19 settembre 2025
L'applicazione terapeutica delle vescicole extracellulari (EV) ha il potenziale per rivoluzionare il trattamento del cancro e la somministrazione di farmaci. Le vescicole extracellulari derivate da cellule del recettore dell'antigene chimerico (CAR) isolate mediante cromatografia a scambio ionico mostrano una maggiore capacità di carico, migliorando significativamente la loro efficacia funzionale. Questo studio caratterizza ulteriormente i CAR-EV per chiarire la loro attività biologica e il loro potenziale terapeutico.
La nostra ricerca si concentra sullo sviluppo di diagnostica e terapie basate su esosomi. Un obiettivo è quello di sviluppare terapie basate su esosomi del recettore dell'antigene chimerico, che siano più sicure, più efficaci e accessibili rispetto alle terapie cellulari, per il trattamento dei tumori laterali. Le nostre piattaforme EXO-NET ed EXO-ACE consentono l'isolamento scalabile, riproducibile e conforme alle GMP degli esosomi con elevata resa e purezza, risolvendo i limiti dei metodi tradizionali per la ricerca e la terapia.
EXO_NET net ed EXO-ACE consentono un isolamento rapido, scalabile e conforme alle GMP delle vescicole extracellulari, con purezza e riproducibilità superiori, superando le prestazioni di centrifugazione e precipitazione per la ricerca, la diagnostica e le applicazioni terapeutiche. Abbiamo sviluppato un metodo rapido, scalabile e convalidato per progettare CAR-EV e fornire terapie mirate di nuova generazione, prive di cellule. Ciò fornisce un flusso di lavoro robusto che può essere applicato ad altre condizioni patologiche in cui vi è una necessità clinica.
Il nostro prossimo obiettivo è quello di utilizzare i metodi che abbiamo sviluppato e convalidato per generare CAR-EV per la somministrazione di terapie a RNA per il trattamento di tumori solidi e altre malattie infiammatorie. Per iniziare, portare la colonna a scambio ionico a temperatura ambiente lasciandola riposare in posizione verticale per 15 minuti. Utilizzando una pipetta, aggiungere 10 volumi di colonna di tampone di rigenerazione, seguiti da 10 volumi di colonna di tampone di equilibrio.
Far passare il mezzo condizionato THOD attraverso un filtro in polietersulfone da 0,22 micrometri. A questo punto, aggiungere fino a 31,2 volumi di colonna del campione filtrato nella colonna bilanciata. Quindi aggiungere 10 volumi di colonna di tampone di lavaggio, seguiti da 2,5 volumi di colonne di tampone di eluizione.
Raccogliere il flusso attraverso il quale sono contenute le vescicole extracellulari arricchite. Utilizzando filtri centrifughi di ultrafiltrazione da 30 kilodalton e un diluente, eseguire lo scambio del tampone sull'eluizione della vescicola extracellulare, garantendo una diluizione minima di 100 volte. Regolare il volume finale della soluzione scambiata in base alle esigenze sperimentali.
Passare il campione di vescicola extracellulare arricchita attraverso un filtro da 0,22 micrometri per sterilizzarlo per i saggi in vitro. Determinare la distribuzione dimensionale, la concentrazione e la resa delle vescicole extracellulari CAR utilizzando l'analisi di tracciamento delle nanoparticelle. Per l'isolamento delle vescicole extracellulari pan-esosoma ad alto rendimento, accendere e accedere allo strumento.
Configurare le impostazioni per stabilire il protocollo di isolamento delle proteine HT EV. Preparare una piastra a pettine a punta posizionando un pettine a punta in una piastra a 96 pozzetti profondi. Aggiungere un millilitro di PBS in ogni pozzetto per preparare tre piastre di lavaggio.
A questo punto, preparare una piastra di eluizione pipettando 35 microlitri di tampone SDS all'1% in ciascun pozzetto di una piastra a 96 pozzetti. Quindi preparare una piastra di legatura aggiungendo un millilitro del mezzo condizionato. Sul sistema di isolamento automatizzato, avviare il protocollo selezionando il programma HT EV Protein Isolation Protocol e selezionare il pulsante di riproduzione.
Aprire lo strumento per iniziare a caricare le piastre. Seguire le istruzioni dello strumento e caricare le piastre di eluizione preparate, seguite dalle piastre a pozzetti profondi a tre lavaggi nello strumento. Poco prima di caricare la piastra di legatura, aggiungere 30 microlitri di perle di cattura del pan-esosoma in ciascun pozzetto.
Caricare la piastra di legatura nello strumento, quindi caricare la piastra del pettine della punta e chiudere lo strumento per avviare la legatura. Il sistema mescolerà il campione di terreno condizionato e le microsfere magnetiche in modo continuo a bassa velocità per 30 minuti, facilitando l'efficiente cattura delle vescicole extracellulari. Al termine della fase di legatura, lasciare che il sistema esegua tre fasi di lavaggio, mescolando a bassa velocità per 30 secondi per rimuovere i contaminanti non specifici.
Consentire al sistema automatizzato di avviare la lisi delle vescicole extracellulari per il recupero delle proteine eseguendo una miscelazione di fondo di 30 secondi. Durante l'incubazione, lo strumento si fermerà per sette minuti e 30 secondi, mantenendo i puntali della pipetta posizionati sopra ciascun pozzetto. Avvia un altro mix di 30 = secondi, seguito da un'altra pausa di sette minuti e 30 secondi.
Al termine del protocollo, il sistema solleverà il pettine per puntali usato, lasciando la soluzione nella piastra a 96 pozzetti e le perle magnetiche attaccate ai puntali. Infine, lo strumento procederà alla fase di uscita, riportando il pettine di punta nella piastra del pettine di punta. Aprire lo strumento e rimuovere le piastre.
La fluorescenza GFP ha confermato l'espressione di CAR nelle cellule T trasdotte, con localizzazione evidente nei cluster cellulari e colocalizzazione verificata sovrapponendo i canali del campo chiaro e della GFP. L'analisi del tracciamento delle nanoparticelle ha rivelato una concentrazione significativamente più elevata di vescicole extracellulari nella frazione EV arricchita rispetto ai terreni condizionati per i costrutti EGFR e HER2 CAR. Il western blotting ha confermato la presenza del granzima B nelle cellule che esprimono CAR e nelle vescicole extracellulari isolate, con la calnexina assente nelle vescicole extracellulari, indicando l'assenza di contaminazione cellulare.
Le vescicole extracellulari CAR mirate all'EGFR hanno ridotto significativamente la vitalità delle cellule del cancro al seno MCF-7 del 70% e la vitalità delle cellule del cancro del sangue K-562 del 40%Le vescicole extracellulari CAR mirate a HER2 hanno mostrato una riduzione di circa il 10% della vitalità delle cellule del cancro al seno MCF-7, pur non avendo alcun effetto osservabile sulle cellule del cancro del sangue K-562.
Questo studio esplora lo sviluppo di vescicole extracellulari derivate da cellule con recettore chimerico dell'antigene (CAR-EV) per il trattamento del cancro. Migliorando i metodi di isolamento delle EV, questa ricerca incrementa significativamente l'efficienza dei farmaci mirati, rivelando il potenziale delle CAR-EV nel veicolare terapie a base di RNA per tumori solidi e malattie infiammatorie.
Le piattaforme scalabili di CAR-EV superano limitazioni fondamentali delle immunoterapie cellulari, consentendo il rilascio regolabile e privo di cellule di carichi citotossici mirati e di RNA. Questa tecnologia aumenta l'affidabilità predittiva nella fase iniziale di scoperta e nella valutazione preclinica, riducendo il rischio di eventi avversi e sostenendo strategie di somministrazione ripetuta. I flussi di lavoro della piattaforma, conformi alle norme GMP e ad alta produttività per l'isolamento e l'analisi, posizionano i CAR-EV come una capacità riutilizzabile e pronta per l'uso aziendale, accelerando lo sviluppo terapeutico in diversi settori dell'oncologia.
La piattaforma CAR-EV integra le fasi iniziali della scoperta fino alla ricerca preclinica, supportando l'identificazione dei composti promettenti e la valutazione traslazionale di immunoterapie mirate.