4 novembre 2025
I dosaggi immunologici a fluorescenza multiplex stanno diventando un punto di riferimento per i test sierologici. La loro applicazione, tuttavia, è limitata dalla complessità e dai lunghi processi di accoppiamento perlina-analita. Questo rapporto presenta un protocollo di accoppiamento di microsfere multiplex semi-automatizzato e riproducibile che è paragonabile al metodo standard, riducendo notevolmente il tempo necessario per ottenere i risultati.
Nel nostro laboratorio, misuriamo le risposte immunitarie alle malattie infettive per comprendere meglio come vengono trasmesse nelle popolazioni. Gli sviluppi recenti nel nostro campo sono i saghi multiplex, che ci permettono di misurare molti anticorpi diversi in una singola reazione usando il volume minimo. Per cominciare, ottenete otto piastre di pozzo profondo da 96.
Prepara ogni piastra aggiungendo pettini a punta, fosfato di sodio monobasico, soluzione di Tritone, sulfo-NHS, EDC e soluzione antigenica. Per impostare il ciclo di accoppiamento sul processore automatico, accendere la macchina, impostare i parametri del protocollo usando il software. Carica le piastre negli slot assegnati sulla macchina, poi seleziona il protocollo e avvia il ciclo dopo il completamento, scarica le piastre e spegni la macchina secondo le istruzioni del produttore.
Controlla visivamente che la piastra otto contenga le perline visibili come un pellet marrone. Trasferire le due perline dalla lastra otto in tubi individuali da 1,5 millilitri per la conservazione. Conservare le perline accoppiate a quattro gradi Celsius fino all'uso.
Per contare le perline, vortice accuratamente le perline accoppiate. Trasferire 10 microlitri in una camera di conteggio cellulare, poi seguire le istruzioni del produttore per leggere il conteggio delle sfere per millilitro. Controlla l'aggregazione visualizzando l'immagine sul contatore delle celle.
Imposta la disposizione delle piastre. Campioni diluiti e standard in PBT buffer in una piastra separata non legante. Vortice accuratamente le sfere accoppiate si mescolano per 30 secondi, poi sonica per almeno 60 secondi.
Ora, trasferisci i volumi adeguati di antigene della sfera in un tubo centrifuga e regola il volume con il buffer PBT. Mescola bene il premistura. Distribuire 50 microlitri del premixo sulla micropiastra d'immagini, poi pipettare 50 microlitri dei campioni diluiti sulle sfere nella micropiastra d'imaging e mescolare su un agitatore di piastre.
Posiziona il piatto su un rack magnetico per 60 secondi a temperatura ambiente. Tieni saldamente la piastra sulla griglia e scarta il sovrantantante. Prepara una soluzione diluita dell'anticorpo secondario con una quantità adeguata di tampone PBT.
Aggiungi 50 microlitri dell'anticorpo alle sfere lavate nella piastra di immagini. Incubare il piatto su uno shaker per 15 minuti a temperatura ambiente ed eseguire altri tre lavaggi con PBT. Dopo aver inserito la piastra nel lettore di fluorescenza, imposta il protocollo e salvalo.
La linearità della risposta degli anticorpi è stata confermata per alcuni antigeni arbovirus testati a concentrazioni ottimali nel pool standard ORPAL. È stata osservata una linearità parallela della risposta degli anticorpi confrontando i metodi di accoppiamento manuali e tre metodi automatici. I valori mediani di intensità di fluorescenza ottenuti da 19 diverse placche per ciascun antigene e controllo rientravano nell'intervallo della media.
È stata osservata una forte correlazione tra i valori mediani di intensità di fluorescenza ottenuti da saghi multiplex e singleplex utilizzando il pool standard ORPAL. Nella coorte del Senegal, è stata osservata una chiara distribuzione bimodale nella risposta anticorpale al VVLP dei pulcini e sono state osservate anche code bimodali sottili per DENV1 NS1 e RVFV NP. Abbiamo dimostrato che i nostri test sierologici possono misurare simultaneamente gli anticorpi contro molti arbovirus. Il nostro test validato per misurare risposte multiple a diversi arbovirus aiuterà i nostri sforzi per comprendere la trasmissione di questi virus in tutta l'Africa.
Il nostro protocollo offre un enorme risparmio di tempo e riproducibilità nella preparazione dei reagenti per i saggi multiplex.
Questo protocollo illustra un metodo semiautomatico di accoppiamento di microsfere multiplex per test sierologici di arbovirus. Affronta le difficoltà legate ai processi lunghi richiesti dai saggi tradizionali, migliorando l'efficienza e la riproducibilità.
I saggi sierologici multiplex per arbovirus rispondono all'esigenza fondamentale di rilevamento ad alto rendimento e riproducibile degli anticorpi nella sorveglianza globale e nella ricerca sui vaccini. Questa piattaforma basata su microsfere consente la quantificazione simultanea delle risposte immunitarie a più antigeni di arbovirus, supportando decisioni rapide nelle fasi iniziali della scoperta e nei flussi di lavoro traslazionali. La scalabilità e la riproducibilità del protocollo influiscono direttamente sulla priorizzazione del portafoglio e sul progresso adeguato al rischio nella ricerca e sviluppo su malattie infettive.
Questo saggio multiplo integra le fasi iniziali della scoperta fino all'identificazione dei candidati e alla validazione preclinica, supportando la sorveglianza sierologica e la valutazione dell'immunogenicità.