出典:Mueller, A., 他結核菌とベルゲイ菌の自然伝播による結核-マラリア共感染を研究する実験モデル。J. Vis. Exp.(2014年)
このビデオは、ネブライザーを用いたチャンバーシステムを用いてマイ コバクテリウム・結核(Mtb) をマウスにエアロゾルで送達し肺感染症を誘発し、空気感染の結合や宿主-病原体相互作用を生体内で研究するための制御された再現性モデルを提供します。
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方法論記事
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2026年2月2日
出典:Mueller, A., 他結核菌とベルゲイ菌の自然伝播による結核-マラリア共感染を研究する実験モデル。J. Vis. Exp.(2014年)
このビデオは、ネブライザーを用いたチャンバーシステムを用いてマイ コバクテリウム・結核(Mtb) をマウスにエアロゾルで送達し肺感染症を誘発し、空気感染の結合や宿主-病原体相互作用を生体内で研究するための制御された再現性モデルを提供します。
動物モデルを含むすべての手技は、地域の施設動物管理委員会およびJoVE獣医審査委員会によって審査されています。
1. グラスコールエアロゾルチャンバーを用いた MTB によるマウスのエアロゾル感染
実験動物の Mtb (結核菌)によるエアロゾル感染を標準化する最良の方法は、既知のCFU(コロニー形成単位)タイターを持つ凍結株から採集されたマイコバクテリアを使用することです。ストック培養を準備するには、ミドルブル ック7H9 ブロスで培養し、OADC(オレイン酸、アルブミン、デキストロース、カタラーゼ)濃縮培地と0.05%のTween 80(マイコバクテリアの炭素源)を同時に用い、細菌凝集防止の対策を講じます。培養は収穫時の光学密度(OD)≤1であるべきです。離度が高いと細菌の凝集が増え、生存率は低下します。1mlのアリコートを-80°Cで保存します。7H11の寒天プレートに3つの独立したバイアルを10倍に希釈し、0.5%グリセロール、1g/Lアスパラギン、OADCを補足して、37°Cで4週間の培養後にコロニーを列挙して、凍結ストック中の生存可能なCFUの数を決定します。以下に説明するエアロゾル感染を行います。
注:この懸濁液中の微生物数を変えることで、エアロゾル液滴を持つ細菌の割合が変化します。通常、1つの肺あたり100個の生存可能な細菌の取り込みを目指しています(低用量感染)。私たちの経験では、合計6mlの体積のうち、約1〜2〜2〜10×6 Mtb/mlが必要で、そのうち5.5mlがネブライズされています。感染に最適な条件を見つけるために、異なる濃度の細菌を用いた一連の実験的なエアロゾルチャレンジを行うことが推奨されます。最大5,000個のマイコバクテリアを含む高用量感染は感染過程を早めるために可能ですが、エアロゾルでマウスに感染させるにはわずか5個程度で成功します。感染率は通常100%です。
注: 他のモデルは、5つの個別の区画からなるパイ型のバスケットを装備しており、それぞれ20匹のネズミを収容可能です。
注: ネブライジングサイクル中、加圧された空気が懸濁液を原子化し、マイコバクテリアを含む小さなエアロゾル液滴を生成します。主空気の流れとともに、これらの水滴(約2〜5μmの大きさ)がエアロゾルチャンバーに運ばれます。
注: このサイクル中、ネブライジングサイクル中にエアロゾルチャンバー内に蓄積された雲が崩壊することがあります。小さな水滴は実験動物によって吸入されます。
注意:安全上の理由から、この処置中は電動空気清浄呼吸器を着用してください。
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