動物モデルを含むすべての手順は、地元の施設動物管理委員会とJoVE獣医審査委員会によって審査されています。
1. 1日目:ドナーマウスからT細胞を調製
- CD45.2+ H2kb+ C57BL/6野生型(WT)マウスをT細胞のドナーとして使用します。
- C57BL/6マウスを二酸化炭素(CO2)窒息で安楽死させ、意識を失うまで2〜3分待ちます。必要に応じて、二次安楽死として子宮頸部脱臼を行います。
- マウスの毛皮と皮膚を70%エタノールで徹底的に洗浄します。脾臓とリンパ節を切除し、シリンジプランジャーと40μmメッシュストレーナーを使用して脾細胞の単一細胞懸濁液に分離します。ストレーナーとシリンジプランジャーを1% RPMI(RPMI培地を含む1% FBS)で洗浄し、すべての脾細胞を採取します。
- 細胞懸濁液を800 x gで5分間、4°Cで遠心分離し、上清を捨てた後、5 mLのACK溶解バッファー(1 mM Na2EDTA、10 mM KHCO3、144 mM NH4Cl、pH 7.2)を加えます。細胞懸濁液を室温で5分間インキュベートします.
手記:ACK溶解バッファーは、赤血球の溶解に使用されます。
- 1% RPMIを5 mL添加して溶解を停止します。800 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 氷冷磁気活性化セルソーティング(MACS)バッファー(0.5% BSA、PBS中2 mM EDTA、pH 7.2)を調製します。使用前にバッファーを脱気してください。細胞ペレットを5 mLのMACSバッファーに再懸濁します。
- 脾細胞を数え、血球計算盤と1%トリパンブルーを使用して生細胞と死細胞を確認します。2 x 106細胞のアリコートを保存して、フローサイトメトリー分析による精製収量を評価します。
- 脾細胞をMACS緩衝液中の200 x 106/mLの濃度で再懸濁します。106細胞あたり、0.03 μLのビオチン抗マウス-Ter-119、0.03 μLの抗ビオチン-抗マウス-CD11b、0.03 μLの抗ビオチン-マウス-CD45R、および0.03 μLのビオチン抗マウス-DX5を添加します。4 °C.
で15分間インキュベートします。
手記:ビオチン抗マウス-Ter-119、ビオチン抗マウス-CD11b、ビオチン抗マウス-CD45R、および抗ビオチン-マウス-DX5を使用して、それぞれ赤血球、顆粒球、B細胞、およびNK細胞と反応しました。したがって、これらのセルサブセットは次のステップで枯渇します。
- 10 mLの氷冷MACSバッファーを細胞懸濁液に加えます。800 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 細胞ペレットをMACSバッファーに100 x 106/mLの濃度で再懸濁します。抗ビオチンマイクロビーズ(0.22 μL/106細胞)を脾細胞懸濁液に加えます。よく混合し、4°Cでさらに15分間インキュベートし、細胞懸濁液を10 mLの氷冷MACSバッファーで1回洗浄します。800 x gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を捨てます。
- 磁場に磁気分離カラムを置きます。カラムを 3 mL の MACS バッファーですすいでください。細胞懸濁液をカラムに滴下します。結合していない濃縮T細胞からなるフロースルーを、新しい15 mLコニカルチューブに集めます。MS カラムを 3 mL の氷冷 MACS バッファーで洗浄します
手記:洗浄手順を実行する前に、カラムが空であることを確認してください。
- 細胞懸濁液を800 x gで5分間、4°Cで遠心分離し、細胞ペレットを5 mLのMACSバッファーに再懸濁します。
- 血球計算盤を使用して、1%トリパンブルーの細胞をカウントします。フローサイトメトリーによる純度チェックのために、2 x 106細胞のアリコートを保存します.
手記:この方法により単離された脾臓T細胞の平均収量は、マウス当たり~20−25×106細胞である。