- 核酸抽出
注: フェノールとクロロホルム溶液を用いて、すべての操作はフームフード内で行ってください。
- 各サンプルごとに400μlの酸性化フェノールとクロロホルムを1:1の混合液で準備します。別々のチューブを混ぜてから、抽出した水層を吸引で抽出します。10%のSDSを40μl加えます。
- フィルター入りのチューブは氷の上で解凍して冷やしておく。各フィルター入りチューブに650μlの酢酸EDTA(AE)バッファー(50 mM NaOAc pH 5.2、10 mM EDTA、RNaseフリー水)を加えます。
- 以下の手順をできるだけ早く実行してください。
- フィルターを収めたチューブを激しく旋回させ、フィルターがチューブの周辺に向かい、バッファーがフィルターを完全に洗浄します。チューブは必ず氷に戻して冷たい状態に保ちましょう。
注: フィルターから細菌を完全に洗い流すために、逆さまの状態でチューブをさらにボルテックスで洗い流す必要があるかもしれません。 - 全てのチューブで同じことを繰り返します。プロセスの最後にサスペンションを短時間(120 x gで1分間)スピンダウンさせるのが有用かもしれません。
- 細菌を含むバッファーをSDSとフェノール/クロロホルム混合液を含む1.5mlのマイクロ遠心分離機チューブに移します。全てのチューブで同じことを繰り返します。フィルター内のチューブを120 x gで1分間回して、フィルターから残留バッファーを得る必要がある場合があります。
- 1.5mlのチューブをすべてマルチチューブのボルテックス装置に入れ、10分間全速力でボルテックスを続けます。
- チューブを65°Cのヒートブロックで10分間孵化させます。最大速度(> 14,000 x g)で5分間遠心分離機を操作します。
- 各チューブから水溶液(約400μl)を、3M酢酸ナトリウム40μl(pH5.2)と1.0mlの100%エタノールを含む新しい1.5mlチューブに移します。各チューブを徹底的にボルテックスしてください。
注: この段階でグリコーゲンを加えることで、沈殿ペレットの可視化が改善されます。 - サンプルは-80°Cで1時間キュベートします。または、サンプルを-20°Cで一晩培養する方法もあります。その後、4°Cで最大速度(>14,000×g)で20分間遠心分離します。
- 各チューブからエタノール(上層)を慎重に吸引してください。各サンプルに500μlの冷たい70%エタノールを加え、十分にボルテックスします。遠心分離機は4°Cで最大速度(> 1 4,000 x g)で20分間使用します。
- 各チューブからエタノールを慎重に吸引してください。真空蒸発器で加熱なしで約2分間乾燥させます。サンプルを過度に乾燥させないでください。
- 各サンプルに25μlのRNaseフリー水を加えます。室温で20分間培養します。慎重にボルテックスとスピンダウンを。