschinenbau Feld GmbH</td><td>C010206</td><td>Piastra in lamiera zincata, 40 x 50 cm, spessore 4,0 mm</td></tr></tbody></table>

intubazione endotracheale tramite tracheotomia e successiva toracotomia nei ratti per applicazioni non di sopravvivenza

Endotracheal Intubation via Tracheotomy and Subsequent Thoracotomy in Rats for Non-Survival Applications

L'intubazione endotracheale tramite tracheotomia e successiva toracotomia è stata eseguita in 10 ratti maschi (peso medio 405 ± 30 g) per applicazioni non di sopravvivenza. La procedura è stata eseguita da uno specializzando in chirurgia del secondo anno. Il tasso di successo definito dalla sopravvivenza oltre 20 minuti di intubazione e ventilazione è stato del 100%. La durata media della procedura di preparazione e intubazione dall'incisione cutanea fino al fissaggio del tubo di intubazione è stata di 6:55 ± 0:53 min (Tabella 1).
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Numero di animali utilizzati</td>
			<td>10</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peso corporeo (media e deviazione standard)</td>
			<td>405 ± 30 g</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tasso di successo dell'intubazione</td>
			<td>100%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Durata della procedura (media e deviazione standard)</td>
			<td>6:55 ± 0:53 min</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Saturazione media di ossigeno</td>
			<td>96%</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Saturazione minima di ossigeno</td>
			<td>92%</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabella 1: Risultati rappresentativi. Risultati rappresentativi del protocollo in 10 animali.
La saturazione è stata monitorata attraverso una sonda monouso auto-ossimetrica sulla zampa posteriore e non è mai scesa al di sotto del 92%. La ventilazione spontanea è stata contenuta fino all'incisione del diaframma. Tutti i ratti sono sopravvissuti ai 20 minuti necessari per le misurazioni sperimentali fino all'eutanasia intenzionale attraverso una brusca cardiectomia acuta (Figura 5).
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66684/66684fig05.jpg"> 
Figura 5: Saturazione periferica di ossigeno. Saturazione periferica di ossigeno misurata per l'intera durata di questa procedura. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66684/66684fig05large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>

Intubazione endotracheale tramite tracheotomia e successiva toracotomia nei ratti per applicazioni non di sopravvivenza

Endotracheal intubation and subsequent ventilation are often basic requirements for translational research in rat models for various interventions that ...

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Intubazione endotracheale in Mouse<em&gt; Via</em&gt; Laringoscopia diretta usando un otoscopio

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Aprire tracheostomia gastrico acido aspirazione Modello murino di lesioni polmonari acute Risultati in massima acuta non letale Lung Injury

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Intubazione endotracheale tramite tracheotomia e successiva toracotomia nei ratti per applicazioni non di sopravvivenza

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