動物モデルを含むすべての手技は、地域の施設動物管理委員会およびJoVE獣医審査委員会によって審査されています。
- 非感染対照群およびC. difficile感染マウスの盲腸組織の調製および輸送
- 生後4〜8週齢のC57BL/6オスマウスに抗生物質(0.5 mg/mLセフオペラゾンまたは0.5 mg/mLセフォペラゾン+1 mg/mLバンコマイシン)を飲料水で自由 に 5日間接種し、その後2日間の回復期間とその後の感染を経ます。
- 動物をCO2 窒息で安楽死させ、マウスの盲腸器官を即座に採取してください。蒸留水に最適切削温度(OCT)化合物の20%混合物を埋め込む。
- サンプルをドライアイスに置き、その後梱包して分析のために輸送します。分析まで-80°Cで保存します。
2. 非感染対照群とC. difficile感染マウス盲腸組織の冷凍切房
- すべてのクライオセクション機器は100%エタノールで洗い流し、乾燥させた後にサンプルをクライオスタットチャンバーに入れてください。導電性コーティングのあるスライドの側面を特定するためにオームメーターを用いて、ITOコーティングされた顕微鏡スライドを準備します。ダイヤモンドチップのスクライブを使って、ITOコーティングされた顕微鏡スライドの側面にエッチングとラベルを付けます。
注: 手袋、実験用メガネ、白衣、クライオスタットスリーブなどの適切な個人用防護具を着用してください。 - 研究用クリオマイクロトームでクリオセクシングを行います。OCT埋め込みマウスセカ組織を-80°Cの冷凍庫からクライオマイクロトームチャンバー(チャンバー温度30°C、物体温度-28°C)にドライアイスで移します。比較対象の組織サンプルを、画像質量分析(例:感染していない対照群と C.ディフィシル感染の比較)を用いて同じ顕微鏡スライドに取り付け、両組織のサンプル準備が同一になり、正確な代謝物比較を可能にします。
- クライオマイクロトームチャンバー内で、OCT埋め込み組織を追加のOCT溶液を使ってサンプルチャックに取り付けます。OCT溶液が固まったら、チャックを試料ヘッドに固定します。10〜50μm単位で凍結解剖を開始し、所望の組織深度や面に到達します。
- 最適な断面に到達したら、厚さ12μmの断片の採取を開始します。アーティスト用のペイントブラシでスライスを優しく加工し、テフロンコーティングされた顕微鏡スライドに置きます。
- ITOコーティングされた顕微鏡スライドを組織断片の上に転がして、テフロンコーティングされたスライドから組織を取り上げます。融解後、組織断片をITOコーティングされたスライドの背面に手のひらを押し当てて顕微鏡スライドに取り付けます。組織の部分が半透明から不透明/マットなテクスチャーに移行するまで、マウントを解凍し続けます。
- 組織装着顕微鏡スライドをドライアイスの上で移し、乾燥剤入りのドライボックスに移して当日分析用に保管するか、-80°Cで長期保存します。
3. マトリックス適用およびMALDI質量分析のための非感染対照群とC. difficile感染マウスの盲腸組織の準備
- MALDIマトリックス塗布(ノズル温度30°C、8回通過、流量0.1 mL/min、CCパターン、乾燥時間0秒、10 psi)を実施。
- MALDIイメージング質量分析の実施
- 複数の生物複製からのイオン画像を解析し、上記のSCiLS統計ソフトウェアを用いて強度ボックスプロット 比較で 有意性を比較します。
注: 適切な統計的検定や比較は応用分野により、空間的セグメンテーション、分類モデル、比較分析などが含まれ、識別的かつ相関のあるスペクトル特徴を決定することが可能です。比較分析には、重要な特徴に p値を割り当てること、組織比較のための主成分分析の作成、変異を特定するためのボックスプロットの可視化などが含まれます。また、画像質量分析後にヘマトキシリンおよびエオシン(H&E) で 染色した組織断片の明視野顕微鏡を用いて組織を可視化することも有用です。これにより組織の形態的特徴を明確に特定でき、訓練を受けた病理医と相談して分析することが可能です。