10 aprile 2026
Forniamo un protocollo minimamente invasivo per il trapianto intramuscolare di isolotti di cellule staminali pancreatiche derivate da cellule staminali umane in topi immunodeficienti per l'impianto in vivo e l'analisi a valle.
Studiamo lo sviluppo del pancreas endocrino umano utilizzando occhiali derivati dalle cellule staminali per comprendere la base genetica del diabete. Il trapianto tradizionale di capsule renali è altamente invasivo. Il protocollo di trapianto intramuscolare offre un'alternativa più semplice, riproducibile e minimamente invasiva.
Per cominciare, aggiungere 0,5 millilitri di soluzione antiaderente al 5% per coprire il fondo di una piastra micropozzo a 24 pozzi contenenti micropozzi piramidali invertiti. Centrifuga la piastra a 1.300 g per 10 minuti a temperatura ambiente. Poi esamina i micropozzi al microscopio per trovare bolle d'aria.
Dopo aver ricentrifugato la placca, per rimuovere l'aria intrappolata, aspirare la soluzione antiaderente. Poi lava ogni pozzo con 0,5 millilitri di PBS e ripeti ancora una volta il passaggio di lavaggio. Successivamente, lavare i progenitori pancreatici coltivati sviluppati dagli hPSC con un millilitro di PBS con 0,5 millimolari di EDTA.
Aspirare il PBS con 0,5 millimolari di EDTA e coprire i pozzi con tripsina. Poi incubare a 37 gradi Celsius per otto a dodici minuti. Diluire la tripsina con due volumi di DMEM/F12 o PBS e risospendere delicatamente le cellule tramite pipetta.
Trasferisci la sospensione in un tubo conico e procedi immediatamente al passaggio successivo. Centrifuga la sospensione a 200 g per tre minuti a temperatura ambiente. Aspirare con cura il sovrandanante e ri-sospendere delicatamente il pellet in un mezzo S4 preriscaldato.
Poi, aspira il PBS dalle piattole micropozzi. Aggiungi delicatamente 1,25 millilitri delle celle sospese in ciascun pozzo della piastra del micropozzo. Centrifugare la piastra a 100 g per tre minuti a temperatura ambiente per distribuire uniformmente le celle nei micropozzi.
Trasferire con attenzione la piastra micropozzo in un incubatore umidificato. Per effettuare modifiche al mezzo con il mezzo di differenziazione, aspirare delicatamente e dispensare il mezzo lungo le pareti del pozzo per prevenire turbolenza e lo spostamento di cluster cellulari dai micropozzi. Dopo aver trasferito la quantità appropriata di grappoli generati in un tubo microcentrifuga da 1,5 millilitri, collegare la siringa al tubo dell'ago e riempirlo con mezzo S7.
Aspira i cluster direttamente nel tubo dalla microcentrifuga. Piega il tubo a metà e inserisci la sezione piegata in una punta di pipetta da 200 microlitri. Poi inserisci il tubo della punta in un tubo conico da 15 millilitri e fissa le estremità al bordo del tubo usando del nastro adesivo.
Centrifugare il tubo a 100 g per due minuti a 4 gradi Celsius per compattare i gruppi e posizionare immediatamente il tubo sul ghiaccio. Per trapiantar i grappoli nei topi gamma NOD scid anestetizzati, radere la parte mediale della gamba destra sotto il ginocchio e disinfettare con il 70% di etanolo. Poi stacca il tubo dalla punta della pipetta e collegalo alla siringa.
Taglia il tubo vicino ai grappoli compattati e fissalo all'estremità smussata dell'ago. Spingi la soluzione salina finché il primo grappolo non raggiunge la punta dell'ago. Poi posiziona il topo a terra, inclinandolo verso destra e estendendo la gamba destra.
Inserire l'ago da quattro a cinque millimetri di profondità nel compartimento mediale della coscia destra tra i muscoli adduttore e gracile. Poi inietta i cluster mentre si ritrae l'ago di circa tre millimetri. Ruota la siringa, ritira l'ago e lascia che il topo si riprenda.
Dopo il recupero del trapianto sei settimane dopo il trapianto e la sezionazione del tessuto, eseguire immunocolorazioni per consentire ulteriori analisi di imaging. Le sospensioni a singola cellula dei progenitori pancreatici di stadio quattro sono state inserite in piastre micropozzo per generare aggregati tridimensionali controllati dalla dimensione. Nel giro di 24-48 ore si formarono compatti ammassi sferici.
La microscopia a fluorescenza ha confermato la presenza di cellule PDX1 ed esprimenti insulina nelle linee hPSC reporter. Dopo sei settimane, il sito dell'innesto è stato visualizzato macroscopicamente con masse simili a occhietti identificabili all'interno del muscolo. Dopo l'escissione, gli espiantili furono identificati al microscopio stereo come pallide strutture sferiche di legami.
È stata osservata una rilevazione robusta di cellule C-peptide positive negli animali trapiantati. La colorazione con insulina ha confermato la presenza di cellule umane simili a beta all'interno dell'innesto. Sono state rilevate cellule positive a glucagon e somatostatina, indicando la conservazione delle popolazioni di cellule alfa e delta.
Questo protocollo facilita i test funzionali in vivo e la valutazione della sopravvivenza e maturazione dei trapianti umani trapiantati. La considerazione più importante è garantire una differenziazione delle cellule staminali di alta qualità e una gestione delicata delle cellule durante la formazione dei cluster per massimizzare la vitalità e garantire una buona sopravvivenza cellulare. Questi modelli facilitano l'interrogazione dei meccanismi genetici alla base del diabete monogenico e della disfunzione delle cellule beta.
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Questo articolo di JoVE presenta un protocollo dettagliato per il trapianto intramuscolare di SC-îlots pancreatici derivati da cellule staminali pluripotenti umane (hPSC) in topi immunodeficienti. Il metodo offre un'alternativa meno invasiva rispetto al trapianto sotto la capsula renale o sottocutaneo, consentendo un accesso chirurgico semplice e un recupero affidabile dell'innesto. Il protocollo permette la valutazione della funzione degli îlots mediante secrezione insulinica stimolata dal glucosio (GSIS) in vivo dopo una sfida orale con glucosio e facilita l'analisi istologica successiva.
Il trapianto intramuscolare di cellule endocrine pancreatiche derivate da cellule staminali pluripotenti umane fornisce un modello preclinico riproducibile e poco invasivo per lo sviluppo della terapia cellulare del diabete. Questo approccio consente la valutazione funzionale delle isole derivate da cellule staminali mediante secrezione di insulina stimolata dal glucosio in vivo e permette un recupero affidabile degli innesti per analisi successive, superando limitazioni fondamentali dei siti di trapianto tradizionali. Il metodo aumenta l'affidabilità predittiva della valutazione preclinica offrendo un contesto fisiologico per la maturazione e la funzionalità delle isole, migliorando al contempo l'accessibilità chirurgica e riducendo l'invasività sugli animali.
Questo metodo si integra nel processo di scoperta supportando la verifica delle ipotesi nella fase iniziale della scoperta, consentendo la standardizzazione dei saggi per lo screening e fornendo letture funzionali che guidano le decisioni relative all'identificazione dei composti promettenti e al loro sviluppo preclinico.