30 maggio 2025
Il presente protocollo descrive la costituzione e l'analisi istologica di modelli di organoidi esofagei che rappresentano diversi stadi di progressione tumorale. Questo metodo consente ai ricercatori di studiare i cambiamenti nella morfologia cellulare, nell'organizzazione spaziale e nei modelli di espressione dei marcatori molecolari durante la transizione dai tessuti normali a quelli cancerosi.
La nostra ricerca si concentra sull'inizio del tumore e sulla tumorigenesi precoce. Esaminiamo come le cellule normali si trasformano in cellule tumorali e come queste cellule modificano il loro microambiente per facilitare la tumorigenesi. Attualmente, ci sono molte tecnologie utilizzate per promuovere la ricerca, tra cui le tecnologie delle cellule staminali, le tecnologie di editing genetico, i sistemi avanzati di coltura 3D e i biomateriali e le tecnologie omiche a singola cellula e spaziale. La sfida più grande che dobbiamo affrontare è mantenere gli organoidi liberi da batteri e funghi. Questi contaminanti si insinuano durante la manipolazione e il trasporto dei tessuti, spesso rovinando le nostre colture.
[Istruttore] Per iniziare, scongelare la matrice della membrana basale e il terreno di coltura dell'organoide esofageo umano a quattro gradi Celsius. Trasferire il campione di tessuto in provette da centrifuga da cinque millilitri, quindi lavare il campione tre volte con un tampone di lavaggio a temperatura ambiente. Usando le forbici sterili, tritare il tessuto in frammenti di un millimetro cubo in provette da centrifuga da 1,5 millilitri. Ora, sospendere i frammenti di tessuto in un millilitro di tampone digestivo. Agitare la miscela a 37 gradi Celsius a 50-100 giri al minuto per 10-20 minuti per digerire il tessuto. Quindi, centrifugare la miscela a 400 g per cinque minuti a quattro gradi Celsius. Quindi scartare il surnatante. Risospendere il pellet in 500 microlitri di tripsina-EDTA allo 0,025%. Incubare la sospensione a 37 gradi Celsius per 10 minuti. Quindi aggiungere un millilitro di DMEM integrato con il 10% di siero fetale bovino per fermare l'attività enzimatica. Successivamente, passare la sospensione attraverso un filtro sterile da 70 micrometri e raccogliere il filtrato in una provetta da centrifuga da 1,5 millilitri. Centrifugare il filtrato per cinque minuti a 400 G a quattro gradi Celsius. Risospendere le cellule in 100 microlitri di H-EOCM dopo aver scartato il surnatante. Dopo aver risospeso le celle, determinare la densità delle celle utilizzando un contatore di celle. Quindi trasferire da 5.000 a 15.000 cellule per millilitro in una provetta fresca da 1,5 millilitri. Per la semina degli organoidi, risospendere delicatamente le cellule in 50-100 microlitri di matrice della membrana basale. Pipettare 50 microlitri della miscela di cellule della matrice al centro di ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti. Incubare a 37 gradi Celsius per 30 minuti per polimerizzare la matrice della membrana basale. Ora pipettare 500 microlitri di H-EOCM preriscaldato in ogni pozzetto per coprire la matrice. Quindi incubare la piastra in un incubatore umidificato con il 5% di anidride carbonica a 37 gradi Celsius. Per sostituire il fluido, aspirare il fluido esaurito. Rabboccare ogni pozzetto con 500 microlitri di H-EOCM fresco preriscaldato a 37 gradi Celsius. Per eseguire la colorazione in immunofluorescenza multiplex su organoidi reparaffinizzati e reidratati. Aggiungere la soluzione anti-siero di pecora per coprire gli organoidi su un vetrino posto in una camera di umidità e incubare il vetrino a temperatura ambiente per 30 minuti. Lavare il vetrino con Tween contenente PBS per due minuti. Quindi, far cadere l'anticorpo primario diluito per coprire l'area dell'organoide. Incubare in una camera di umidità in base ai requisiti degli anticorpi. Dopo l'incubazione, lavare i vetrini in PBS-T due volte per due minuti a 80 PMM in una camera termostabile. Ora versare la soluzione di anticorpi secondari sull'area dell'organoide e incubare in una camera di umidità a temperatura ambiente per 20 minuti. Dopo l'incubazione, lavare i vetrini in PBS-T due volte per due minuti a 80 giri/min in una camera termostabile. Pipettare la soluzione di colorante fluorescente sul vetrino lavato per coprire l'area dell'organoide e incubare nuovamente. Dopo l'incubazione, lavare i vetrini in PBS-T due volte. Per la colorazione multipla, il recupero ripetuto dell'antigene e il blocco degli anticorpi. Quindi versare la soluzione dappy per coprire l'area dell'organoide. Immergere i vetrini in acqua sterilizzata per due minuti per lavare via la macchia in eccesso. Aggiungere un supporto di montaggio anti-dissolvenza e applicare il vetrino coprioggetto prima di acquisire le immagini digitali. Le strutture degli organoidi sono diventate sempre più disorganizzate dagli stadi normali a quelli di carcinoma, come visualizzato dalla colorazione KRT6A. L'espressione di PDL1 è progressivamente aumentata dalla mucosa esofagea normale al carcinoma esofageo a cellule squamose.
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Questo protocollo descrive l'allestimento e l'analisi istologica di modelli di organoidi esofagei che riflettono diverse fasi della progressione tumorale. Consente ai ricercatori di studiare le variazioni nella morfologia cellulare, nell'organizzazione spaziale e nell'espressione dei marcatori molecolari dal tessuto normale a quello tumorale.
I modelli di organoidi esofagei umani consentono ai team biofarmaceutici di analizzare le transizioni cellulari e molecolari dallo stato normale a quello tumorale, sostenendo la previsione nell'ambito della scoperta oncologica precoce. L'analisi istologica quantitativa dell'architettura spaziale e dell'espressione dei biomarcatori fornisce informazioni utili per la validazione degli obiettivi terapeutici e la riduzione dei rischi meccanicistici in punti critici del percorso di sviluppo. Questi modelli facilitano la continuità traslazionale collegando la biologia della scoperta con la valutazione preclinica delle ipotesi terapeutiche.
Questo protocollo di organoidi si integra nel percorso di scoperta oncologica, dalla validazione precoce del bersaglio alla ricerca preclinica, consentendo test ipotetici iterativi e decisioni guidate da biomarcatori.