20 marzo 2026
Descriviamo un metodo per isolare singole cellule provenienti da embrioni precoci di Xenopus laevis e ordinarle per dimensione cellulare.
La nostra ricerca si concentra su come la dimensione cellulare regoli le decisioni genomica e solfato nello sviluppo embrionale precoce. I metodi esistenti trascurano l'eterogeneità delle dimensioni negli embrioni di xenopuses precoci. Questo protocollo consente una separazione fisica precisa e una selezione per dimensione della cella.
Per cominciare, aggiungi circa 15 millilitri di CMFM a una nuova piastra di Petri da 60 millimetri rivestita con gel AGROS all'1,5%. Utilizzando una pipetta di trasferimento in plastica, trasferisci da 10 a 100 embrioni di Xenopus laevis nel vaso. Metti la piastra sotto un microscopio stereoscopico.
Prendi con cura la membrana vitellina sulla superficie degli embrioni con una pinzetta e stacca la membrana con un'altra pinzetta. Evita di danneggiare gli embrioni durante questo processo. Incubare gli embrioni devitallinati in CMFM per un'ora a temperatura ambiente.
Scuoti delicatamente il piatto ogni cinque minuti per facilitare la dissociazione cellulare. Controlla regolarmente finché non si vedono mucchi di blastomeri. Durante la dissociazione dei blastomeri, immergere gli filtri cellulari da 40, 70 e 100 micrometri in singole piastre di Petri riempite con CMFM.
Distribuisci i piatti da sinistra a destra nell'ordine indicato. Posizionare due piatti aggiuntivi riempiti di CMFM tra i gruppi per un breve lavaggio dei filtri durante lo smistamento. Ora fai ruotare delicatamente il piatto contenente i blastomeri isolati per arricchirli al centro.
Successivamente trasferisci con cura i blastomeri nel filtro da 40 micrometri immerso nel CMFM. Scuoti delicatamente il colino alcune volte per permettere il passaggio dei blastomeri inferiori a 40 micrometri. Sposta rapidamente il colino in una teglia riempita di CMFM per un breve lavaggio.
Successivamente trasferire con cura i blastomeri trattenuti nel filtro nel filtro da 70 micrometri. Ripetere la procedura di selezione usando filtri progressivamente più grandi finché i blastomeri non vengono raccolti nel filtro da 100 micrometri. Fai girare delicatamente ogni piatto contenente blastomeri selezionati per arricchirli al centro.
Successivamente si trasferisce con cura circa quattro millilitri di blastomeri sulla sommità di 0,5 millilitri di mezzo a gradiente di densità al 15% in un tubo di selezione cellulare attivato a fluorescenza senza mescolare. Dopo 10 minuti, i blastomeri intatti si depositano sul fondo per gravità, separandoli dai globuli di tuorlo derivati da blastomeri a scoppio. I blastomeri singoli non smistati e di dimensioni sono stati fissati e fotografiati al microscopio a campo chiaro.
I blastomeri ordinati mostravano distribuzioni di dimensioni ristrette all'interno dei rispettivi intervalli attesi rispetto ai blastomeri non smistati di controllo. Il gruppo con meno di 40 micrometri mostrava un diametro medio di circa 33 micrometri. Il gruppo da 40 a 70 micrometri mostrava un diametro medio di circa 55 micrometri, mentre quello più grande di 70 micrometri mostrava un diametro medio di circa 91 micrometri.
Questo protocollo consente ai ricercatori di studiare funzioni e meccanismi mediati dalla dimensione cellulare. La considerazione più importante per questo protocollo è maneggiare con attenzione le cellule dissociate, poiché sono fragili. Dopo questo protocollo, le celle ordinate possono essere utilizzate per l'analisi del ciclo cellulare, il sequenziamento di singole cellule e l'imaging confocale.
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Questo protocollo illustra un metodo per isolare e ordinare singole cellule da embrioni precoci di Xenopus laevis in base alle dimensioni cellulari. Questa tecnica supera i limiti dei metodi esistenti che trascurano l'eterogeneità delle dimensioni, facilitando studi sulle funzioni legate alle dimensioni cellulari nello sviluppo.
L'isolamento preciso e il sorting in base alle dimensioni di singole cellule da embrioni precoci di Xenopus permette di indagare i meccanismi regolatori dipendenti dalle dimensioni durante lo sviluppo iniziale. Questa capacità colma un'importante lacuna nella comprensione di come l'eterogeneità della dimensione cellulare influenzi le decisioni dello sviluppo, supportando una maggiore affidabilità predittiva nella validazione degli obiettivi e nella riduzione dei rischi meccanicistici. Il metodo fornisce una piattaforma scalabile per generare popolazioni cellulari standardizzate e definite per dimensione, da utilizzare in analisi successive e in flussi di lavoro traslazionali.
Questo protocollo si integra nel percorso di scoperta, dall'iniziale verifica delle ipotesi allo sviluppo di saggi e alla ricerca traslazionale, consentendo studi meccanicistici basati sulla dimensione e preparazioni cellulari standardizzate per analisi successive.