マイクロ流体チャネルおよび斑状の栄養の海の風景とせん断流内細菌の遊泳行動の中で海洋微生物の化学走性採食行動を研究するための実験で、その実装の製造が記載されている。
方法論記事
マイクロ流体チャネルおよび斑状の栄養の海の風景とせん断流内細菌の遊泳行動の中で海洋微生物の化学走性採食行動を研究するための実験で、その実装の製造が記載されている。
浮遊微生物は、マイクロリソースのパッチを利用できる程度は、海洋trophodynamicsと生物地球化学的フラックスにかなりの影響を持つことになります。しかし、海洋における栄養のパッチを利用するために、水泳の微生物は、パッチの可用性と、それらを検索する細菌の能力を制限する分子拡散と乱流せん断、を含む物理的な力の影響を克服する必要があります。最近まで、方法論的限界は、斑状の生息地と現実的な小さなスケールの流れの条件の中で微生物の挙動の直接検査を排除している。したがって、はるかに海の微生物の挙動に関する我々の現在の知識の多くは、理論的な予測から調達されています。我々は海洋プロセスに関連する寸法と拡散性の特性を持つ我々が作成するために使用されている2マイクロ流体デバイスは、（i）マイクロ栄養素のパッチを開発するためのソフトリソグラフィ加工技術を適用している海の微生物の餌行動に新しい情報を取得するには、および（ii）マイクロスケール海で予想されるものに相当するせん断速度と渦、。これらのマイクロ流体デバイスは、異種と動的な海の風景の中の微生物水泳と走化性行動の最初の直接検査を認めている。個々の微生物の遊泳行動に加えて、人口レベルの集合反応を観察しながら落射蛍光、位相差顕微鏡の併用は、物理的な寸法や栄養素のパッチの拡散特性の直接検査を可能にする。これらの実験は、植物プランクトン、従属栄養細菌とphagotrophic原生生物のいくつかの種が非常に短い時間枠内に拡散マイクロリソースのパッチを見つけて悪用することに熟達していることを明らかにした。我々はまた、せん断速度を緩和することを示している、海洋細菌は、自発的にその環境を経由して流れ、スイムを戦うことができます。しかし、しきい値高せん断レベルを超えて、細菌はせん断流れに整列し、フローからの外乱なし水泳の少ない能力がありますされています。マイクロフルイディクスは、水生微生物の生態を研究するための新規かつ安価なアプローチを表し、かつ正確にマイクロスケールでの現実的な流れ場と基板のグラデーションを作成するための適性のために、相互作用の最小スケールでの微生物の挙動の試験に理想的に適用可能です。そこで、マイクロフルイディクスは、海の微生物の生態の理解を得るための貴重なツールを表すことを示唆している。
準備
1。マスクを作成する
CADソフトウェアを使用して、透明で高解像度印刷用のチャネルを設計する。これは、"マスク"になります。
クリーンルーム内で：
2。ウェハをクリーニングして焼く
アセトンと、その後すぐにメタノールで、その後、イソプロパノールで最初に、噴出ウェハ。最後に、窒素を用いてウェハを乾燥させる。
5分間、オーブン（130℃）でウエハを焼く。
3。コーティングウェハー
スピンコーティングマシンの中心にウェハを置きます。ウェハ上に瓶から注ぐフォトレジスト（SU - 8）。 SU - 8の流れを聞かせて〜10秒間リラックススピンコーターをオンにして、5秒かけて0から500 rpmにその速度を増加させる、10秒間、500rpmで維持、10秒以上の最終的な速度まで上昇し、30秒のために最終的な速度で維持する最終速度は、使用されるターゲットコーティングの厚さとSU - 8によります。詳細はで見ることができますhttp://www.microchem.com/
4。ソフトベーク
コーティング後のウェーハは、° C、その後95℃65℃最初にそれを焼く℃に焼成時間は、ターゲットの厚さと使用されるフォトレジストの種類によって異なります。その後、ウェーハは、少なくとも5分間室温で放置します。
5。露出
ウェハの上にマスクを配置し、SU - 8のマニュアルで推奨されている時間のために紫外線にウェハを公開。
6。露光後ベーク
65でウエハを焼くその後° Cおよび95 ° C以下のSU - 8のマニュアルの指示に従ってください。
7。 "マスター"（金型）を取得するためにウェーハを開発
開発者（PMMA）で満たされたビーカーを準備します。フォトレジストの未露光部分は洗い流されるまで、非常に静かにビーカーを発振しながらビーカーにウェハを浸し。
私たちの研究室で：
8。 PDMSを準備して、ウェハ上に注ぐ
カップに10:1の比では硬化剤とPDMSを混ぜる。かき混ぜ、それが均質に混合する：これは、気泡をたくさん生成し、混合物が不透明に見えるようになります。 "マスター"の混合物を注ぐ。
9。真空チャンバー内の脱泡
気泡を除去するため、すべての泡がなくなるまで真空チャンバ内にそれをカバーしているマスターとPDMS混合物を置く。
10。オーブンでベーキング
65℃硬化PDMSのオーブンで少なくとも12時間焼く。
11。パンチ穴
チャンネルのインレットとアウトレットのためのマスターとパンチ穴からPDMS剥離。
クリーンルーム内（図示せず）
12。プラズマボンディング
チャネルは、PDMS層と1分間の酸素プラズマによるガラスのスライドの両方を処理した後、スライドガラスに接着されている。
実験：
EXP＃1：マイクロスケールの栄養素層への海洋微生物の走化性応答の調査
1）実験のセットアップ
2）実験の実行
EXP＃2：vortexZで泳いでいる海洋細菌に対する剪断の影響を調査
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私たちは、クリーンルーム施設内のこのビデオのフィルムの部分に私たちを可能にするため、MITのマイクロ技術研究所に感謝したいと思います。
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| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント | |
|---|---|---|---|---|
| PDMS, Sylgard 184 | シリコーンエラストマーキット | Dow Corning | http://www.ellsworth.com/sylgard.html | |
| SU8-2100 | フォトレジスト | MicroChem Corp. | www.microchem.com | |
| Nikon Eclipse TE2000-E 倒立顕微鏡 | 顕微鏡 | Nikon Instruments | ||
| PEEKチューブ (0.762 mm ID, 1.59 mm OD) | ツール | Upchurch Scientific | www.upchurch.com | |
| シリンジ (Luer-Lokチップ) | ツール | BD Biosciences | ||
| フィッティングパーツ P-704-01 | ツール | Upchurch Scientific | チューブをLuer-Lokチップシリンジに接続するため | |
| シリンジポンプ (PHD 2000 プログラマブル) | 装置 | Harvard Apparatus | ||
| CCDカメラ (PCO 1600) | 装置 | Cook |
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