February 28th, 2025
Qui, dimostriamo il metodo di caratterizzazione delle vescicole extracellulari (EV) raccolte da fluidi biologici, come lacrime e saliva, di soggetti umani. Lo scanner utilizzato in questo metodo è in grado di rilevare il fenotipo, le dimensioni e il conteggio totale delle particelle delle vescicole extracellulari a partire da 1 μL del campione.
Le vescicole extracellulari fungono da biomarcatori della malattia, riflettendo gli stati fisiologici. Il nostro approccio consente l'estrazione di dati da piccoli volumi di lacrime, facendo progredire la ricerca sulle vescicole extracellulari nei fluidi biologici. Le principali sfide sperimentali includono l'ottenimento di concentrazioni sufficienti di vescicole extracellulari da piccoli campioni, la riduzione al minimo della perdita di campione durante l'isolamento e l'ottimizzazione dell'analisi per prevenire la sovrasaturazione del chip o il rilevamento di segnali deboli.
Questo protocollo bypassa le fasi di isolamento, riducendo i tempi di elaborazione, e consente l'analisi delle vescicole extracellulari da volumi di campione minori, rendendolo ideale per campioni biologici limitati, come le lacrime. I biomarcatori non invasivi sono fondamentali per la diagnosi precoce e la gestione dei disturbi corneali. I biomarcatori delle vescicole extracellulari consentono il monitoraggio della malattia, trattamenti personalizzati, una migliore compliance del paziente e una migliore qualità della vita.
Il nostro laboratorio è stato all'avanguardia nell'analisi delle vescicole extracellulari in campioni lacrimali di soggetti KC, identificando firme tEV uniche. Questo apre la strada a future diagnosi e obiettivi terapeutici incentrati sulle vescicole extracellulari. Per iniziare, disponi i campioni biologici e un chip di tetraspanina sull'area di lavoro.
Pipettare 70 microlitri di campioni biologici umani che sono stati premiscelati con la soluzione B di un kit di tetraspanina umana su un chip. Posizionare la pellicola su una piastra di lavaggio dei trucioli per evitare l'evaporazione del campione. Dopo 16 ore, posizionare la piastra nella lavatrice per trucioli.
Bloccarlo in posizione e chiudere il coperchio. Premere l'opzione CW-TETRA v0 sulla rondella trucioli. Durante il lavaggio delle patatine, preparare 300 microlitri di soluzione bloccante per patatina.
Aggiungere 0,6 microlitri di ciascun anticorpo per chip alla soluzione bloccante. Agitare la soluzione bloccante con il cocktail di anticorpi per garantire una miscelazione accurata. Al termine del lavaggio dei trucioli, aggiungere 250 microlitri di soluzione bloccante con il cocktail di anticorpi sopra ogni chip.
Quindi chiudere il coperchio e premere Continua. Quando la rondella dei trucioli emette un segnale acustico, rimuovere la piastra di lavaggio dei trucioli. Sposta le fiches su per la rampa.
Riposizionare la piastra nella rondella per trucioli, assicurandosi che si blocchi saldamente in posizione. Chiudere il coperchio e premere Continua. Per iniziare, accendi un analizzatore di nanoparticelle.
Avviare il programma software di scansione sul desktop collegato all'analizzatore di nanoparticelle. Selezionare la cartella dei trucioli per scegliere ogni truciolo di tetraspanina e posizionarlo nella posizione del truciolo sul mandrino. Fare clic sui tre quadrati sotto la posizione del chip per attivare la fluorescenza.
I quadrati diventeranno gialli, blu e rossi. Premere sul coperchio del mandrino e tirarlo per rimuoverlo. Quindi fissare saldamente i chip di tetraspanina caricati con campione sul mandrino.
Allineare i pioli del coperchio del mandrino con i fori e premere verso il basso. Far scorrere il coperchio per bloccarlo in posizione. Quindi posizionare il mandrino sul tavolino e bloccarlo in posizione.
Quindi, fai clic su Scansiona chip dall'interfaccia del software, quindi fai clic su OK. Una volta che il tavolino si sposta completamente all'interno della macchina, chiudere lo sportello. Al termine della scansione, aprire lo sportello per espellere il tavolino e verificare i risultati. Se le scansioni sono andate a buon fine, scartare le fiches.
Posiziona la prossima serie di chip sul mandrino. In alternativa, riportare il mandrino vuoto sul tavolino. Uscire dal software e spegnere la macchina al termine.
Livelli ottimali di fluorescenza delle vescicole extracellulari sono stati osservati nei canali CD63, CD81 e CD9, mentre il canale di controllo MIgG è rimasto nero, confermando la specificità del controllo. Il CD81 è stato ridotto per i fluidi biologici. L'assenza di fluorescenza nei canali CD63, CD81 e CD9 è indicativa di un'assenza di vescicole extracellulari.
Lasovrasaturazione della fluorescenza era evidente, rendendo difficile discernere dati significativi a causa dell'eccessiva marcatura, in particolare nei canali CD63, CD81 e CD9.
Questo studio presenta un metodo innovativo per caratterizzare le vescicole extracellulari (EV) raccolte da fluidi biologici umani, come lacrime e saliva. Utilizzando un chip tetraspanin, l'approccio facilita l'analisi delle EV da volumi di campione minimi, facendo progredire lo studio dei biomarcatori non invasivi per il monitoraggio delle malattie.
Characterizing extracellular vesicles (EVs) from minimal biological fluid volumes addresses a critical bottleneck in non-invasive biomarker discovery and disease monitoring. This workflow enables high-content EV phenotyping from scarce patient samples, supporting translational research and early-stage target validation. The approach enhances predictive confidence for biomarker-driven portfolio decisions in ocular and systemic disease pipelines.
This EV characterization protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum, bridging early biomarker identification with translational validation in limited-sample contexts.