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<ol><li>Cherry, B. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+cardiac+arrest+and+resuscitation+in+the+domestic+pig%5BTitle%5D)+AND+%22World+J+Crit+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Modeling cardiac arrest and resuscitation in the domestic pig.</a> World J Crit Care Med. 4 (1), 1(2015).</li>
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<li>Faldaas, B. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+feedback+on+chest+compression+efficacy+by+hands-free+carotid+Doppler+in+a+porcine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Ressusc+Plus%22%5BJournal%5D)">Real-time feedback on chest compression efficacy by hands-free carotid Doppler in a porcine model.</a> Ressusc Plus. 18, 100583(2024).</li>
<li>Faldaas, B. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+hands-free+carotid+Doppler+can+identify+spontaneous+circulation+without+interrupting+cardiopulmonary+resuscitation%3A+an+animal+study%5BTitle%5D)+AND+%22Intensive+Care+Med+Exp%22%5BJournal%5D)">A hands-free carotid Doppler can identify spontaneous circulation without interrupting cardiopulmonary resuscitation: an animal study.</a> Intensive Care Med Exp. 12 (1), 121(2024).</li>
<li>Ruiz De Gauna, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhythm+Analysis+during+Cardiopulmonary+Resuscitation+Past%2C+Present%2C+and+Future%5BTitle%5D)+AND+%22BioMed+Res+Int%22%5BJournal%5D)">Rhythm Analysis during Cardiopulmonary Resuscitation Past, Present, and Future.</a> BioMed Res Int. 2014, 1-13 (2014).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Lead singolo a bobina ICD Abbott Durata 7120</td><td>Abbott, Abbot Park, IL</td><td>7120</td><td></td></tr><tr><td>Abbott Gallant VR ICD</td><td>Abbott, Abbot Park, IL</td><td>CDVRA500Q</td><td></td></tr><tr><td>Abbott Merlin Programmer</td><td>Abbott, Abbot Park, IL</td><td>3650</td><td></td></tr><tr><td>Catetere venoso centrale Certofix trio</td><td>B. Braun Medical, Melsungen, Germania</td><td>4167408-07</td><td></td></tr><tr><td>Tubo endotracheale Portex #7.0</td><td>Smiths Medical, Rockland, MA</td><td>100/150/070</td><td></td></tr><tr><td>Exagon VET (Pentobarbital 400 mg/mL)</td><td>VetViva Richter, Wels, Austria</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Eparina 5000 IU/mL</td><td>Panpharma, Luitr&eacute;, Francia</td><td>ETI3M807-1</td><td></td></tr><tr><td>Ketamina 50 mg/mL</td><td>Abcur AB, Helsingborg, Svezia</td><td>LB-12355-01</td><td></td></tr><tr><td>Midazolam 5 mg/mL</td><td>B. Braun Medical, Melsungen, Germania</td><td>753-12612876-0621</td><td></td></tr><tr><td>Morfina</td><td>Abcur AB, Helsingborg, Svezia</td><td>LB-122184-01</td><td></td></tr><tr><td>Soluzione normale per soluzione salina</td><td>Fresenius Kabi, Uppsala, Svezia</td><td>B202382-05</td><td></td></tr><tr><td>PentoCur (Tiopentale)</td><td>Abcur AB, Helsingborg, Svezia</td><td>LB-122564-01</td><td></td></tr><tr><td>Catetere IV perifalo 20G Vasofix</td><td>B. Braun Medical, Melsungen, Germania</td><td>4268113B</td><td></td></tr><tr><td>PiCCO&nbsp; Kit di monitoraggio (trasduttore di pressione, sistema di lavaggio e termistore)</td><td>Pulsion, Feldkirchen, Germania</td><td>PV8215</td><td></td></tr><tr><td>Catete PiCCO 5 Fr 20 cm</td><td>Pulsion, Feldkirchen, Germania</td><td>PV2015L20-A</td><td></td></tr><tr><td>Kit trasduttore di pressione e sciacquaggio TruWave</td><td>Edwards Lifescience, Irvine, CA</td><td>PX272</td><td></td></tr><tr><td>RescueDoppler</td><td>Cimon Medical, Trondheim, Norvegia</td><td>N/A</td><td>Proprietario, non disponibile in commercio</td></tr><tr><td>Acetato ringer</td><td>Fresenius Kabi, Uppsala, Svezia</td><td>B203150-02</td><td></td></tr><tr><td>Cather urinario 12 Ch</td><td>Vari</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Introduttore di guaina vascolare Prelude 7.0 Fr</td><td>Merit Medical, South Jordan, UT</td><td>PSI-7F-11-035-18G</td><td></td></tr><tr><td>Gel per ultrasuoni Vue</td><td>Optimum medical, Leeds, United Kingdim</td><td>1157</td><td></td></tr></tbody></table>

modello di arresto cardiaco suino con defibrillatore impiantabile

Porcine Cardiac Arrest Model Using an Implantable Defibrillator

Modello di arresto cardiaco suino con defibrillatore impiantabile

This study presents a reproducible porcine cardiac arrest model utilizing an implantable cardioverter-defibrillator (ICD) for reliable induction and ...

Volevamo sviluppare un modello semplice e affidabile di fibrillazione ventricolare e cardioversione, in grado di fornire risultati più stabili e consentire l'uso di un numero minore di animali negli studi sulla rianimazione. Utilizziamo un defibrillatore cardioverter impiantabile per indurre in modo affidabile la fibrillazione ventricolare, eseguire la cardioversione e registrare l'elettrocardiogramma intracardiaco. Dopo aver preparato il maiale, posizionare l'animale profondamente anestetizzato in posizione supina e fissarne gli arti mediante una benda di garza.Disinfettare il collo, la mandibola, l'inguine e l'addome utilizzando clorhexidina alla concentrazione di 5 milligrammi per millilitro in etanolo, e coprire le aree disinfettate con campi sterili. Estendere una zampa posteriore per allungare l'arteria iliaca. Mediante ecografia, localizzare l'arteria iliaca e inserire un catetere arterioso di 5 French per la misurazione continua dell'indice cardiaco mediante tecnica di Seldinger.Collegare il catetere arterioso a un trasduttore di pressione pre-riempito e al set di lavaggio. Dopo aver azzerato il trasduttore, verificare un tracciato pressorio arterioso adeguato e quindi rilasciare la zampa posteriore. Inclinare il suino in posizione di Trendelenburg e aumentare la pressione positiva alla fine dell'espirazione del ventilatore a 10 centimetri di acqua per dilatare le vene del collo.Sotto guida ecografica, localizzare la vena giugulare esterna destra e inserire un introduttore vascolare di sette French utilizzando la tecnica di Seldinger. Confermare il reflusso venoso e risciacquare l'introduttore con soluzione fisiologica. Successivamente, inserire un set per accesso venoso centrale di nove French con due lumi e valvola di emostasi.Verificare il reflusso venoso attraverso i lumi. Trasferire le infusioni di sedativi e di fluidi al catetere. Successivamente, collegare un trasduttore di pressione a uno dei lumi del catetere e verificare la presenza di un tracciato di pressione venosa centrale.Abbassare la pressione positiva alla fine dell'espulsione del ventilatore a 5 centimetri di acqua. Inserire un elettrodo impiantabile monospira con defibrillatore cardioversione o elettrodo ICD attraverso l'introduttore vascolare e avanzarlo fino all'apice del ventricolo destro. Successivamente, collegare il filo guida ICD a un analizzatore del sistema di pacing utilizzando il connettore dedicato.Assicurarsi che l'ampiezza dell'onda R intracardiaca sia superiore a 6 millivolt. Utilizzare un bisturi per praticare un'incisione cutanea orizzontale di 4 centimetri al di sotto della clavicola sinistra. Successivamente, utilizzare la diatermia seguita da dissezione con le dita a scatto per creare una tasca sottocutanea sufficientemente ampia da contenere l'ICD.Collegare il filo guida all'ICD e posizionare il dispositivo nella tasca sottocutanea. Verificare che il filo guida del ventricolo destro rimanga in posizione stabile. Programmare la modalità di stimolazione sui parametri desiderati dopo aver collegato l'ICD al programmatore e verificare la soglia di stimolazione dell'onda R e le impedenze.Quindi programmare i parametri di terapia per la tachiarritmia. Sullo schermo del programmatore, selezionare l'icona Test e aprire la cartella Ventricular Fibber e NIPS. Nella sezione Ventricular Fibber, selezionare DC Fibber e impostarlo a 7,5 volt per due secondi per indurre fibrillazione ventricolare.Quando si induce la fibrillazione ventricolare, utilizzare la somministrazione automatica in modo che il dispositivo eroghi la terapia secondo i parametri programmati. Indurre la tachicardia ventricolare selezionando l'icona NIPS ventricolare. Scegliere l'icona Burst e impostare la lunghezza del ciclo desiderata, ad esempio 240 millisecondi.Quindi premere Hold per applicare l'impulso fino a 20 secondi. Se viene indotta una tachicardia ventricolare o una fibrillazione ventricolare, somministrare la terapia secondo le impostazioni programmate nella cartella Tachy. Selezionare l'icona Parametri per rivedere le impostazioni ed assicurarsi del ripristino del ritmo sinusale.Monitorare la pressione arteriosa tramite il catetere arterioso iliaco. Integrate questa misurazione con un monitoraggio continuo del flusso sanguigno mediante Doppler, posizionando la sonda senza mani perpendicolarmente all'arteria carotidea sinistra. Verificate che sul display del Doppler sia visibile un tracciato chiaro del flusso carotideo.Successivamente, fissare accuratamente la sonda con nastro adesivo. Monitorare il ritmo cardiaco utilizzando l'elettrocardiogramma intracardiaco ottenuto dal pacemaker e l'elettrocardiogramma superficiale visualizzato sul monitor. Dopo aver indotto fibrillazione ventricolare o tachicardia ventricolare, osservare la cessazione del flusso carotideo sul tracciato Doppler e mantenere il periodo di assenza di flusso secondo il protocollo dello studio.Quindi iniziare la rianimazione cardiopolmonare manuale, le compressioni meccaniche o altre interventi. Confermare il ritorno della circolazione spontanea utilizzando la pressione arteriosa invasiva e la velocità del flusso guidata da ultrasuoni non invasiva. Se necessario, convertire il suino al ritmo sinusale somministrando uno shock manuale in corrente continua (DC).Interrompere la fibrillazione ventricolare entro 120 secondi per massimizzare la probabilità di una conversione riuscita. Se l'animale è in tachicardia ventricolare, utilizzare il pacing anti-tachicardia o la cardioversione sincronizzata. Infine, permettere all'animale di riposare e assicurare la normalizzazione dei parametri fisiologici, inclusi la pressione sanguigna, l'anidride carbonica al fine espiratorio e il pH.La modalità Ventricular Fibber ha indotto fibrillazione ventricolare o tachicardia ventricolare in tutti e 11 gli animali. La terapia erogata dal DAI ha successivamente ripristinato il ritmo sinusale e la circolazione spontanea in ogni animale. La percentuale media di successo nel ripristino della circolazione spontanea dopo fibrillazione ventricolare indotta è stata di circa il 92%. Il DAI ha indotto una media di 18 aritmie ventricolari per animale, comprendenti fibrillazione ventricolare e tachicardia ventricolare.Rispetto ad altri metodi, il nostro approccio ha raggiunto un successo del 92% nel ripristino della circolazione con monitoraggio del ritmo artificiale durante la rianimazione cardiopolmonare. La principale sfida è la necessità di apparecchiature specializzate e operatori esperti per l'impianto e la programmazione del defibrillatore cardioversore impiantabile (ICD). Il nostro modello aumenta il successo della rianimazione da circa il 50% al 90%, consentendo cicli ripetuti di fibrillazione ventricolare, rianimazione cardiopolmonare e cardioversione per animale, riducendo in modo significativo l'uso di animali.

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Questo articolo descrive un modello di ratto di fibrillazione ventricolare indotta elettricamente e rianimazione mediante compressione toracica, ventilazione e somministrazione di scosse elettriche che simula un episodio di arresto cardiaco improvviso e rianimazione cardiopolmonare convenzionale. Il modello consente di raccogliere informazioni sulla fisiopatologia dell'arresto cardiaco e di esplorare nuove strategie di rianimazione.

Un modello di ratto di fibrillazione ventricolare e Rianimazione dal convenzionale chiuso petto Tecnica

Abbiamo sviluppato un modello suino per la somministrazione mirata di agenti farmacologici all'interno dello spazio/fluido pericardico. Utilizzando questo approccio, è possibile studiare i benefici relativi degli agenti somministrati sulla fibrillazione atriale indotta, sui periodi refrattari relativi e/o sulla protezione ischemica.

Testare l&#39;efficacia di agenti farmacologici in un pericardica target Delivery Model nel suina

Qui dimostriamo un protocollo per standardizzare le procedure di campionamento di un modello porcino stabilito di infarto miocardico acuto al fine di aumentarne il valore traslazionale nella comprensione della patofisiologia della lesione del miocardio di ischemia/riperfusione e per testare nuovi farmaci candidati.

Miglioramento di un modello di infarto miocardico porcina cassa chiusa tramite la normalizzazione del tessuto e le procedure di campionamento di sangue

Abbiamo cercato di stabilire un modello suine di insufficienza cardiaca indotta dal blocco dell'arteria circumflex sinistra e dal rapido ritmo per testare l'effetto e la sicurezza della somministrazione intramiocardiale delle cellule staminali per terapie basate sulle cellule.

Istituzione di un modello suina di infarto post-miocardico per il trattamento delle cellule staminali

La rianimazione cardiopolmonare e la defibrillazione sono le uniche opzioni terapeutiche efficaci durante l'arresto cardiaco causato dalla fibrillazione ventricolare. Questo modello presenta un regime standardizzato per indurre, valutare e trattare questo stato fisiologico in un modello di porcellana, fornendo così un approccio clinico con varie opportunità per la raccolta e l'analisi dei dati.

Modello standardizzato di fibrillazione ventricolare e supporto avanzato per la vita cardiaca in suina

L'obiettivo generale dello studio attuale è quello di presentare le tecniche di induzione dell'infarto del miocardio (MI) e dell'insufficienza cardiaca da infarto post-miocardico (post-MI HF) nei minipig di Gottinga chiusi e adulti e la caratterizzazione del modello HF post-MI nei minipig di Gottinga rispetto ai maiali Landrace.

Infarto post-miocardico Insufficienza cardiaca in occlusione coronarica a torace chiuso/ modello di riperfusione nei minipig di Gottinga e nei maiali Landrace

Descriviamo un modello di pericardite sterile in minipigs per studiare la miopatia atriale e la fibrillazione atriale (AF). Presentiamo tecniche chirurgiche e anestetiche, strategie per l'accesso vascolare e un protocollo per studiare l'inducibilità della fibrillazione atriale.

Pericardite sterile in Aachener Minipigs come modello per la miopatia atriale e la fibrillazione atriale

I modelli animali di infarto miocardico (MI) che emulano il processo naturale della malattia nell'uomo sono cruciali per comprendere i meccanismi fisiopatologici e testare la sicurezza e l'efficacia delle nuove terapie emergenti. Qui, descriviamo un modello di suini MI creato implementando una bobina di embolizzazione percutanea.

Infarto miocardico mediante dispiegamento della bobina di embolizzazione percutanea in un modello suino

Il presente protocollo descrive tre metodi di somministrazione di agenti terapeutici cardioattivi in un modello suino. Le femmine di suino autoctono hanno ricevuto un trattamento attraverso: (1) toracotomia e iniezione transepicardica, (2) iniezione transendocardica basata su catetere o (3) infusione endovenosa tramite minipompa osmotica della vena giugulare.

Somministrazione di terapie cardioattive in un modello di infarto miocardico suino

Questo protocollo presenta un modello di fibrillazione ventricolare a lungo termine nei cuori di ratto indotta dalla stimolazione continua con corrente alternata a bassa tensione. Questo modello ha un alto tasso di successo, è stabile, affidabile e riproducibile, ha un basso impatto sulla funzione cardiaca e causa solo lievi lesioni miocardiche.

Un modello di fibrillazione ventricolare a lungo termine in cuori di ratto isolati

Questo protocollo descrive un modello suino neonatale di bypass cardiopolmonare (CPB), con arresto circolatorio e cardiaco come strumento per studiare il grave danno cerebrale e altre complicanze secondarie al CPB.

Modello animale pediatrico di rianimazione cardiopolmonare extracorporea dopo arresto circolatorio prolungato

Nord University.  Questo protocollo dimostra l'uso di un cardioverter-defibrillatore (ICD) impiantabile per indurre in modo affidabile aritmie ventricolari, eseguire cardioversione interna e ottenere registrazioni ECG intracardiache in un modello suino.

Modello di arresto cardiaco suino con defibrillatore impiantabile

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