October 4th, 2024
Qui, descriviamo un metodo completo per misurare la fosforilazione ossidativa mitocondriale in fibre muscolari scheletriche fresche permeabilizzate da muscolo umano o di topo. Questo metodo consente la quantificazione in tempo reale della respirazione mitocondriale e la valutazione della preferenza per il carburante e della flessibilità metabolica, preservando le reti mitocondriali esistenti e l'integrità della membrana.
La nostra ricerca si concentra sull'intersezione tra metabolismo e risposte allo stress nelle malattie metaboliche, un tema importante del programma NORD della Washington University. Grazie ai sinergismi tra i nostri nuclei NORD, siamo in grado di affrontare questioni complesse nel metabolismo nutrizionale e nelle malattie attraverso un approccio interdisciplinare e collaborativo. I saggi tradizionali di respirazione mitocondriale hanno esaminato i mitocondri isolati.
L'isolamento dei mitocondri richiede molto tempo e può compromettere l'integrità della membrana mitocondriale esterna. Inoltre, i mitocondri non funzionano da soli, ma fanno parte di una rete dinamica di adattamento metabolico cellulare. Il nostro protocollo mantiene questa rete per fornire una valutazione fisiologicamente rilevante della funzione mitocondriale.
La nostra attenzione si è estesa all'identificazione di regolatori della personalizzazione metabolica che sono importanti per la salute e la malattia. Le domande chiave che ci poniamo includono: questi regolatori, come la proteasi del sito-1, sono ugualmente importanti in diversi tipi di tessuto? E qual è il loro significato fisiologico?
Questo studio presenta un protocollo completo per misurare la fosforilazione ossidativa mitocondriale in fibre muscolari scheletriche permeabilizzate fresche da modelli umani o di topo. Il metodo consente la quantificazione in tempo reale della respirazione mitocondriale, della preferenza di combustibile e della flessibilità metabolica, preservando le reti mitocondriali e l'integrità della membrana.
High-resolution respirometry in permeabilized skeletal muscle fibers enables precise, physiologically relevant measurement of mitochondrial oxidative phosphorylation, a critical determinant of cellular energy metabolism. This approach supports early discovery and target validation for metabolic disease portfolios by providing robust, quantitative insights into mitochondrial function and metabolic flexibility. Integrating these measurements enhances predictive confidence at key inflection points in metabolic and muscle health R&D pipelines.
This high-resolution respirometry protocol bridges early discovery, lead identification, and preclinical research by enabling robust mitochondrial function assessment in both human and mouse muscle fibers.