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腹腔内注射:成体ゼブラフィッシュの腹腔内への溶液送達法

April 30th, 2023

In This Article

Abstract

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

出典:Luukinen, H., et al.Mycobacterium marinum感染成体ゼブラフィッシュの結核のモデリング J. Vis. Exp.(2018年)。

このビデオでは、ゼブラフィッシュの成魚の腹腔内に溶液を送達する方法である腹腔内注射の技術について説明しています。

Protocol

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. 腹腔内注射によるM. marinumの実験的感染

  1. 希釈した細菌溶液の5μLの液滴をパラフィルムフィルムにピペットで移し、液滴を30Gのインスリン針に引き込みます。
  2. 実験には、生後5〜8か月の野生型魚とrag1-/-hu1999変異魚を使用してください。成魚のゼブラフィッシュを水槽水で0.02%3-アミノ安息香酸エチルエステル(pH 7.0)で麻酔します。魚の腹側を上にして、湿った発泡プラスチックのスリットに配置します。
    注:ラグ/-突然変異魚は、体細胞組換えを受けることができず、機能的なT細胞とB細胞を産生することができません。
  3. 骨盤のひれの間に針を約45°の角度で注入します。針を上向きに開いたままにして、開口部全体が腹腔内にあることを確認します。細菌懸濁液をゆっくりと注入し、針を慎重に取り外します.
    手記:注射時に赤いトレーサーが魚から漏れている場合は、実験から魚を除外してください。
  4. 注入後すぐに、魚を新鮮な水槽の水が入った回収タンクに移します。
  5. 使用中の細菌アリコートから15分ごとに7H10プレート上の細菌懸濁液のサンプルを採取し、細菌を29°Cで5日間インキュベートし、プレート上のコロニーをカウントして感染量を確認します。
  6. 魚の健康状態を定期的にチェックし、感染の症状....

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Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
マイコバクテリウム・マリナム アメリカンタイプカルチャーコレクション ATCC 927
フェノールレッドシグマ・アルドリッチP3532
リン酸緩衝生理食塩水錠剤(PBS)シグマ・アルドリッチP4417-50TAB
ミドルブロック7H10寒天BD、サーモフィッシャーサイエンティフィック11799042
3-アミノ安息香酸エチルエステル(pH 7.0)シグマ・アルドリッチA5040 (英語)
Omnican 100 30 Gインスリン針ブラウン9151133
1 mLシリンジヘンケ・サス・ウルフ4010.200V0

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Intraperitoneal InjectionZebrafish ModelAbdominal Cavity DeliveryTuberculosis ModelingMycobacterium MarinumAnesthesia ProcedureNeedle PositioningRecovery TankBacterial SolutionInfection Verification

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