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1. 腸内定着レベルの測定
注: 腸内定着はゼブラフィッシュモデルにおいて最も有用な指標であり、さまざまなコレラ菌株の相対的な適応度や変異、遺伝子ノックアウトの影響を比較するために用いられます。
1. 安楽死
1. 実験が望ましい終点に達したら、感染水(通常15mLで十分)を採取し、排泄細菌数や下痢(粘液分析、タンパク質含有量、ODなど)の測定を行います。
2. 残りの水を魚網を通して漂白剤に注ぎ、水中のコレラ菌を殺します。
3. 魚を感染水と336μg/mLのエチル3-アミノベンゾエートメタンスルホン酸(トリカイン)を入れたビーカーに入れ、このトリカイン溶液で20分間RTで孵化させます。
注:フィッシュネットは10%の漂白剤溶液で滅菌されています。
2. 解剖
1. 魚の調理
1. 使い捨てのプラスチックスプーンでトリカイン溶液から魚をすくい取り、解剖面に置きます。
2. 魚の腹部を上に向けて位置づけ、下顎にピンで固定します。ピンの鈍い端は体の中心から離れて角度をつけます。肛門のすぐ後ろ、体から離れた角度でもう一本ピンを差します。
2. 腸管の露出
1. 70%エタノールに浸した綿毛のないワイプで魚の腹面を綿棒で拭きます。
2. メスとヴァナスハサミを70%エタノールに浸して火をつけて滅菌する。
3. 鱗を貫通し、メスを使って腹部の皮膚のすぐ下に縦方向に小さな切開をします。腸管は皮膚のすぐ下にあるため、深く切りすぎないように注意してください。
4. ハサミを使って、切開を体の長さに沿って慎重に伸ばし、皮膚の高さ以上に切らず、肛門は避けます。
5. はさみで魚の頭に向かって横に2回切り、切開口を開きます。
6. 側面切開の両側の皮膚を解剖面にピンで固定し、ピンを体から離して外側に傾けます。
注: ピンの先端は以前にアルコールで炎をつけて滅菌されていました。
3. 腸管の切除
注: 腸道は他の臓器の上に薄く細い管状で見えるべきです。
1. 鉗子を炎で滅菌し、その後腸全体(通常12〜15mmの長さ)を除去します。腸をガラスビーズ(ステップ 1.3.1–1.3.2参照)と1xPBSまたはLB1mLを氷に入れた均質化チューブに入れます。
3. 均質化
1. 均質チューブを事前に準備し、1.5gの1mmガラスビーズを2mLのスクリューキャップチューブに注ぎ込み(約半分まで充填)、その後オートクレーブで滅菌します。
2. 滅菌LBを1mLまたはPBSを1x添加します。
3. ゼブラフィッシュの腸がチューブに追加されたら(ステップ 1.2.3.1)、キャップをしっかりとねじ込み、チューブをボルテックスホモジナイザーに固定します。
4. 最大設定で1分間均質化し、その後氷で1〜2分間冷却します。この均質化サイクルをもう一度繰り返し、完全な均質化を実現します。注:均質化のためのいくつかの代替方法も有効です。
4. 腸内定着レベルの定量化
1. ホモジネートの連続希釈用に、各チューブに900μLのLBまたは1倍のPBSを加えて、小型ガラス試験管または1.5mLマイクロ遠心分離機チューブを準備します。魚ごとに5〜6本のチューブを準備し、腸ホモジネートを10倍に連続希釈します。最初のチューブに100μLのホモジネートを加え、渦を巻き起こして混合し、その後1チューブから2番目のチューブに100μLを加えます。
2. すべての希釈が準備されるまでこの手順を繰り返します。
3. LB寒天プレートに各希釈物100–200μLをプレートし、ストレプトマイシン耐性株を使用した場合は100μg/mLのストレプトマイシンと40μg/mLのXガロン(5-ブロモ-4-クロロ-3-インドリル-β-D-ガラクトピラノシド)を含みます。プレートを30°Cで16〜18時間孵化します。
4. 一晩の孵化後、自動コロニーカウンターまたは手動でコロニー数えてプレート上のコレラ菌群を数えます。カウントされたコロニーをマーカーチップで印をつけると役立ちます。
5. プレートカウントに懸濁液の希釈係数を掛け、メッキされた体積を考慮して魚の腸あたりのCFUを算出します。