October 10th, 2025
Questo protocollo descrive un metodo di microscopia ottica a basso costo per valutare la morfologia e la funzione cardiaca negli embrioni di zebrafish, consentendo una valutazione riproducibile della cardiotossicità dello sviluppo senza la necessità di sistemi di imaging avanzati.
La microscopia ad alta risoluzione, i reporter fluorescenti e l'analisi digitale delle immagini sono alcune delle tecnologie che permettono una valutazione dettagliata della funzione cardiaca embrionale nei pesci zebra. Mantenere condizioni di imaging costanti e minimizzare il movimento degli embrioni restano sfide importanti per misurazioni accurate della funzione cardiaca. Per cominciare, registra video di embrioni di pesce zebra a 96 ore di distanza in formati non compressi, per consentire un'analisi accurata della dinamica del movimento cardiaco.
In sequenza, clicca su File, Apri, poi scegli il file AVI in ImageJ per importare i video. Usa Analizza, poi clicca su Imposta scala, inserisci il diametro del campo noto e abilita l'opzione globale per applicare la scala su tutte le misurazioni. Usa gli strumenti ROI per segnare gli assi ventricolari lungo e corto durante la sistole finale e la diastoli finale.
Successivamente determina l'area superficiale ventricolare usando la formula di approssimazione dell'ellisse. Stimare il volume ventricolare alla diastole terminale e alla sistole finale usando la formula del volume ellissoideo. Ora calcola la variazione frazionaria dell'area e l'accorciamento frazionario.
Poi determina il volume di colpo, SV, e la frazione di eiezione, EF. Per un'analisi automatizzata, avvia il software Z-Embryo Analyzer e clicca su File, poi apri Video per importare il video desiderato. Clicca sul pulsante Rileva Cuore per permettere al software di localizzare automaticamente la regione di interesse in base alle fluttuazioni di luminosità tra i fotogrammi video. Lascia che il software analizzi le variazioni di luminosità all'interno della regione rilevata di interesse per stimare la frequenza cardiaca, poi calcoli la gittata cardiaca.
I grafici mostrano l'area e il volume della camera ventricolare misurati all'estremità della diastole e all'estremità della sistole negli embrioni di pesce zebra a 96 ore dalla fecondazione. Le differenze quantitative tra la diastole finale e la sistole finale riflettono la funzione sistolica normale durante lo sviluppo cardiaco precoce, supportando l'applicabilità di questo metodo. Negli embrioni sani di pesce zebra, il volume medio di ictus è stato di 0,213 nanolitri.
La gittata cardiaca è stata di 27,8 nanolitri al minuto. La frazione di espulsione era del 41,99% e la frequenza cardiaca media era di 130 battiti al minuto. Negli embrioni sani di pesce zebra, la variazione media dell'area frazionaria era del 61,2% e l'accorciamento frazionario del 44,5%. Gli embrioni esposti al cadmio mostravano morfologia cardiaca anomala con ventricoli ingrossati ed edema pericardico.
Negli embrioni esposti al cadmio, il volume ictus è stato significativamente superiore rispetto ai controlli. La gittata cardiaca è aumentata e la frequenza cardiaca è diminuita. Il protocollo affronta la mancanza di metodi standardizzati e accessibili per quantificare la funzione cardiaca embrionale dei pesci zebra con flussi di lavoro riproducibili.
Questo protocollo utilizza microscopia standard e analisi open source, rendendo possibile una valutazione cardiaca di alta qualità senza attrezzature specializzate. I risultati forniscono un protocollo affidabile che migliora la comparabilità tra gli studi e consente una valutazione più precisa dei fenotipi cardiaci.
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Questo protocollo descrive un metodo di microscopia ottica a basso costo per valutare la morfologia e la funzione cardiaca negli embrioni di zebrafish, consentendo una valutazione riproducibile della cardiotossicità dello sviluppo senza la necessità di sistemi di imaging avanzati. Il metodo permette un'analisi dettagliata della funzione cardiaca utilizzando microscopia standard e software open-source.
Quantitative cardiac imaging in zebrafish embryos enables early-stage detection of developmental cardiotoxicity, supporting predictive de-risking in cardiovascular drug discovery. Standardized video analysis workflows provide reproducible, high-throughput functional readouts, facilitating robust target validation and mechanistic interrogation. This approach enhances portfolio triage by enabling scalable, resource-efficient assessment of cardiac liabilities in preclinical models.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven cardiac function testing, assay standardization, and quantitative analytics in zebrafish embryos.