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方法論記事

宿主上皮細胞における細胞内ブル セラ・アボルタス 感染のハイスループットイメージング

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2026年3月31日

この記事について

要約

出典: Casanova, A. ほか。ヘラ細胞の ブルセラ 感染に関与する宿主因子のハイスループットスクリーニングのための顕微鏡を用いたアッセイ。 J. Vis. Exp. (2016年)

本ビデオは、上皮細胞における ブルセラ・アボルタス 感染の高スループット画像化を、siRNA介在STINGノックダウンを用いて示し、細胞質DNA感知が細胞内細菌の複製および宿主の自然免疫応答に果たす役割を調査しています。

プロトコル

1. 感染と固定

  1. 感染の前日に、250mlのスクリューキャップボトルに50mlのTSB/Km(50μg/mlカナマイシンを含むトリプティック大豆ブロス)培地で、決定量の B. abortus スターター培養を接種します。ボトルをパラフィルムで密封し、37°C、100rpmの軌道シェーカーで一晩、OD600 = 0.8-1.1まで細菌を培養します。
  2. 細菌培養液のOD600 を測定し、感染培地をDMEM(Dulbecco's Modified Eagle Medium)/10% FCS(胎児子牛血清)で希釈して、望ましい感染多重度(MOI)を達成します。
    注: HeLa細胞で5〜10%の感染率を得るために、MOIは10,000です。最適な感染率を得るために、各細胞タイプに対してMOI滴定曲線を測定する必要があります。
  3. 自動プレートワッシャーを使って、384ウェルプレートのトランスフェクション培地を感染培地50μlと交換します。
  4. 384ウェル板を400 x g、4°Cで20分間遠心分離します。
    注: これにより感染プロセスが同期されます。
  5. プレートをパラフィルムで密封し、事前に温めたアルミプレートの上で、5%CO2 を含んだ37°Cの湿度のあるインキュベーターで4時間培養します。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
トリプティック大豆ブロス(TSB)フルーカ22092 
カナマイシン硫酸塩シグマ・オルドリッチ60615 
250mlのスクリューキャップボトルコーニング8396 
DMEMシグマ・オルドリッチD5796 
胎児子牛血清(FCS)ギブコ10270熱不活性化
Greiner CELLSTAR 384ウェルプレートシグマ・オルドリッチM2062 
剥がすアルミホイル共演者6570 
試薬ディスペンサー:「マルチドロップ384試薬ディスペンサー」サーモ・サイエンティフィック5840150代替試薬ディスペンサーの使用も可能です。
トランスフェクション試薬:「リポフェクタミンRNAiMAXインビトロジェン13778-150 
自動プレートワッシャー:「プレートワッシャー ELx50-16」バイオテックELX5016このプレートワッシャーは384ウェルプレートに適した16チャンネルマニホールドを搭載しています。バイオセーフティキャビネットに収まり、洗浄時にプレートを覆う蓋が付いているため、エアロゾル発生のリスクを減らします。同様の機能を持つ代替プレートワッシャーも使用可能です。
ゲンタミシンシグマ・オルドリッチG1397 
PBSギブコ20012 
パラホルムアルデヒドシグマ・オルドリッチP61480.2 M HEPESバッファー、pH 7.4に溶解します。-20°Cで保存し、使用前日に新鮮に解凍してください。注意:PFAは吸入、皮膚への接触、飲み込むと有毒です。
ヘペスシグマ・オルドリッチH3375 
トライトン X-100シグマ・オルドリッチT9284 
ダピロッシュ10236276001 
Kif11 siRNAダルマコンL-003317-00 
ARPC3 siRNAダルマコンL-005284-00 
ブルセラ・アボルタス 2308   
ヘラ CCL-2ATCCCCL-2 
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細胞内感染siRNAノックダウン自動顕微鏡観察パラホルムアルデヒド固定DAPI染色ゲンタマイシン処理遠心分離プロトコル