RT-qPCR(リアルタイム定量ポリメラーゼ連鎖反応)のためのウイルスサンプルの処理 注:ステップ1.1~1.3は、生物安全キャビネット内で行うこと。特に、感染性ウイルスを含む培養上清の取り扱いは、バイオセーフティレベル2(またはそれ以上)の環境下で実施しなければならない。 1. 199 μLの処理バッファーと1 μLのヌクレアーゼフリープロテナーゼKを混合する。 2. 40 units/mLのRNaseインヒビターを含む細胞培養培地(例:10%胎児牛血清および抗生物質を添加したDMEM [Dulbecco's modified eagle medium] [DMEM/10%胎児牛血清])を用いて、合成したDENV(デングウイルス)3'UTR(非翻訳領域)RNA(リボ核酸)を1:10で段階希釈し、5 x 10⁹から5 x 10³ copies/μLのRNA標準試料を得る。 3. 8チューブPCR(ポリメラーゼ連鎖反応)ストリップまたは96ウェルPCRプレートを用い、DENV感染細胞の培養上清5 μLおよびDENV 3'UTR RNA標準試料を、5 μLの処理バッファー/プロテナーゼK溶液と混合する。非テンプレートコントロール(NTC)として、細胞培養培地(ウイルスを含まないもの)5 μLを5 μLの処理バッファー/プロテナーゼK溶液と混合する。 4. 短時間遠心分離した後、サーモサイクラーを用いて以下の条件でサンプルをインキュベートする:1サイクル(25 °Cで10分間、および75 °Cで5分間)。 注:リアルタイムPCR分析を同日に行う場合は、処理済みサンプルを4 °Cで保存できる。長期保存の場合は、サンプルを-80 °Cで保存すること。 鈴木 Y.、 他リアルタイム定量PCR法による感染細胞の培養上清中のデングウイルスRNAの測定。 J. Vis. Exp. (2018).
このビデオでは、定量的PCR(Polymerase chain reaction)分析のためのウイルスサンプルの調製手順を説明します。ウイルスサンプルとRNA標準品を段階希釈し、プロテイナーゼKバッファーで処理した後、温度制御下でインキュベーションしてRNAを放出させます。処理されたRNAはその後安定化され、ウイルスRNAレベルの定量のために保存されます。