酵素活性

概念インストラクター準備学生プロトコル
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  1. ベースラインペルオキシダーゼ酵素実験
    • まず、ペルオキシダーゼ酵素反応のベースラインを決定する必要があります。きれいな試験管に7mLの蒸留水を加え、次に0.2mLのグアイアコールを加えて基質を作ります。注:グアイアコールは、酵素反応が進行するにつれて黄橙色に変化する色の変化を示す指標です。
    • 次に、0.1%H2O2を0.3mL加えます。
    • マーカーを使用して、試験管の基材にラベルを付け、チューブをシーリングフィルムで覆います。
    • カバーを固定したまま、チューブを4回反転させてチューブの内容物を混ぜます。
    • 2番目の試験管に、6.0mLの蒸留水と1.5mLのカブペルオキシダーゼを加え、このチューブに「酵素」というラベルを付けます。
    • このチューブを新しいシーリングフィルムで覆い、前述のようにこれらの溶液を4回反転して混合します(ステップ4)。
    • 両方のチューブが混合されたら、試験管ラックの隣にタイマーを置き、液体がこぼれないように注意しながら、基質チューブから酵素チューブに内容物を注ぎます。
    • 次に、酵素チューブから全ボリュームを基質チューブに注ぎ、溶液を完全に混合し、基質チューブを別のシーリングフィルムで覆います。
    • 試験管をラックに入れてタイマーをスタートさせます。
    • ミキシング後の0、1、2、3、4、5分で基板チューブの色を観察します。
    • 相対的な色の変化と反応速度を定量化するには、観察された色を標準で最も近い色に一致させます。注:各サンプルポイントで観察された色の強度の写真を撮ると、結果の記録が簡単になる場合があります。
    • 表に表示されている色を記録します。表1をダウンロードするにはここをクリックしてください
  2. ペルオキシダーゼ活性に対するpHの影響の調査
    • HYPOTHESES: この演習では、実験的な仮説は、反応速度が中性pHで最大または最適に達し、これらの速度がベースライン速度より高いか、またはほぼ等しいというものです。帰無仮説は、ベースラインと pH 処理の間の反応速度に違いはないというものです。
    • まず、6つのpH緩衝液レベル3〜8のそれぞれに6本のきれいな試験管と「酵素」という単語をラベル付けします。
    • 次に、インストラクターから提供された対応するpH緩衝液を各試験管に6mL追加します。
    • 次に、スポイトが緩衝液で汚染されないように注意しながら、各チューブにカブペルオキシダーゼを1.5mL追加します。
    • 酵素チューブをシーリングフィルムで覆い、各チューブを静かに反転させてチューブの内容物を混合します。
    • ベースライン反応実験で説明されているように、7 mLの蒸留水、0.2 mLのグアヤコール、0.3 mLの0.1%H2O2を6本の新しいきれいな試験管に追加して、これらの反応の基質を作成します。
    • 次に、さらに6本のきれいな試験管にpHレベル3〜8と「Solution」のラベルを貼り、タイマーを準備します。
    • すばやく作業して、対応する溶液チューブに基質チューブとpHチューブを注ぎます。異なるpHレベルごとにこの手順を繰り返します。
    • 次に、チューブをシーリングフィルムで覆い、各チューブを4つの反転で混合します。各チューブを混合しながら、チューブラックに入れます。
    • 時間0で各チューブの色を観察し、すぐにタイマーを開始します。各チューブの色を1分間隔で最大5分間隔で観察し続けます。
    • 各間隔で、標準のカラーコードを使用して、観察された色をテーブルに記録します。
  3. 温度がペルオキシダーゼ活性に及ぼす影響を調べる
    • HYPOTHESES: この演習では、実験的な仮説は、反応速度が室温以上、または23°C以上で、酵素変性速度より最適に達し、この最大値がベースライン速度よりも高くなるというものです。帰無仮説は、ベースラインと温度処理の間の反応速度に差がないというものです。
    • 800mLのビーカーを上部までの約半分まで氷で満たし、ビーカーに冷水を注いで氷浴を作ります。このビーカーに「氷」とラベルを付けます。
    • 次に、新しい600 mLビーカー4個にラベルを貼り、それぞれに150 mLの水道水を加えます。
    • ホットプレートと温度計を使用して、ビーカーをラベルに従って25°C、35°C、45°C、60°Cにします。
    • ベースライン反応について説明したように、pHバッファーの代わりに酵素チューブ内の蒸留水を使用して、さらに5組の基質と酵素チューブを準備します。
    • 基板チューブに「Ice」、「25 °C」、「35 °C」、「45 °C」、「60 °C」のラベルを付けます。
    • すべてのウォーターバスが適切な温度に達したら、まず各基質チューブの内容物を酵素チューブに注ぎ、次に酵素チューブの内容物を基質チューブに戻すことにより、基質と酵素溶液を混合します。
    • 基板チューブをシーリングフィルムで覆い、時間0で色を観察します。
    • 次に、各チューブに与えられた温度ラベルに基づいて、対応するビーカーバスにチューブを立て、タイマーを開始します。
    • 1分間隔ごとに、水からチューブを取り出し、スタバードを基準にして色を記録します。
    • 次に、各時点(最大5分)が記録されるまで、彼らを風呂に入れます。
  4. 結果
    • 反応のベースラインを決定するには、時間に対する色の強度の変化をグラフ化します。注:5分間で色が増加した単位数は、相対比較のベースライン反応速度として機能します。
    • 最初の実験で使用したpHレベルに対する色の強度の違いをグラフ化します。
    • 比較のためにベースラインを追加し、最適な反応速度がベースラインより高いか、ベースラインより低いか、または等しいかを判断します。
    • このグラフを使用して、反応に最適なpHを決定します。注:反応はすべてのpHで発生するわけではありません。ペルオキシダーゼ酵素の最適pHは、通常6〜7の範囲です。pHの異なる基質に酵素をさらすと、酵素のpHがより塩基性になるにつれて反応速度が低下し、酵素がより不安定になります。
    • 最後に、比較のために同じベースラインを使用して、2番目の実験で使用されたさまざまな温度の経時的な色の強度の違いをグラフ化します。
    • このグラフを使用して、反応の最適温度を決定し、それをベースラインと比較します。注:反応はすべての温度で発生するわけではありません。この実験では、反応は45°C付近で最も効率的であるように見え、これを超えるとペルオキシダーゼ酵素が変性し始めます。このため、60°Cビーカーで色の変化を生じさせるべきではありません。また、氷浴では、酵素が反応を触媒するのに十分なエネルギーがないため、反応速度が遅くなったり止まったりします。

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