方法論記事

ヒト細胞へのプラスミド導入を用いたシュードウイルスの作製

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2026年8月31日

この記事について

要約

リン酸カルシウム法によるトランスフェクションを用いたシュードウイルスのパッケージング 完全DMEM(Dulbecco's Modified Eagle Medium)培地を用いて、HEK293FT細胞の単一細胞懸濁液(9 x 10^5 cells/mL)を作成する(表1)。単一細胞懸濁液10 mLをT75フラスコに加え、トランスフェクション前に37 °C、5%二酸化炭素(CO2)インキュベーターで20時間培養する。 注:低継代数(20代未満)のHEK293FT細胞を推奨する。細胞単層が80~90%コンフルエントであることを確認すること。 トランスフェクションの2時間前に、培地をクロロキン(100 µM)含有の新鮮な完全培地10 mLに交換する。 表2および図1に示すように、以下の試薬およびプラスミドDNAを混合する:ddH2O(二回蒸留水)、pCMV/R-HA、pCMV/R-NA、pHR-Luc、pCMV Δ8.9、2.5 M CaCl2(塩化カルシウム)、および2x 4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジンエタンスルホン酸(HEPES)緩衝液。ピペッティングで5回静かに混ぜ合わせ、室温(RT)で20分間静置する。 混合液を細胞上の培地へと移し、フラスコを静かに揺らす。細胞インキュベーターで15時間培養する。 培地を新鮮な完全DMEM培地15 mLに交換する。37 °C、5% CO2インキュベーターで65時間培養する。 注:培地の色は淡いオレンジ色またはわずかに黄色になり、倒立光顕微鏡下で少なくとも80%の細胞に細胞変性効果(CPE)が認められるはずである。 上清を回収し、4 °Cで2095 x gにて20分間遠心分離する。上清を回収して分注し、-80 °Cで保存する。 表1:完全DMEM培地の組成 完全DMEM培地の組成 | 濃度 --- | --- Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) | 1x 胎児牛血清 | 10% ペニシリン(1 U/mL)/ストレプトマイシン | 1 μg/mL 表2:シュードウイルスパッケージングシステム 材料 | 濃度 | 液量 --- | --- | --- 2x HEPES (pH 7.1) | -- | 675.0 μL CaCl2 (2.5 M) | -- | 67.5 μL ddH2O | -- | 529.2 μL pCMV Δ 8.9 | 1000 ng/μL | 18.9 μL pCMV/R-HA | 100 ng/μL | 27.0 μL pCMV/R-NA | 50 ng/μL | 13.5 μL pHR-Luc | 1000 ng/μL | 18.9 μL Chang, X., リン酸カルシウム・トランスフェクション法による擬似型H5鳥インフルエンザウイルスの調製および抗体中和活性の測定 J. Vis. Exp. (2021)

このビデオでは、リン酸カルシウム媒介プラスミド導入法を用いてヒト細胞内でインフルエンザ擬似ウイルスを作製する方法を解説します。これにより、バイオセーフティレベル2の条件下で、抗体中和試験などの後続アプリケーションに使用するためのシングルサイクルウイルス粒子を安全に生成することが可能になります。

プロトコル

1. リン酸カルシウム法を用いた擬似ウイルスのパッケージング

  1. HEK293FT細胞の単一細胞懸濁液(9 x 105 /mL)を完全DMEM(Dulbecco's Modified Eagle Medium)培地で(表1)。単細胞懸濁液10 mLをT75フラスコに加え、細胞を以下の条件下でインキュベートする。 37 °C、5% 二酸化炭素 (CO2)2トランスフェクションの20時間前まで、インキュベーターで培養する。
    注: 低継代のHEK293FT細胞(<(20代未満)が推奨される。細胞単層が80~90%コンフルエントであることを確認すること。
  2. 培地を、クロロキン(100 µMトランスフェクションの2時間前に。
  3. 表2および図1に示すように、試薬とプラスミドDNAを混合する。 表2 および 図1:ddH2O(二回蒸留水)2ddH2O(二回蒸留水)、pCMV/R-HA、pCMV/R-NA、pHR-Luc、pCMV Δ8.9、2.5 M CaCl22 (塩化カルシウム)、および2x 4-(2-ヒドロキシエチル)-1-ピペラジネタンスルホン酸(HEPES)緩衝液。ピペッティングでゆっくりと5回混ぜ、混合液を室温(RT)で20分間インキュベートする。
  4. 混合液を細胞上の培地へと移し、フラスコを緩やかに揺らす。その後、細胞インキュベーター内で15時間インキュベートする。
  5. 培地を15 mLの新鮮な完全DMEM培地に交換する。細胞を以下の条件でインキュベートする。 37 °C、5% CO22 インキュベーターで65時間培養する。
    注意: 培地の色は淡いオレンジ色またはわずかに黄色になり、倒立光顕微鏡下で少なくとも80%の細胞に細胞変性効果(CPE)が認められるはずである。
  6. 上清を回収し、2095 x g 20分間、以下の条件で 4 °C上清を回収して分注し、-80 °Cで保存する。80 °C.

表1:完全DMEM培地の組成。

完全DMEM培地の組成濃度
ダルベッコ改変イーグル培地 (DMEM)1x
ウシ胎児血清10%
ペニシリン(1 U/mL)/ストレプトマイシン1 μg/ mL

表2:シュードウイルスパッケージングシステム

試薬・材料濃度容量
2x HEPES (pH 7.1)--675.0 μL
CaCl2 (2.5 M)--67.5 μL
ddH2O--529.2 μL
pCMV Δ 8.91000 ng/μL18.9 μL
pCMV/R-HA100 ng/μL27.0 μL
pCMV/R-NA50 ng/μL13.5 μL
pHR-Luc1000 ng/μL18.9 μL

結果

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図1:カルシウム媒介トランスフェクションのフローチャート。このフローチャートは、カルシウム媒介トランスフェクションの主要な手順を説明するものである。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
塩化カルシウム 無水AMRESCO1B1110-500G試薬
クロロキンリン酸塩SelleckS4157試薬
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM)Gibco12100-046試薬
胎児ウシ血清Gibco16000-044試薬
HEK293FTGibcoR700-07細胞株
HEPES FREE ACIDAMRESCO0511-250G試薬
HIV-1 p24 抗原 ELISAZeptoMetrix801111試薬キット
Luciferase assay system freezer packPromegaE4530試薬キット
マイクロ遠心チューブ 1.5 mLThermo fisher scientific509-GRD-Q消耗品
Nunc 円錐底遠心チューブ 15 mLThermo fisher scientific339650消耗品
ペニシリン-ストレプトマイシンGibco15140-122試薬
ピペットチップ (10 μL)Thermo fisher scientificTF102-10-Q消耗品
ピペットチップ (100 μL)Thermo fisher scientificTF113-100-Q消耗品
ピペットチップ (1000 μL)Thermo fisher scientificTF112-1000-Q消耗品
セラロジカルピペット (5 mL)Thermo fisher scientific170355N消耗品
セラロジカルピペット (10 mL)Thermo fisher scientific170356N消耗品

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擬似ウイルスの作製リン酸カルシウムインフルエンザ擬似ウイルスHEK 293FT細胞抗体中和レンチウイルスコアタンパク質シングルサイクルウイルス細胞培養