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<ol><li>Bate, M., Martinez Arias, A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aCohen%2C+SM+%22The+development+of+Drosophila+melanogaster%22">The development of Drosophila melanogaster</a>. , CSHL Press. 747-841 (1993).</li>
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</ol>

<table><tbody><tr><td>Fosfato disodio</td><td>Fisher</td><td>7558-79-4</td><td>Na2HPO4 - fosfato di sodio dibase anidro. Possono essere usati altri stati di idratazione ma cambiano il peso molecolare</td></tr><tr><td>Pinza: Dumont #5 Pinza Biologie</td><td>Strumenti scientifici di qualità</td><td>11252-20</td><td>Stile: #5</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Forma della punta: dritta</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Lunghezza: 11cm</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Autoclave Safe: Sì</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Consigli: Biologia</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Dimensioni della punta:</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>0,05 x 0,02mm</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Lega / Materiale: Inox</td></tr><tr><td>Formaldeide</td><td>Fisher</td><td>BP531-500</td><td>Grado biologia molecolare, 37% di formaldeide. 500ml</td></tr><tr><td>Fissativo a formaldeide</td><td>Fisher</td><td>BP531-500</td><td>3,7% formaldeide in 0,1M Sodium Phosphate Buffer pH7,2 prodotto per diluizione dal 37% di stock.</td></tr><tr><td>Glicerolo</td><td>Bioreagenti Fisher</td><td>BP229-1</td><td></td></tr><tr><td>Ghiaccio</td><td>Preferenze utente</td><td></td><td></td></tr><tr><td>L-Lisina, 98%</td><td>Termoscientifico</td><td>J62225.22</td><td></td></tr><tr><td>mAb40-1</td><td>DHSB</td><td>40-1a-s</td><td>Anti-beta galactosidasi</td></tr><tr><td>Tubi microcentrifughe</td><td>Scientifico USA</td><td>1615-5520</td><td>Tubi da 1,5 mL per contenere campioni.</td></tr><tr><td>Forbici per microdissezione</td><td>Strumenti scientifici di qualità</td><td>15003-08</td><td>Taglio da 5mm, punta dritta, 8,5cm</td></tr><tr><td>Fosfato monosodio</td><td>Fisher</td><td>7558-80-7</td><td>NaH2PO4 - Fosfato di sodio monobasico anidro. Se si usa una forma idratata, il peso necessario per produrre una soluzione da 0,1M cambierebbe.</td></tr><tr><td>Mezzo di montaggio</td><td></td><td></td><td>Soluzione di glicerolo al 75% in 0,1M fosfato di sodio tampone pH7,2 con gallato di n-propile al 2,5%. Mescola per inversione per minimizzare le bolle.</td></tr><tr><td>NSG</td><td></td><td></td><td>0,1M fosfato di sodio tampone pH7,2, 0,1% saponina, 5% NGS</td></tr><tr><td>N-propile gallato</td><td>MP Biomedici</td><td>210274780</td><td></td></tr><tr><td>Smalto per unghie</td><td>Ted Pella, acquistato da Fisher</td><td>NC0381432</td><td>Per le vetrine di sigillatura</td></tr><tr><td>Portaaghi</td><td>Fisher</td><td>NC0099380</td><td>Per aghi microdisseccanti. Acciaio inossidabile cavo; lunghezza del manico: 4 3/4" di lunghezza</td></tr><tr><td>Nunc Microwell MiniTrays</td><td>Thermo Scientific</td><td>12565155</td><td>MicroWell MiniTray per applicazioni sierologiche. Conteggio dei pozzi 60</td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>StatLab</td><td>PM996</td><td>StatLab ParaFilm M Film Flessibile Autosigillante</td></tr><tr><td>Paraformaldeide</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>00380-250</td><td></td></tr><tr><td>10x PBS</td><td>Preferenze utente</td><td></td><td>Prepara 800 mL di acqua distillata in un contenitore adatto.</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>Aggiungi 1,37M di cloruro di sodio alla soluzione.</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Aggiungi 26,8 mM di cloruro di potassio alla soluzione.</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Aggiungi 101 mM di Dibasico di fosfato di sodio alla soluzione.</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Aggiungi 18,0 mM di monobasico fosfato di potassio alla soluzione.</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Regolare la soluzione al pH desiderato (tipicamente pH &asinto; 7,4).</td></tr><tr><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp;</td><td>Aggiungi acqua distillata finché il volume non raggiunge 1 L.</td></tr><tr><td>PBT</td><td>Preferenze utente</td><td></td><td>0,1M fosfato di sodio tampone pH7,2, 0,1% albumina sierica bovina e 0,2% Triton X-100.</td></tr><tr><td>PDT</td><td>Preferenze utente</td><td></td><td>0,1M tampone fosfato di sodio (pH = 7,2), 0,3% desossicolato e 0,3% Triton x-100</td></tr><tr><td>Piastra di Petri</td><td>Falcon</td><td>Corning 351007</td><td>Ciocchia di Petri; 60mm; Non trattato</td></tr><tr><td>Piastra di Petri</td><td>Falcon</td><td>Corning 351008</td><td>Ciocchia di Petri; 35mm; Non trattato</td></tr><tr><td>Pinze</td><td>Preferenze utente</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PLP</td><td>n/a</td><td></td><td>2% paraformaldeide 1,35% lisina in 0,05M fosfato di sodio tampone pH7,2</td></tr><tr><td>Anticorpi secondari</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>715-545-151</td><td>0,5 mg Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Mouse IgG.</td></tr><tr><td>Copriacostivi</td><td>VWR</td><td>48393-172</td><td>VWR Coverglass #1.5 22x40 (CASE)</td></tr><tr><td>Diapositive</td><td>Fisher</td><td>125442</td><td>Fisher Glass Slides 10bx/CS</td></tr><tr><td>Sodio Ossicolato</td><td>Thermo Fisher Sci</td><td>89904</td><td>detersivo disossicolato di sodio; 5mg</td></tr><tr><td>Periodato di sodio</td><td>Sigma Aldrich</td><td>71859-25G</td><td>Periodato di sodio &ndash; 25 grammi</td></tr><tr><td>Tampone fosfato di sodio</td><td></td><td></td><td>0,1M del tampone NaPO4 pH 7,2. Mescola 28 ml di stock fosfato monosodio qualsiasi 0,1M (11,998g NaH2PO4 a 1L di acqua distillata) con 72 ml di stock fosfato disodio anyidro 0,1M (14,196g Na2HPO4 a 1L di acqua distillata) per generare 100ml di tampone NaPO4 0,1M. In alternativa, può essere utilizzato PBS.</td></tr><tr><td>Filo di tungsteno</td><td>Ted Pella</td><td>27-11</td><td>.005" dia.</td></tr><tr><td>Triton x-100</td><td>Thermo Fisher Sci</td><td>A16046AE</td><td></td></tr><tr><td>Vortice</td><td>Preferenze utente</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

dissezione su piccola scala e colorazione di anticorpi dei dischi immaginari occhio-antenna e alare da drosophila melanogaster

Small Scale Dissection and Antibody Staining of Eye-Antennal and Wing Imaginal Discs from Drosophila melanogaster

Dissezione su piccola scala e colorazione di anticorpi dei dischi immaginari occhio-antenna e alare da Drosophila melanogaster

Drosophila imaginal discs have long been studied as models of epithelial development, patterning, and regeneration. Antibody labeling and imaging of ...

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Dissezione e immunoistochimica di larvale, pupa e adulto<em&gt; Drosophila</em&gt; Retine

Quando si colorano i dischi immaginali di Drosophila, spesso viene eseguita una dissezione grossolana in cui i dischi sono esposti ma rimangono attaccati al corpo. Una volta colorati, i dischi di interesse vengono isolati e montati. Il protocollo di esempio dimostra una procedura per la dissezione e il montaggio del disco immaginale dell'ala.

drosofila Dissezione del disco immaginale larvale: un metodo per osservare lo sviluppo degli epiteli

Le strutture adulte di Drosophila derivano da strutture simili a sacche chiamate dischi immaginali. L'analisi di questi dischi fornisce informazioni su molti processi di sviluppo, tra cui la determinazione dei tessuti, la definizione dei confini compartimentali, la proliferazione cellulare, la specificazione del destino cellulare e la polarità cellulare planare. Questo protocollo viene utilizzato per preparare i dischi immaginali per la microscopia ottica/fluorescente.

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L'obiettivo di questa tecnica è quello di consentire ai ricercatori di eseguire la dissezione, l'immunocolorazione e il montaggio di dischi oculari pupali da Drosophila melanogaster di qualsiasi età.

Dissezione e Montaggio di<em&gt; Drosophila</em&gt; pupa Dischi Eye

Questo protocollo dimostra come generare tumori clonali fluorescente segnato, geneticamente definite nei dischi immaginali antennali (EAD) occhio Drosophila /. Esso descrive come sezionare la EAD e il cervello dalla terza larve instar e come elaborarli per visualizzare e quantificare i cambiamenti di espressione genica e l'invasività del tumore.

Il<em&gt; Drosophila</em&gt; Immaginale Disc tumore Modello: visualizzazione e la quantificazione di espressione genica e di Tumor invasività Utilizzando genetica Mosaici

Questo protocollo descrive la dissezione e immunostaining del adulto Drosophila melanogaster tessuti del cervello. In particolare, questo protocollo evidenzia l'uso di Drosophila fungo del fotoricettore e corpo neuroni come sottoinsiemi di un neurone di esempio che possono essere utilizzati con precisione per scoprire i principi generali alla base di molti aspetti dello sviluppo neuronale.

Dissezione e macchiatura immunofluorescente del corpo di fungo e del fotoricettore neuroni nel cervello adulto Drosophila melanogaster

Qui, presentiamo un protocollo per tappa e sezionare lo sviluppo di tessuto olfattivo da specie di Drosophila . Il tessuto dissecato più tardi può essere utilizzato per le analisi molecolari, quali quantitative RT-PCR (Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction) o RNA sequenziamento (RNAseq), così come in vivo analisi quali immunoistochimica o in situ ibridazione.

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Questa carta presenta un metodo chirurgico per la dissezione della drosofila retine pupale insieme a protocolli per il trattamento del tessuto per esame immuno-istochimico, analisi occidentale ed estrazione di RNA.

Dissezione della drosofila Pupal Retina per immunoistochimica, analisi occidentale e isolamento del RNA

La Drosophila è un potente modello per comprendere i meccanismi fondamentali della miogenesi. Questo protocollo per la dissezione e la preparazione di emisezioni toraciche, consente l'analisi al microscopio del muscolo del volo indiretto sia dallo stadio pupale che da quello adulto. Questo protocollo consente l'imaging confocale della morfologia cellulare, della localizzazione delle proteine, della struttura muscolare e di molti altri aspetti della miogenesi.

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University of California, Irvine.  Questo articolo descrive un protocollo efficiente di dissezione immaginale del disco e colorazione degli anticorpi, economico con i reagenti e facilita la gestione di dischi immaginari in piccole quantità.

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